血流感染患者血小板参数的变化

王亚洲， 刘慧玲

（常州市肿瘤医院，江苏 常州 213000）

脓毒症患者中有30%～40%是由血流感染导致的[1]，每年全球的脓毒症患者超过3 100万例，其中有500万例患者死亡[2]。血培养是诊断血流感染的“金标准”，通过血培养可以明确病原菌的种类和对抗菌药物的敏感性，但血培养需时较长，敏感性较低，对生长缓慢、苛养的细菌敏感性更低，采样前使用抗菌药物、采样量、采样时机等因素均能影响血培养对脓毒症的早期诊断[3]。血小板（platelet，PLT）能识别微生物，分泌免疫调节介质[4]，产生防御素、血栓素等抗菌分子[5]，也可直接与细菌相互作用杀灭细菌[6]，因此PLT在宿主防御感染中有重要作用。平均血小板成分（mean platelet component，MPC）是ADVIA 2120全自动血液分析仪基于流式细胞分析原理测得的反映PLT密度的指标，MPC与PLT表面P-选择素（又称CD62P）有良好的相关性，可作为PLT的活化指标[7]。有研究发现，平均血小板体积（mean platelet volume，MPV）、血小板/淋巴细胞比值（platelet-lymphocyte ratio，PLR）及MPV/PLT比值可作为感染性心内膜炎[8]、急性阑尾炎[9]、尿路感染[10]和败血症[11]等感染性疾病的诊断标志物。本研究拟探讨MPC、MPV、PLT计数、PLR及MPV/PLT比值在血流感染诊断中的价值。

1 材料和方法

1.1 研究对象

选取2014年7月—2017年1月常州市肿瘤医院血培养阳性患者89例（感染组），其中男54例、女35例，年龄63（54～76）岁。另选取同期常州市肿瘤医院体检健康者90名（对照组），其中男54名、女36名，年龄62（59～67）岁。感染组按感染细菌种类分为革兰阳性（G+）菌感染组和革兰阴性（G-）菌感染组。G+菌包括葡萄球菌、肺炎链球菌、无乳链球菌、草绿色链球菌和屎肠球菌。G-菌包括大肠埃希菌、肺炎克雷伯菌、产气肠杆菌、聚团肠杆菌、阴沟肠杆菌、枸橼酸杆菌、铜绿假单胞菌。感染组与对照组之间年龄、性别差异均无统计学意义（P>0.05）。

1.2 方法

采用ADVIA 2120全自动血液分析仪（德国西门子公司）及配套试剂检测所有对象的MPC、MPV和PLT计数，同时计算PLR和MPV/PLT比值。

1.3 统计学方法

采用SPSS 19.0软件进行统计分析。呈正态分布数据以x±s表示，组间比较采用Studentt检验。非正态分布数据以中位数（M）[四分位数（P25～P75）]表示，组间比较采用非参数Mann-WhitneyU检验。采用受试者工作特征（receiver operating characteristic，ROC）曲线评价各项指标诊断血流感染的效能。以P＜0.05为差异有统计学意义。

2 结果

2.1 感染组与对照组各项指标检测结果比较

感染组MPC、PLT计数均低于对照组（P＜0.05），MPV、PLR、MPV/PLT比值均高于对照组（P＜0.001）。见表1。

表1 感染组与对照组各项指标检测结果比较

2.2 G-菌感染组和G+菌感染组各项指标检测结果比较

G-菌感染组P L R低于G+菌感染组（P＜0.05），MPC、MPV、PLT计数及MPV/P LT比值2个组之间差异均无统计学意义（P>0.05）。见表2。

表2 G-菌感染组和G+菌感染组检测结果比较

2.3 MPC、MPV、PLT计数、PLR、MPV/PLT比值诊断血流感染的效能

ROC曲线分析结果显示，MPC、MPV、PLR、MPV/PLT比值、PLT计数诊断血流感染的曲线下面积（area under curve，AUC）分别为0.954、0.806、0.780、0.700、0.634，最佳临界值分别为267 mg/L、8.95 fL、197、5.32 fL×10－5/μL、182×109/L，敏感性分别为93.3%、68.5%、60.7%、56.0%、57.4%，特异性分别为88.9%、81.2%、93.3%、83.3%、68.9%。见图1、表3。

图1 MPC、MPV、PLR、MPV/PLT比值、PLT计数诊断血流感染的ROC曲线

表3 MPC、MPV、PLR、MPV/PLT、PLT计数诊断血流感染的ROC曲线参数

3 讨论

有研究结果显示，中性粒细胞/淋巴细胞比值、淋巴细胞计数、MPV、PLR、单核细胞/淋巴细胞比值可作为菌血症[12]、慢性阻塞性肺疾病急性加重[13]、急性阑尾炎[9]等的标志物，也可作为肿瘤辅助诊断[14]和预后判断[15]的标志物。

本研究结果显示，血流感染患者的MPC、PLT计数显著降低（P＜0.05），MPV、PLR和MPV/PLT比值显著升高（P＜0.001）。黎赛等[16]发现，当MPC的临界值为267 mg/L时，诊断28 d～14岁小儿血流感染的敏感性可达96.23%，与本研究结果相近。当发生细菌感染时，PLT表面受体如补体受体、糖蛋白（glycoprotein，GP）Ⅰbα、GPⅡb-Ⅲa等可与细菌表面蛋白直接结合或通过纤维蛋白原、纤连蛋白等间接结合[17]。另外，细菌产生的毒素也可与PLT直接结合。这些因素会激活PLT释放炎症因子，参与宿主抗菌防御及炎症的发展和扩散[18]。

败血症患者PLT计数降低和MPV升高[19]与患者微循环中PLT消耗增加、血液中新生PLT数量的增加有关。MPV既可作为尿路感染[10]、急性阑尾炎[9]等感染性疾病的标志物，也与血流感染[20]、肺炎的严重程度及ICU肺炎的预后[21]有关。G-菌感染组PLR低于G+菌感染组（P＜0.05），这可能与G-菌感染组PLT计数低于G+菌感染组有关，因此PLR是否能用于区分血流感染细菌的类别还需要进一步研究。ROC曲线分析结果显示，PLR诊断血流感染的效能低于MPC和MPV，MPV/PLT比值和PLT计数诊断血流感染的效能较低。

总之，MPC和MPV对血流感染有较高的诊断价值。