miR-138-5p 靶向调控程序性死亡配体-1对肺腺癌细胞的增殖、迁移和上皮间质转化的影响*
2022-04-28梁青松贾军胡欣罗晖
梁青松,贾军,胡欣,罗晖△
(南充市中心医院 1.胸心外科;2.呼吸内科;3.肿瘤科,南充 637000)
肺癌是临床常见的恶性肿瘤,其死亡率位于恶性肿瘤首位。肺腺癌是非小细胞肺癌(non-small cell lung cancer,NSCLC)中的一种常见类型,由于细胞增殖、迁移较快,侵袭性强,导致患者5年生存率较低,研究其发生和发展的分子机制,探寻靶向分子药物具有重要意义[1- 2]。微小RNA-138-5p(miR-138-5p)在胃癌[3]、前列腺癌[4]、肝癌[5]等肿瘤中低表达,参与调控肿瘤细胞的增殖、迁移、上皮间质转化(epithelial-mesenchymal transition,EMT)、血管生成等。研究显示,miR-138-5p在NSCLC中表达下调,与肿瘤TNM分期、肿瘤直径、淋巴结转移及患者预后有关[6];miR-138-5p可靶向下调程序性死亡配体-1(programmed death ligand-1,PD-L1)激活免疫系统抑制NSCLC肿瘤生长[7]。PD-L1为PD-1配体,具有负性调控免疫反应的作用,在肿瘤中高表达,与肿瘤免疫逃逸有关[8]。miR-138-5p是否通过靶向调控PD-L1影响肺腺癌细胞的增殖、迁移和EMT,目前尚不清楚。本研究旨在探索miR-138-5p对肺腺癌细胞(H1299)增殖、迁移及EMT的影响,并进一步阐明其作用机制。
1 材料与方法
1.1细胞、主要试剂与仪器 人支气管上皮细胞(BEAS-2B)、人肺腺癌细胞(H1299、HCC827、A549、H1975)购于中国科学院细胞库;DMEM培养基(12800017)、胎牛血清(10099141)购自美国Gibco公司;miR-138-5p过表达质粒(miR-138-5p mimics)及阴性对照(miR-NC)、PD-L1过表达质粒(PDL1)及空载质粒(pcDNA)、抑制PD-L1表达(si-PD-L1)及阴性对照(si-NC)质粒及miR-138-5p、U6引物购自上海生工生物工程股份有限公司;RNA提取试剂(10296010)、Lipofectamine 2000(11668-019)购自Invitrogen公司;RIPA细胞裂解液(P0013B)、双荧光素酶报告基因检测试剂盒(RG005)、CCK-8试剂盒(C0037)购自碧云天生物技术有限公司;兔抗人PDL1(ab243877)、PCNA(ab92552)、MMP-9(ab228402)、E-cadherin(ab40772)、N-cadherin(ab76011)、山羊抗兔IgG H&L(HRP)(ab205718)抗体购自Abcam公司。MK3型全自动酶标仪、ABI 7500荧光定量PCR仪购自美国Thermofisher公司;CKX31型倒置荧光显微镜购自日本Olympus公司;K8500凝胶成像系统购自南京世研仪器。
1.2标本来源 选择2019年3月至2021年5月在本院手术治疗的肺腺癌患者42例,其中男29例,女13例,年龄35~78岁,平均(54.50±9.70)岁,手术过程中取肺腺癌组织与癌旁组织,置于-80℃冰箱中保存,患者术前未曾接受放、化疗。本研究经本院伦理委员会批准,患者知情并同意。
1.3细胞培养及转染 使用含有10%胎牛血清的DMEM培养基 培养BEAS-2B、H1299、HCC827、A549、H1975细胞。将H1299细胞接种于6孔板中(2×105个细胞/孔),待细胞生长融合至70%~80%时,使用Lipofectamine 2000进行质粒转染,将H1299细胞分为Control组、miR-NC组、miR-138-5p mimics组、si-NC组、si-PD-L1组、miR-138-5p mimics+pcDNA组和miR-138-5p mimics+PD-L1组,每组设置6个复孔,转染6 h后更换新鲜DMEM培养基继续培养48 h,用于后续实验。
1.4双荧光素酶报告基因实验 根据生物信息学软件(genecards)在线预测显示,miR-138-5p与PDL1 3’UTR有结合区域,分别构建野生型PD-L1-WT或突变型PD-L1-MUT质粒,将对数生长期的H1299细胞接种于24孔板中培养24 h后,取上述质粒分别与miR-138-5p mimics、miR-NC共转染H1299细胞48 h,双荧光素酶报告基因检测试剂盒测定相对荧光素酶活性。
1.5实时荧光定量PCR(RT-qPCR)检测miR-138-5p水平 采用RT-qPCR法检测肺腺癌组织、癌旁组织及肺腺癌细胞、支气管上皮细胞中miR-138-5p相对表达量。miR-138-5p上游引物(5’-3’):GCGAGCTGGTGTTGTGAATC,下游引物(5’-3’):AGTGCAGGGTCCGAGGTATT;U6上游引物(5’-3’):CTCGGCTTCGGCAGCACA,下游引物(5’-3’):AACGCTTCACGAATTTGCGT。miR-138-5p扩增条件:95℃,5 min孵育;94℃,15 s变性,60℃,30 s退火,70℃,45 s延伸,40个循环。以U6为内参,采用2-△△CT法计算miR-138-5p相对表达量。
1.6 CCK-8法检测细胞增殖 转染后的生长良好的H1299细胞以每孔1×105个细胞接种至96孔板中,于37℃,5% CO2培养箱中培养,于24 h、48 h、72 h时间点,每孔加入10µL的CCK-8溶液继续孵育2 h后,全自动酶标仪检测450 nm处吸光度(OD450 nm)值。
1.7划痕实验检测细胞迁移 取转染48 h的H1299细胞,以每孔1×104个细胞接种至6孔板中,待细胞完全贴壁后,使用200μL移液器枪头在每孔垂直划线,PBS洗去漂浮细胞,在37℃、5%CO2培养箱培养24 h后,倒置显微镜下观察,并计算划痕愈合率,划痕愈合率=(0 h划痕宽度-24 h划痕宽度)/0 h划痕宽度×100%。
1.8免疫印迹法(western blotting)检测细胞中PDL1、PCNA、MMP-9、E-cadherin、N-cadherin蛋白表达 收集转染后的H1299细胞,加入200μL RIPA细胞裂解液制备细胞裂解物,离心取上清液,使用BCA试剂盒检测蛋白浓度,经SDS-PAGE电泳后转至PVDF膜,5%脱脂奶粉室温封闭2 h,分别加PDL1(1∶1 000)、PCNA(1∶1 500)、MMP-9(1∶2 000)、E-cadherin(1∶1 500)、N-cadherin(1∶1 000)一抗和βactin(1∶1 000)抗体,4℃孵育过夜,TBST洗涤,加入相应二抗(1∶2 000)室温孵育2 h,凝胶成像系统成像,以β-actin为内参,使用Image-Pro Plus 6.0软件分析蛋白相对表达量。
1.9统计学方法 采用统计学软件SPSS 22.0对数据进行分析,GraphPad Prism7.0软件绘制生长曲线,计量资料用均数±标准差()描述,两组间比较行t检验,多组间比较及进一步两两比较分别行单因素方差分析和SNK-q检验,P<0.05为差异有统计学意义。
2 结果
2.1 miR-138-5p在肺腺癌组织与细胞中表达下调
RT-qPCR检测结果显示,miR-138-5p在肺腺癌组织中表达水平低于癌旁组织(P<0.05),肺腺癌H1299、HCC827、A549、H1975细胞中miR-138-5p表达水平低于BEAS-2B细胞,见图1,其中H1299细胞中表达水平最低,选择H1299细胞用于后续实验。
图1 miR-138-5p在肺腺癌组织与细胞中的表达
2.2 miR-138-5p与PD-L1靶向关系验证 经数据库(genecards)在线预测发现,miR-138-5p与PD-L1 mRNA 3’UTR区有结合位点(图2)。双荧光素酶报告基因检测结果显示,miR-138-5p mimics和miRNC分别与野生型PD-L1质粒共转染H1299细胞后,与miR-NC组相比,miR-138-5p mimics组荧光素酶活性显著降低,见图3,证明miR-138-5p与PD-L1存在靶向关系。
图2 miR-138-5p与PD-L1靶向关系验证
2.3过表达miR-138-5p对H1299细胞增殖、迁移、EMT及PD-L1表达的影响Control组和miR-NC组H1299细胞增殖、划痕愈合率及PD-L1、PCNA、MMP-9、E-cadherin、N-cadherin蛋白表达水平比较,差异无统计学意义;与miR-NC组相比,miR-138-5p mimics组H1299细胞增殖、划痕愈合率及PD-L1、PCNA、MMP-9、N-cadherin蛋白表达水平降低,miR-138-5p、E-cadherin表达水平升高,见表1和图3。
图3 过表达miR-138-5p对H1299细胞增殖、迁移、EMT的影响
表1 过表达miR-138-5p对H1299细胞增殖、迁移、EMT的影响 ,n=6
表1 过表达miR-138-5p对H1299细胞增殖、迁移、EMT的影响 ,n=6
与miR-NC组比较,aP<0.05。
2.4抑制PD-L1表达对H1299细胞增殖、迁移及EMT的影响H1299细胞转染si-PD-L1质粒后,Control组和si-NC组H1299细胞增殖、划痕愈合率及PD-L1、PCNA、MMP-9、E-cadherin、N-cadherin蛋白表达水平比较,差异无统计学意义;与si-NC组相比,si-PD-L1组H1299细胞增殖、划痕愈合率及PDL1、PCNA、MMP-9、N-cadherin蛋白表达水平降低,E-cadherin蛋白表达水平升高,见表2和图4。
图4 抑制PD-L1表达对H1299细胞增殖、迁移及EMT的影响
表2 抑制PD-L1表达对H1299细胞增殖、迁移及EMT的影响 ,n=6
表2 抑制PD-L1表达对H1299细胞增殖、迁移及EMT的影响 ,n=6
与si-NC组比较,aP<0.05。
2.5过表达PD-L1可逆转过表达miR-138-5p对H1299细胞增殖、迁移及EMT的抑制作用将PDL1过表达质粒与miR-138-5p mimics质粒共转染H1299细胞后,与miR-138-5p mimics+pcDNA组相比,miR-138-5p mimics+PD-L1组H1299细胞增殖、划痕愈合率及PD-L1、PCNA、MMP-9、N-cadherin蛋白表达水平升高,E-cadherin蛋白表达水平降低,表明过表达PD-L1可部分逆转过表达miR-138-5p对H1299细胞增殖、迁移及EMT的抑制作用,见表3和图5。
图5 同时过表达miR-138-5p与PD-L1对H1299细胞增殖、迁移及EMT的影响
表3 同时过表达miR-138-5p与PD-L1对H1299细胞增殖、迁移及EMT的影响 ,n=6
表3 同时过表达miR-138-5p与PD-L1对H1299细胞增殖、迁移及EMT的影响 ,n=6
与miR-138-5p mimics+pcDNA组相比,aP<0.05。
3 讨论
miRNAs可作为致癌基因或抑癌基因参与调控肺腺癌的发生、转移或肿瘤细胞耐药性等过程,与肺腺癌的发生和发展密切相关,其中miR-138-5p在多种肿瘤中表达下调,发挥抑癌基因的作用,如miR-138-5p在胃癌、结肠癌、乳腺癌等肿瘤中低表达,调控肿瘤细胞的侵袭、迁移与肿瘤耐药性[9-11]。已有研究显示,miR-138-5p在肺癌中表达下调,过表达miR-138-5p可靶向叉头框蛋白C1(FOXC1)抑制肺癌细胞的增殖、迁移和侵袭[12]。本研究结果亦显示,miR-138-5p在肺腺癌组织与细胞中表达下调。EMT是恶性肿瘤细胞发生局部浸润与远处转移的关键;N-cadherin为上皮细胞标志物,其水平升高有利于血管形成及上皮—间质细胞的迁移;E-cadherin可维持细胞间极性,抑制细胞的迁移,二者在EMT过程中发挥重要作用,而MMP-9可诱导EMT[13]。为探索miR-138-5p对肺癌细胞的影响,本研究将miR-138-5p过表达质粒转染H1299细胞发现,与miR-NC组相比,miR-138-5p mimics组H1299细胞增殖、划痕愈合率及PCNA、MMP-9、N-cadherin蛋白表达水平降低,miR-138-5p、E-cadherin表达水平升高。表明过表达miR-138-5p可抑制H1299细胞增殖、迁移及EMT,提示miR-138-5p在肺腺癌发生和发展中发挥抑癌作用。魏丽等[13]研究表明,眼葡萄膜黑色素瘤细胞中,过表达miR-138-5p可靶向抑制转录因子4(TCF4)表达,从而抑制细胞增殖、侵袭及EMT。
PD-L1属于一种负性共刺激分子,为PD-1配体,在免疫细胞、上皮细胞及血管内皮细胞均有表达,PD-L1与PD-1结合,下调淋巴细胞增殖,导致其效应T细胞凋亡,发生肿瘤免疫逃逸,促进肿瘤生长[14]。研究显示,PD-L1在肝癌、胃癌、肺腺癌中的表达上调,与肿瘤的免疫耐受和免疫逃逸发生密切相关[15-16]。研究显示,PD-L1在肺腺癌组织中呈高表达,与疾病分化程度、有无淋巴结转移、TNM分期和CD8+T淋巴细胞相关[17]。研究表明,在结肠癌细胞中,过表达miR-138-5p可靶向抑制PD-L1表达,抑制细胞增殖,且在体内可抑制小鼠肿瘤的生长[18]。本研究双荧光素酶报告基因实验结果显示,miR-138-5p与PD-L1存在靶向关系,且在H1299细胞中,miR-138-5p的上调可抑制PD-L1表达,进一步证实二者的靶向关系。本研究通过在H1299细胞中转染si-PD-L1质粒下调PD-L1表达后,H1299细胞增殖、划痕愈合率及PD-L1、PCNA、MMP-9、N-cadherin蛋白表达水平降低,E-cadherin表达水平升高,表明抑制PD-L1表达可显著抑制H1299细胞增殖、迁移和EMT。而过表达PD-L1可部分逆转过表达miR-138-5p对H1299细胞增殖、迁移与EMT的抑制作用。以上这些结果表明,过表达miR-138-5p可通过靶向抑制PD-L1表达,抑制H1299细胞增殖、迁移与EMT。
综上所述,miR-138-5p在肺腺癌组织与细胞中表达下调,过表达miR-138-5p可通过靶向抑制PDL1表达而抑制肺腺癌细胞的增殖、迁移和EMT。本研究仅对相关机制进行了初步研究,其涉及的相关分子通路仍需进一步研究。