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连梅颗粒对2 型糖尿病GK 大鼠的降糖作用

2021-03-07吴光超郑绍琴苏颖杭付琳王琪邓长生徐志勇张红英宋健平

中成药 2021年1期
关键词:胰岛胰岛素颗粒

吴光超 杨 涛 郑绍琴苏颖杭付 琳王 琪邓长生徐志勇张红英宋健平∗

(1.广州中医药大学科技园产业园,广东广州 510445;2.广州中医药大学,广东广州 510006)

糖尿病是一种代谢性疾病,其特征为血糖水平升高,以2 型糖尿病为主要类型,其引起的并发症是糖尿病患者主要死因[1],2016 年全球患者达到4.22 亿,而在我国就有1.1 亿[2]。2 型糖尿病发病机制复杂,胰岛素抵抗是其主要因素之一,故改善胰岛素抵抗的药物研究备受关注。

Goto-Kakizaki(GK)大鼠为自发型2 型糖尿病模型,是由多基因缺陷和环境因素相互作用导致,是国际公认较为理想模型[3-4]。连梅颗粒是国医大师伍炳彩教授治疗2 型糖尿病的经验方,组方思路来源于《温病条辨》 中的连梅汤,由乌梅、麦冬、生地、黄连、山药、玄参、黄芪、苍术组成,对气阴不足、虚火上炎型2 型糖尿病有明显功效。本实验研究连梅颗粒对2 型糖尿病模型GK 大鼠的影响,并探讨其作用机制,以期为中医药相关治疗提供实验依据。

1 材料

1.1 动物 SPF 级自发性2 型糖尿病GK 大鼠,雄性,体质量130~150 g,5~8 周龄,购自上海斯莱克试验动物有限责任公司,单位生产许可证号SCXK(沪)2012- 0002;SPF 级SD 大鼠,雄性,体质量130~150 g,5~8 周龄,购自广州中医药大学实验动物中心,动物生产许可证号SCXK(粤)2013-0034,均饲养于广州中医药大学科技产业园动物实验中心,每笼4 只。

1.2 药材 连梅颗粒浸膏(广东新南方青蒿药业有限公司,批号130916,1 kg/袋,每1 g 相当于2.605 g 生药),以君药黄连中小檗碱、表小檗碱、黄连碱、巴马汀含量为评价指标,确定最优水煎煮工艺为8 味中药加10 倍水量煎煮3 次,每次1 h,滤液在80 ℃下浓缩成相对密度为1.25~1.30[5]。

1.3 试剂与药物 格列齐特片(广东华南药业集团有限公司,批号 131101;葡萄糖(天津福晨化学试剂厂,批号20120602。大鼠胰岛素检测试剂盒(天津博瑞康生物科技有限公司,批号BRK-E80-8174061104);大鼠糖化血红蛋白检测试剂盒(上海丽臣生物科技有限公司,批号05/2015);超氧化物歧化酶(批号20150615)、丙二醛(批号20150613 试剂盒(南京建成生物工程研究所)。

1.4 仪器 电子天平(十万分之一,型号JJ2000,常熟市双杰测试仪器厂);恒温水浴箱(型号HH-6,江苏金坛市荣华仪器制造有限公司);罗氏血糖仪及试纸(德国罗氏诊断有限公司);酶标仪(型号ELX800UV,美国Bio-Tek公司);组织脱水机(型号TP1020)、石蜡包埋机(型号EG1160)、光学正立显微镜(型号DMLB)、轮转切片机(型号RM2135)(德国Leica 公司)。

2 方法

2.1 造模 80 只GK 大鼠适应性饲养后,每隔3 周检测空腹血糖。12 周后,大鼠灌胃给予10 mL/kg 高脂乳剂,每天1 次,连续2 周,以诱导其自发性血糖升高。结果,有40 只FBG≥11.1 mmol/L,即符合2 型糖尿病模型,纳入实验[6]。

2.2 分组与给药 将“2.1”项下符合成模标准的40 只GK 大鼠按随机数字表法分为5 组,分别为模型组、格列齐特片组及连梅颗粒高、中、低剂量组,另取SD 大鼠作为正常对照组,每组8 只。模型组、正常组大鼠给予基础饲料喂养及等量纯净水灌胃,格列齐特片组灌胃给药剂量为16.67 mg/kg,连梅颗粒高、中、低剂量组灌胃给药剂量分别为10.52、5.26、2.63 g/kg,每天1 次,连续9 周。

2.3 指标检测 ①给药0、3、6、9 周,大鼠禁食不禁水12 h 后刀片划割尾静脉采微血,检测空腹血糖水平;②给药9 周,大鼠禁食不禁水12 h 后,取微血进行糖耐量试验(OGTT),计算曲线下面积(AUC);③OGTT 测定完毕后,大鼠主动脉取血,酶联免疫吸附法(ELISA)检测血清胰岛素(INS)水平,根据FBG、INS 水平计算胰岛素抵抗指数(IRI)、胰岛素敏感指数(ISI),公式分别为IRI =(FBG×INS)/22.5、ISI=1/(FBG×INS);④ELISA 检测血清糖化血红蛋白水平;⑤化学比色法检测血清超氧化物歧化酶(SOD)活性、丙二醛(MDA)水平;⑥采全血后快速剖取胰腺,固定于10%中性福尔马林溶液中,常规石蜡包埋,HE 染色,正置显微成像系统观察胰岛细胞组织形态、体积、排列等情况。

2.4 统计学分析 通过SPSS 25.0 软件进行处理,计量资料以()表示,多组间比较采用单因素方差分析。以P<0.05 为差异具有统计学意义。

3 结果

3.1 一般症状 正常组大鼠体形、饮食、大小便均正常,较为活跃,毛色光泽;模型组大鼠体形较瘦,反应迟钝,毛色枯槁,有脱毛现象,明显出现多饮多尿症状;与模型组比较,给药组大鼠多饮多尿症状明显改善。

3.2 连梅颗粒对大鼠空腹血糖的影响 给药前,与正常组比较,模型组大鼠空腹血糖升高(P<0.05);与模型组比较,各给药组大鼠空腹血糖无明显变化(P>0.05)。给药6周后,与模型组比较,各给药组(除连梅颗粒低剂量组)大鼠空腹血糖降低(P<0.05,P<0.01)。给药9 周后,与模型组比较,各给药组大鼠空腹血糖降低(P<0.05,P<0.01)。见表1。

表1 连梅颗粒对大鼠空腹血糖的影响(, n=8)

表1 连梅颗粒对大鼠空腹血糖的影响(, n=8)

注:与正常组比较,∗P<0. 05;与模型组比较,#P<0.05,##P<0.01。

3.3 连梅颗粒对大鼠糖化血红蛋白水平的影响 给药9 周后,与正常组比较,模型组大鼠糖化血红蛋白水平升高(P<0.01);与模型组比较,连梅颗粒低、高剂量组大鼠糖化血红蛋白水平降低(P<0.05,P<0.01),以高剂量组更明显。见表2。

3.4 OGTT 试验 给药9 周后,与模型组比较,各给药组对糖耐量减损的血糖升高有抑制作用(P<0.05),以连梅颗粒中剂量组、格列齐特片组更明显(P<0.01);格列齐特片组曲线下面积最小(P<0.01)。见表3。

表2 连梅颗粒对大鼠糖化血红蛋白水平的影响(,n=8)

表2 连梅颗粒对大鼠糖化血红蛋白水平的影响(,n=8)

注:与正常组比较,∗P<0. 05;与模型组比较,#P<0.05,##P<0.01。

表3 各组OGTT 试验结果(, n=8)

表3 各组OGTT 试验结果(, n=8)

注:与正常组比较,∗P<0. 05;与模型组比较,#P<0.05,##P<0.01。

3.5 连梅颗粒对大鼠血清INS 水平及IRI、ISI 的影响 正常组大鼠血清INS 水平高于其他组(P<0.01);与模型组比较,各给药组大鼠血清INS 水平无明显变化(P>0.05),但连梅颗粒高剂量组、格列齐特片组IRI 降低(P<0.05,P<0.01),ISI 升高(P<0.05)。见表4。

表4 连梅颗粒对大鼠血清INS 水平及IRI、ISI 的影响(, n=8)

表4 连梅颗粒对大鼠血清INS 水平及IRI、ISI 的影响(, n=8)

注:与正常组比较,∗P<0. 05;与模型组比较,#P<0.05,##P<0.01。

3.6 连梅颗粒对大鼠血清SOD 活性及MDA 水平的影响与正常组比较,模型组大鼠血清SOD 活性降低(P<0.05);与模型组比较,各给药组大鼠血清SOD 活性升高(P<0.01)。与正常组比较,模型组MDA 水平升高(P<0.05);与模型组比较,连梅颗粒中、高剂量组及格列齐特片组大鼠血清MDA 水平降低(P<0.01)。见表5。

表5 连梅颗粒对大鼠血清SOD 活性及MDA 水平的影响(, n=8)

表5 连梅颗粒对大鼠血清SOD 活性及MDA 水平的影响(, n=8)

注:与正常组比较,∗P<0. 05;与模型组比较,##P<0.01.

3.7 大鼠胰腺病理组织学 与正常组比较,模型组大鼠胰岛细胞形态不规则,与周围组织界限不清晰,胰岛内出现胰岛细胞核密集现象,但未见明显空泡性和细胞坏死现象(图1A~1B);与模型组比较,连梅颗粒各剂量组大鼠胰岛形态基本规则,边界稍清晰,未见细胞核密集现象,胰岛细胞排列较整齐,可见散在的胰岛细胞呈团状增殖,而且高剂量组胰岛体积形态较规则,胰岛细胞数目最多(图1C~1E);格列齐特片组大鼠胰岛形态明显好转,但胰岛细胞数目较少(图1F)。

图1 各组大鼠胰岛组织病理变化(HE,×100)

4 讨论

2 型糖尿病是由胰岛素分泌缺陷、胰岛素抵抗引起血糖升高的代谢性疾病,其发生大多与遗传、环境因素相关[7]。GK 大鼠属于自发型的2 型糖尿病模型,其发病机制与人类相似,是Goto 等[8]用Wistar 大鼠近交数代重复繁殖而来。连梅颗粒是以连梅汤为基础化裁而来,后者出自《温病条辨》 暑温伏暑第36 条,云“暑邪深入少阴消渴者,连梅汤主之”,而消渴正是2 型糖尿病主要症状之一,原方中乌梅合黄连酸苦泄热,乌梅合麦冬、生地、阿胶酸甘化阴,用于治疗上有心火亢盛、下有肝肾阴亏之证,伍炳彩教授匠心独运,在其基础上去阿胶之温热,加玄参之凉润,合黄芪益气健脾、山药滋养脾阴、苍术运脾化津,全方共奏滋肾泄热、益气健脾生津之功效。

持续高血糖是糖尿病发病主要特点,临床上常以糖化血红蛋白来反映患者近期血糖控制水平。本实验发现,不同剂量连梅颗粒均能够明显降低大鼠空腹血糖,以高剂量组降低HbAlc 水平程度最大,并存在一定剂量依赖性。

国内外研究表明,胰岛β 细胞功能损伤是导致糖耐量受损转变为糖尿病的根本因素,故控制血糖升高、促进胰岛β 细胞增殖分化是治疗糖尿病的关键[9-10]。本实验发现,模型组大鼠葡萄糖耐受能力、胰岛素水平、胰岛抵抗、敏感指数明显降低,符合2 型糖尿病发病特点;给药9 周后,与模型组比较,各给药组大鼠INS 无明显变化,但OGTT实验结果显示各给药组能明显抑制血糖升高,其中连梅颗粒高剂量组、格列齐特片组还可明显降低胰岛素抵抗,提高胰岛素敏感。格列齐特片是临床常用口服降糖药,为WHO 推荐的胰岛素促泌剂[11],而高剂量连梅颗粒也能促进胰岛素分泌,改善胰岛素抵抗,增加胰岛素敏感。

胰岛素是唯一有效的降糖激素,仅由胰岛β 细胞合成分泌,文献[12-13]报道β 细胞具有一定自我修复能力,但长期高血糖状态引发氧化应激功能失调会诱发其凋亡。血清SOD 是一种能消除体内自由基的抗氧化酶,可有效消除活性氧、活性氮,从而减少细胞损伤;MDA 为脂质过氧化物的终产物,是反映体内脂质氧化损伤的敏感指标,本实验发现,与正常组比较,模型组大鼠SOD 活性明显降低,MDA 水平明显升高,进一步验证氧化应激反应参与2 型糖尿病形成。高血糖可刺激机体产生更多的自由基,从而诱发多价不饱和脂肪酸生成过氧化脂质,导致胰岛β 细胞生物膜变性死亡[14],而连梅颗粒能提高GK 大鼠血清SOD 活性,降低MDA 水平,从而减轻因氧化应激反应导致胰岛细胞损伤。HE 染色发现,不同剂量连梅颗粒均能抑制胰岛细胞凋亡,促进胰岛细胞增殖分化,对其有一定保护和修复功能。

综上所述,连梅颗粒可降低2 型糖尿病GK 大鼠空腹血糖、HbA1c 水平,改善糖耐量减损后血糖升高,并呈一定剂量依赖性,其作用机制可能是通过抗氧化机制来保护胰岛细胞功能,同时改善胰岛抵抗,促进胰岛素释放,但具体分子机制仍需作进一步研究。

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