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泛素特异性蛋白酶10在低氧性肺动脉高压中的表达及对USP10-AMPK信号通路的调控作用*

2021-05-26岳珍珍郭森焦义明

广东医学 2021年5期
关键词:泛素低氧磷酸化

岳珍珍, 郭森, 焦义明

1郑州大学第一附属医院郑东院区心脏重症监护病房(河南郑州 450052); 2郑州大学第一附属医院心血管内科(河南郑州 450000); 3郑州大学第二附属医院体检科(河南郑州 450014)

肺动脉高压(pulmonary hypertension,PAH)是以肺动脉压力增高、伴或不伴有肺小动脉病变的一种血流动力学和病理生理状态,可引起肺循环淤阻及右心衰竭,是各种肺源性心脏病和高山性心脏病的重要发病环节和致死原因,具有较高的致残、致死率[1-2]。了解PAH的发生机制,对于制定有效的防治措施,降低PAH病残、病死率有重要意义。泛素特异性蛋白酶10(ubiquitin-specific protease 10,USP10)能调节细胞的生长周期,通过多种途径调控细胞的生理病理变化[3]。单磷酸腺苷活化蛋白激酶(AMP-activated protein kinase,AMPK)是机体重要的能量代谢受体。研究显示[4-5],USP10可特异性地去除AMPKα的泛素化,引起AMPK的不当激活和多种代谢缺陷,AMPK/磷脂酰肌醇3激酶(phosphatidylinositol 3 kinase,PI3K)/蛋白激酶B(prtein kinase B,Akt)途径是包括PAH在内的多种心血管疾病的调控途径。既往对于USP10的研究多与癌症相关,关于USP10在PAH中的研究尚少。为此,本研究2018年9月至2019年2月对USP10在低氧性PAH中表达的意义及对USP10-AMPK信号通路的调控作用进行探讨,以期为PAH的防治提供参考。

1 材料与方法

1.1 实验动物 SD大鼠,雄性,40只,6~8周龄,体重200~220 g,购自广东省医学实验动物中心,许可证号SCXK(粤)2018-0034。

1.2 药物、试剂及仪器 USP10基因短发夹结构RNA慢病毒载体构建(上海吉凯基因化学技术有限公司),水合氯醛(青岛宇龙海藻有限公司),肝素钠(常州千红生化制药股份有限公司),USP10鼠单克隆抗体(美国Santa Cruz公司),磷酸化AMPK(p-AMPK)/AMPK、磷酸化PI3K(p-PI3K)/PI3K、磷酸化Akt(p-Akt)/Akt、磷酸化eNOS(p-eNOS)/内皮细胞型一氧化氮合成酶(endothelialnitric oxide synthase,eNOS)抗体(美国BD公司),逆转录试剂盒(日本Takara公司),BCA蛋白定量试剂盒(上海如吉生物科技发展有限公司),辣根过氧化物酶(horseradish Peroxidase,HRP)标记一抗(兔抗鼠)、HRP标记二抗(羊抗兔)、DAB显色试剂盒(上海联迈生物工程有限公司),SP免疫组化试剂盒、苏木素-伊红(hematoxylin and eosin HE)染色试剂盒、NanoDrop 2000紫外可见光分光度计(赛默飞世尔科技中国有限公司),Prism7500实时荧光定量(polymerase chain reaction,PCR)仪(美国AIB公司),Elx800酶标仪(美国Bio-Tek公司),石蜡切片机(德国SLEE公司),光学显微镜(日本NiKon公司)。

1.3 方法

1.3.1 低氧性PAH模型构建与干预 40只大鼠分随机分为4组,每组10只,分别为对照组、模型组、空载组和沉默组。以3 mL/kg 10%水合氯醛腹腔麻醉后固定于木板,止血钳牵拉舌尖,暴露声门,1.5×108TU/100 g量(USP10-lentivirus)分3次,缓慢滴入沉默组大鼠气管内,1次/d,滴注后向气道内注入少量空气并捏住鼻孔,促进大鼠呛咳使慢病毒流入肺部,空载组以等量的NC-lentivirus滴入,对照组与模型组以等量生理盐水滴入。滴入完毕待感染宿主3 d后,模型组、空载组和沉默组置于10%氧浓度的缺氧箱中饲养3周,间断缺氧8 h/d(密切观察大鼠生存情况,避免因急性缺氧而猝死),对照组正常环境饲养(正常呼吸室内空气),4组大鼠均放于同一房间予以相同饮食饲养。

1.3.2 一般情况观察及指标测量 观察4组大鼠干预期间的精神状态、活动量、毛色、呼吸变化。建模完成后各组大鼠以10%浓度水合氯醛(3 mL/kg)腹腔内麻醉,仰卧固定于木板,分离大鼠右侧颈外静脉,使用1.2-F压力测定导管,3%肝素钠冲洗后,从大鼠右侧颈外静脉、右心房、右心室进入肺动脉,取出管芯,连接PowerLab压力记录分析系统,测量平均肺动脉压(mean pulmonary arterial presure,MPAP)与右心室收缩压(right ventricular systolic presure,RVSP)。肺动脉压力测量后,实施气管插管,扎线固定注射器,右肺以丝线结扎。放血处死大鼠,2 mL 4%多聚甲醛经气管插管注入固定左肺,结扎左肺后取出,以4%多聚甲醛固定过夜。取出大鼠心脏,PBS缓冲液冲洗干净,剖开左心房和室间隔,以滤纸吸干后,电子天平分别称量右心室(right ventricle,RV)和左心室加室间隔(left ventricle pius septum,LV+S),计算右心肥大指数(right ventricular hypertrophy index,RVHI),RVHI= [RV/(LV+S)]。

1.3.3 病理学观察 大鼠肺脏组织标本行石蜡包埋切片,厚度4 μm,常规HE染色,中性树胶封片,于光学显微镜下观察肺动脉血管组织病理改变。以图像采集系统测量肺血管(直径<300 μm)管壁厚度,计算管壁相对厚度指数(relative thickness index,RTI),RTI=(1-血管壁内径/血管外径)×100%。

1.3.4 肺组织USP10、AMPK、PI3K、Akt、eNOS mRNA相对表达量鉴定 取肺组织90 mg,Trizol法提取总RNA,逆转录试剂盒得到cDNA,RT-PCR检测相关基因的表达水平,Takara SYBR Green荧光定量试剂盒设定反应体系:Master Mix 10 μL,上下游引物各2 μL,cDNA模板2 μL,ddH2O 10 μL;反应条件:95℃预变性10 min;95℃变性25 s,60℃退火40 s,60℃延伸50 s,重复45个循环。β-actin为管家基因,2-ΔΔCt为目的基因的相对表达量。每个反应重复3次,取3次结果的平均值。各基因引物序列见表1。

1.3.5 肺组织USP10、AMPK、PI3K、Akt、eNOS蛋白相对表达量鉴定 90 mg肺组织,Western blot法检测蛋白定量,取50 μg样本蛋白混合等体积上样buffer,100℃水浴5 min,离心取上清液,电泳分离后电转60 min将蛋白转至硝酸纤维素膜上,封闭液封闭后于室温孵育2 h,加入一抗(1∶800),4℃摇床孵育过夜,TTBS液洗膜3次,二抗(1∶10 000)室温孵育2 h,漂洗后暗室中曝光,计算肺组织中USP10蛋白相对表达量及p-AMPK/AMPK、p-PI3K/PI3K、p-Akt/Akt、p-eNOS/eNOS蛋白比值。

1.4 观察指标 (1)大鼠一般情况观察;(2)大鼠肺动脉血管组织病理改变;(3)各组MPAP、RVSP、RTI、RVHI对比;(4)各组USP10、AMPK、PI3K、Akt、eNOS mRNA相对表达量对比;(5)各组USP10蛋白相对表达量及p-AMPK/AMPK、p-PI3K/PI3K、p-Akt/Akt、p-eNOS/eNOS蛋白比值对比。

2 结果

2.1 大鼠一般情况观察 造模期间,沉默组、模型组与空载组较对照组大鼠精神状态变差,活动量减少,毛发暗淡,口唇、眼眶发紫,呼吸急促,沉默组上述情况更为严重。

2.2 大鼠肺动脉血管组织病理改变 镜下观察,除对照组外,其余3组血管管壁增厚,管腔变窄,伴有平滑肌和弹力纤维层增厚,沉默组变化更为明显。见图1。

注:A:空载组;B:沉默组;C:模型组;D:对照组

2.3 各组MPAP、RVSP、RTI、RVHI对比 各组MPAP、RVSP、RTI、RVHI比较,差异有统计学意义(P<0.05);模型组、空载组、沉默组的MPAP、RVSP、RTI、RVHI均大于对照组(P<0.05),沉默组各指标均大于模型组与空载组(P<0.05),模型组与空载组各指标比较差异无统计学意义(P>0.05)。见表2。

表2 各组MPAP、RVSP、RTI、RVHI比较

2.4 各组USP10、AMPK、PI3K、Akt、eNOS mRNA相对表达量对比 各组USP10 mRNA相对表达量比较,差异有统计学意义(P<0.05);与对照组比较,其余3组的USP10 mRNA相对表达量均下降(P<0.05),沉默组均低于模型组与空载组(P<0.05),模型组与空载组比较,差异无统计学意义(P>0.05);各组的AMPK、PI3K、Akt、eNOS mRNA相对表达量比较,差异无统计学意义(P>0.05)。见表3。

表3 各组USP10、AMPK、PI3K、Akt、eNOS mRNA相对表达量对比

2.5 各组USP10蛋白相对表达量及p-AMPK/AMPK、p-PI3K/PI3K、p-Akt/Akt、p-eNOS/eNOS蛋白比值对比 各组USP10蛋白相对表达量及p-AMPK/AMPK、p-PI3K/PI3K、p-Akt/Akt、p-eNOS/eNOS蛋白比值比较,差异有统计学意义(P<0.05);与对照组比较,其余3组的USP10蛋白相对表达量及p-AMPK/AMPK、p-PI3K/PI3K、p-Akt/Akt、p-eNOS/eNOS蛋白比值均下降(P<0.05),沉默组均低于模型组与空载组(P<0.05),模型组与空载组比较,差异无统计学意义(P>0.05)。见图2、表4。

图2 各组USP10、p-AMPK、AMPK、p-PI3K、PI3K、p-Akt、Akt、p-eNOS、eNOS检测结果

表4 USP10蛋白相对表达量及p-AMPK/AMPK、p-PI3K/PI3K、p-Akt/Akt、p-eNOS/eNOS蛋白比值对比

3 讨论

肺血管阻力增加、收缩、弹性降低及血液黏稠度增加等情况下可导致肺动脉压力升高,肺小动脉和肌型小动脉出现解剖学变化,肺血管的顺应性下降、心输出量不足,并引起慢性阻塞性肺气肿、慢性肺源性心脏病及右心衰竭等并发症,对机体健康造成严重影响[6-7]。PAH是长期慢性积累的综合征,其病因多样,发病机制比较复杂,涉及细胞、液体因子及分子遗传等多个途径的病理生理过程[8]。研究显示[9],肺动脉平滑肌细胞与内皮细胞的过度增殖、凋亡在PAH的发生、发展过程中有重要作用。而USP10参与细胞的分裂、增殖、凋亡等生命周期,并能通过USP10-AMPK信号通路参与心血管疾病的病理过程。因此了解USP10在低氧性PAH中的表达及USP10-AMPK信号通路的调控作用,对于PAH的防治有重要意义。

在细胞内的生理调控机制中,蛋白质的泛素化修饰是基本调控机制,参与某些重要蛋白质的修饰后翻译、细胞周期DNA的修复、信号转导、转录活化等多种生命进程[10]。泛素化与去泛素化对于维持蛋白质的稳态和细胞存活有重要意义,泛素-蛋白酶途径是真核细胞内蛋白质降解的重要途径,对于维持蛋白质的稳态和细胞存活有重要意义,广泛参与机体的多种代谢活动。USP10是USP家族中的重要成员之一,分子功能为半胱氨酸型内肽酶和泛素巯基酯酶,参与泛素依赖的蛋白质分解代谢及泛素周期的生命过程,能通过本身的去泛素化,调控细胞周期、细胞凋亡、DNA损伤修复、细胞免疫及神经元退化等多种生物学功能[11]。研究显示[12-13],USP10的蛋白下调能影响宫颈鳞癌的恶性程度及预后,参与调节肝脏脂肪变性、胰岛素抵抗及炎症反应。彭清等[14]研究证实,包括USP10、USP7等USP家族成员在内的异常表达及活性改变,参与多种疾病及肿瘤的发生发展,可参与上皮细胞-间充质改变,促进肺纤维化的形成。本研究结果中,与模型组和空载组大鼠相比,USP10沉默组大鼠的临床指征较为显著,肺血管管壁增厚、管腔变窄,平滑肌和弹力纤维层增厚情况更为严重,RTI指数更高,同时,USP10沉默组大鼠MPAP、PVR、RVHI等指标均显著高于模型组和空载组。以上结果说明沉默USP10可促进低氧性PAH的发展,影响大鼠的心室重构。

低氧性PAH是PAH最常见的类型,研究显示[15],早期低氧性肺动脉收缩反应与后期合并肺动脉结构重建是PAH发病的重要环节。长期的低氧条件能影响大鼠肺微血管内皮细胞生成一氧化氮(nitric oxide,NO),导致血管内皮舒缩障碍、血管内皮功能损伤,进而促进肺动脉血管的重建。eNOS是合成NO的关键酶,其活化能促进NO的合成,促进血管的舒张,抑制血管内皮功能失调[16]。AMPK是一种高度保守的细胞能量代谢调控器,由催化亚基(α1、α2、β1、β2)和调节亚基(γ1、γ2、γ3)组成,在各种代谢相关的器官中均有表达,能被机体各种刺激激活,并磷酸化激活大量的下游靶分子,减少三磷酸腺苷的利用,影响细胞内能量代谢。研究显示[17],USP10特异性地去除AMPKα的泛素化,促进AMPKα磷酸化,在能量胁迫下,通过AMPK介导的USP10 Ser76磷酸化,增强USP10的活性,USP10与AMPK形成了一个关键前馈环路,保证了AMPK激活响应于细胞能量状态的波动而放大响应细胞能量状态的波动,因此USP10-AMPK通路的异常可导致AMPK激活不正常和多种代谢缺陷。另有研究表明[18],AMPK信号通路的失调能影响NO的生成,促进内皮功能障碍的发展。PI3K/Akt是具有代表性的增殖、迁移、归巢相关信号转导通路,PI3K的激活可诱导Akt的活化其下游信号分子eNOS的丝氨酸磷酸化,促进NO的合成,从而介导内皮细胞的迁移[19]。左晓利等[20]认为,AMPK的活化可磷酸化eNOS Ser1177位点,促进NO的合成与释放,改善血管内皮功能。AMPK及其下游级联PI3K-Akt-eNOS对于内皮细胞具有重要的调控作用,内皮细胞通过AMPK/PI3K/Akt/eNOS通路生成NO,维持血管舒张。本研究结果中,与对照组比较,各组的USP10 mRNA、蛋白相对表达量及p-AMPK/AMPK、p-PI3K/PI3K、p-eNOS/eNOS蛋白比值均下降;与模型组及空载组比较,沉默组的USP10 mRNA、蛋白相对表达量及p-AMPK/AMPK、p-PI3K/PI3K、p-eNOS/eNOS蛋白比值更低,说明沉默USP10,能抑制AMPK/PI3K/Akt/eNOS信号级联,促进低氧性PAH的发展。

综上所述,USP10在低氧性PAH中的表达下调参与病情的进展,其机制可能与抑制AMPK/PI3K/Akt/eNOS信号通路有关。在今后对PAH的基因治疗研究中,可考虑从AMPK/PI3K/Akt/eNOS信号级联激活入手。

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