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大孔吸附树脂富集纯化玳玳花总黄酮

2021-03-07侯梦阳胡文忠修志龙郝可欣于皎雪王澳盛张梦琦

中成药 2021年1期
关键词:大孔提取液黄酮

侯梦阳 胡文忠∗修志龙郝可欣于皎雪王澳盛张梦琦

(1.大连理工大学生物工程学院,辽宁大连 116024;2.大连民族大学生命科学学院,生物技术与资源利用教育部重点实验室,辽宁大连 116600)

玳玳花为芸香科柑橘属植物酸橙Citrus aurantiumL.的干燥花蕾,主要分布在热带及亚热带地区,其味苦,性平,功效强心、利尿、清血、化痰、疏肝和胃、理气解郁等[1],含有黄酮、强心苷、生物碱、挥发油、多糖类等化合物[2-3],以黄酮为主,具有抗氧化、抗菌、抗炎、抗肿瘤、预防动脉粥样硬化等活性[4-6]。Yang 等[7]对玳玳花总黄酮超声提取工艺进行了研究;苏浬[8]采用大孔树脂层析法,在水提醇沉工艺的基础上对该成分进行了纯化。但Karimi 等[9]报道,水提法提取玳玳花总黄酮时提取率较低,而且在大孔吸附树脂柱层析前要经过一步醇沉工艺,会导致其回收率降低。

大孔吸附树脂具有理化性质稳定、纯化工艺操作简单、便于工业化生产等优点,被广泛应用于药材中总黄酮的分离纯化,如紫菀[10]、铁皮石斛[11]、淫羊藿[12]等,均取得了较好的效果。因此,本实验将比较NKA-9、HPD100、HPD400、HPD600、AB-8、D101、X-5、DM301 大孔吸附树脂对玳玳花总黄酮的吸附、解吸性能,应用吸附动力学、热力学模型对吸附过程进行研究,再优化该成分富集纯化工艺,旨在为其工业化开发利用提供理论依据。

1 材料

UV-2550 紫外可见分光光度计(日本Shimadzu公司);SHA-CA 往复式水浴振荡器(金坛市顺华仪器有限公司)。NKA-9、X-5、DM301、AB-8、D101、HPD100、HPD400、HPD600 大孔吸附树脂(沧州宝恩吸附材料科技有限公司)。玳玳花采自云南省昆明市,经黑龙江中医药大学陈效忠副教授鉴定为柑橘属植物酸橙Citrus aurantiumL.的干燥花蕾。芦丁对照品(上海源叶生物科技有限公司);氢氧化钠、无水乙醇、亚硝酸钠、硝酸铝(天津市科密欧化学试剂有限公司)。

2 方法

2.1 总黄酮含量测定

2.1.1 线性关系考察 采用亚硝酸钠-硝酸铝-氢氧化钠比色法[13]。吸取对照品溶液(称取芦丁对照品20 mg,40%乙醇定容至25 mL 量瓶中,质量浓度为0.8 mg/mL)150、300、450、600、750、900 μL,置于10 mL 量瓶中,加入5%NaNO2溶液300 μL,摇匀后静置6 min,加入10%Al(NO3)3溶液300 μL,摇匀后静置6 min,加入4%NaOH 溶液2 mL,30% 乙醇定容至刻度,摇匀,静置10 min,在510 nm 波长处测定吸光度。以吸光度为纵坐标(A),芦丁质量浓度为横坐标(X)进行回归,得方程为A=10.957 4X-0.001 9(R2=0.999 6),在12~72 μg/mL 范围内线性关系良好。

2.1.2 提取液制备 将100 g 干燥药材粉末(过30 目筛)用70%乙醇浸泡过夜后,在60 ℃下加热回流提取3 次,每次2 h,合并提取液后过滤,减压浓缩至无醇味,蒸馏水定容至1 000 mL,即得(质量浓度为5.88 mg/mL),再用蒸馏水将其质量浓度分别稀释至原有的5/6、4/6、3/6、2/6、1/6,即4.90、3.92、2.94、1.96、0.98 mg/mL。

2.1.3 精密度试验 吸取“2.1.1”项下对照品溶液600 μL,按“2.1.1”项下方法在1 d 内测定6 次吸光度,测得其RSD 为0.51%,表明该方法日内精密度良好;同法连续测定吸光度3 d,每天1 次,测得其RSD 为0.87%,表明该方法日间精密度良好。

2.1.4 重复性试验 吸取“2.1.2”项下5.88 mg/mL提取液600 μL,按“2.1.1”项下法测定6 次吸光度,测得其RSD 为0.74%,表明该方法重复性良好。

2.1.5 稳定性试验 吸取“2.1.2”项下5.88 mg/mL提取液600 μL,于0、2、4、8、12、24 h 按“2.1.1”项下方法测定吸光度,测得其RSD 为1.13%,表明溶液在24 h 内稳定性良好。

2.1.6 加样回收率试验 称取芦丁含量已知的“2.1.2”项下5.88 mg/mL 提取液6 份,每份600 μL,精密加入“2.1.1”项下对照品溶液400 μL,按“2.1.1”项下方法测定吸光度,计算回收率。结果,芦丁平均加样回收率为98.12%,RSD 为0.84%。

2.2 静态吸附、解吸实验

2.2.1 树脂筛选 称取预处理好的树脂1 g(干重),置于250 mL 具塞锥形瓶中,加入“2.1.2”项下5.88 mg/mL 提取液50 mL 后置于摇床中,在25 ℃下振荡24 h(150 r/min)。达到吸附平衡后,用去离子水清洗树脂,加入50 mL 95%乙醇解吸后置于摇床中,在25 ℃下振荡24 h(150 r/min),测定溶液中总黄酮质量浓度,即为吸附平衡浓度。

2.2.2 吸附动力学研究 称取预处理好的AB-8 树脂1 g(干重),置于150 mL 具塞锥形瓶中,加入“2.1.2”项下5.88 mg/mL 提取液50 mL 后置于摇床中,在25 ℃下振荡12 h(150 r/min),在吸附时间0、10、20、30、40、50、60、90、120、150、180、210、240 min 各取600 μL 吸附后的样品溶液,测定t时刻总黄酮质量浓度Ct(mg/mL),计算吸附能力Qt(mg/g)、平衡吸附能力Qe(mg/g),公式分别为Qt =Vi(C0-Ct)、Qe=Vi(C0-Ce)。其中,C0为总黄酮初始质量浓度,单位mg/mL;Ce为吸附平衡质量浓度,单位mg/mL;Vi为样品体积,单位mL。

采用准一级动力学、准二级动力学、粒子扩散模型描述总黄酮吸附过程,分别为ln(Qe-Qt)=-k1t +lnQe、其中,k1为准一级动力学速率常数,单位min-1;k2为准二级动力学速率常数,单位g/(g·min);kd、Cd为粒子扩散速率常数,单位mg/(g·min1/2)、mg/g。

2.2.3 吸附热力学研究 称取预处理好的AB-8 树脂1 g(干重),置于250 mL 具塞锥形瓶中,加入“2.1.2”项下6 个质量浓度提取液各50 mL,在298.15、308.15、318.15 K 下振荡(150 r/min),测定总黄酮平衡浓度Ce、Qe,绘制吸附等温线,计算吸附热力学参数。

采用Langmuir、Freundlich、Temkin 吸附等温线模型描述吸附过程,分别为、Qe=BTlnCe+BTlnKT。其中,Qe为平衡吸附能力,单位mg/g;Qm为理论最大吸附能力,单位mg/g;Ce为平衡质量浓度,单位mg/L;KL为Langmuir 常数,单位L/mg;KF为Freundlich 常数,单位[(mg/g)(L/mg)1/n];BT、KT为Temkin 常数,单位J/mol、L/mg;1/n为Freundlich 经验常数。

吸附热力学函数包括吉布斯自由能变化(ΔG)、焓变(ΔH)、熵变(ΔS),分别为ΔG =-RTlnKeq、lnKeq=-其中,R为理想气体常数[8.314 J/(mol·K)];T为绝对温度,单位K;Keq为热力学平衡常数,单位L/g。

2.3 动态吸附、解吸实验 将预处理好的AB-8树脂采用湿法装入层析柱(16 mm×300 mm,1 BV=20 mL),总黄酮粗提液以不同体积流量(2、3、4、5 BV/h)上柱,5 BV 蒸馏水缓慢洗脱以除去杂质,再取30%、40%、50%、60%、70%、80%、90%乙醇各10 BV,以2 BV/h 体积流量进行洗脱,收集洗脱液,测定总黄酮质量浓度,考察乙醇体积分数对解吸率的影响。取最佳体积分数洗脱液,以不同体积流量(2、3、4、5 BV/h)洗脱,测定流出液中总黄酮质量浓度,考察上样体积流量、上样量,以及洗脱剂质量浓度、洗脱体积流量、用量等工艺参数对吸附、解吸性能的影响。

3 结果

3.1 树脂筛选 图1 显示,AB-8、NKA-9、DM301、D101 树脂对总黄酮的吸附能力较高,均高于80 mg/g;AB-8、DM301、D101 树脂对总黄酮的解吸能力较高,均高于50 mg/g;AB-8 树脂解吸率最高,HPD400 树脂解吸率最小。最终,选择AB-8 树脂富集纯化总黄酮。

图1 总黄酮吸附能力、解吸能力、解吸率Fig.1 Adsorption capacities,desorption capacities and desorption rates of total flavonoids

3.2 静态吸附动力学 吸附动力学是研究在特定初始浓度、温度、压力下吸附剂对吸附质的吸附速率,有助于实际操作中工艺参数的优化及加工设备的选择[14]。图2 显示,AB-8 树脂对总黄酮的吸附能力随着时间延长而增加,在前60 min 更明显,之后趋于缓慢,在120 min 时达到平衡。

动力学方程及相关参数见表1,可知准二级吸附动力学模型方程计算得到的理论平衡吸附量(103.092 8 mg/g)更接近实验值(95.894 1 mg/g),能较好地描述总黄酮静态吸附过程。

图2 总黄酮静态吸附动力学曲线Fig.2 Kinetic curve for static adsorption of total flavonoids

表1 总黄酮动力学方程及相关参数Tab.1 Kinetic equations and related parameters for total flavonoids

3.3 静态吸附热力学

3.3.1 吸附等温线 对吸附等温曲线的研究有助于探讨吸附质和吸附剂之间的相互作用,从而优化操作参数,节约能源[15]。图3 显示,AB-8 树脂对总黄酮的平衡吸附能力随着其质量浓度升高而增加,在低质量浓度下更明显,为4.90 mg/mL 时达到最大,故以其为上样液质量浓度;Qe随着温度升高而下降,表明吸附为放热过程。

等温线方程及相关参数见表2,可知随着温度升高,KL、KF均减小,表明降低温度有利于总黄酮吸附;0<1/n<1,表明该吸附过程容易进行[16];与Freundlich、Temkin 模型比较,Langmuir 模型具有较高的R2,可较好地描述吸附过程。

图3 总黄酮静态吸附等温线Fig.3 Isotherms for static adsorption of total flavonoids

3.3.2 吸附热力学函数 以1/T为横坐标(X),lnKeq为纵坐标(Y)进行拟合,得方程为Y =306.694 0X +1.514 2(R2=0.991 8),再根据其斜率、截距分别计算ΔH、ΔS,结果见表3。由此可知,ΔG、ΔH均为负值,表明吸附为自发放热过程[17];ΔH绝对值小于40 kJ/mol,表明吸附为物理过程[18];ΔS为正值,表明吸附为熵增过程,即AB-8 树脂吸附总黄酮后,整个吸附系统的无序度增大。

表2 总黄酮等温线方程及相关参数Tab.2 Isotherm equations and related parameters for total flavonoids

表3 总黄酮吸附热力学参数Tab.3 Thermodynamic parameters for total flavonoids

3.4 动态吸附、解吸实验

3.4.1 泄露曲线分析 一般而言,流出液中目标物浓度达到上样液浓度的10%时,即可认为达到泄露点[19]。取“2.1.2”项下4.90 mg/mL 提取液,以不同体积流量(2、3、4、5 BV/h)通过树脂柱,动态泄露曲线见图4,可知在低体积流量下AB-8 树脂对总黄酮具有较强的吸附能力,即有利于该成分充分吸附,故本实验选择2 BV/h 作为上样体积流量,达到泄漏点时的上样量为7 BV。

图4 总黄酮动态泄露曲线Fig.4 Dynamic leakage curves for total flavonoids

3.4.2 乙醇体积分数对洗脱效果的影响 先用5 BV蒸馏水缓慢洗脱以除去杂质,再取30%、40%、50%、60%、70%、80%、90% 乙醇各10 BV,以2 BV/h 体积流量进行洗脱,收集洗脱液,测定总黄酮质量浓度,结果见图5。由此可知,随着乙醇浓度体积分数增加,解吸率不断升高,为70%时达到最大值86.26%,但之后反而开始下降,故选择70%作为乙醇体积分数。

3.4.3 解吸曲线分析 先用5 BV 蒸馏水洗脱除去水溶性杂质,再用70% 乙醇以不同体积流量(2、3、4、5 BV/h)进行洗脱,每过一定时间收集洗脱液,计算解吸率,结果见图6。由此可知,随着体积流量增加,解吸效果降低,这是因为体积流量较高时会导致洗脱剂与AB-8 树脂的接触时间变短,不能充分洗脱被吸附的总黄酮,而且2、3 BV/h的解吸效果无明显差异,为了提高操作效率,本实验选择3 BV/h 作为解吸体积流量,此时解吸液用量为6 BV。

图5 乙醇体积分数对总黄酮解吸率的影响Fig.5 Effect of ethanol concentration on desorption rate of total flavonoids

图6 总黄酮动态解吸曲线Fig.6 Dynamic desorption curves for total flavonoids

3.5 验证试验 取“2.1.2”项下4.90 mg/mL 提取液7 BV,以2 BV/h 体积流量缓慢加到AB-8 树脂柱中,待吸附完全后用5 BV 蒸馏水洗脱除去水溶性杂质,再取6 BV 70%乙醇,以3 BV/h 体积流量进行洗脱,收集洗脱液,浓缩干燥,测得总黄酮纯度由9.87%升高至36.75%,回收率为83.17%,表明该纯化工艺稳定可行。

4 讨论

大孔吸附树脂是将吸附性、筛选性相结合的分离材料,其吸附能力由孔径、比表面积、表面极性等因素所决定,作用力主要包括范德华力和氢键[20]。本实验发现,AB-8 大孔吸附树脂对玳玳花总黄酮吸附、解吸性能最强,与苏浬[8]报道一致,它具有相对较大的比表面积,有利于该成分吸附,并且相对较大的孔径也有利于其解吸。

AB-8 大孔吸附树脂对玳玳花总黄酮的吸附过程最符合二级动力学模型,整个吸附过程被分为2 个阶段,拟合曲线均未通过原点,表明颗粒内扩散不是唯一控制吸附过程的步骤,在一定程度上也受到边界层扩散的影响[21],同时也符合Langmuir等温线模型,属于单分子层吸附。经过1 次层析后,玳玳花总黄酮纯度从9.87% 提高至36.75%,回收率为83.17%,表明AB-8 大孔吸附树脂可有效富集纯化该成分,有望应用于其工业化制备中。

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