液质联用法检测牛奶中金刚烷胺的药物残留
2020-10-12张秀妍葛祥武大连市检验检测认证技术服务中心辽宁大连116023王慧龙大连理工大学辽宁大连116023
张秀妍 葛祥武 王 骏 大连市检验检测认证技术服务中心(辽宁,大连,116023)王慧龙 大连理工大学(辽宁,大连,116023)
金刚烷胺是金刚烷的衍生物, 属于三环胺类,是人用抗病毒药物,许多国家在家禽畜牧业生产中已明确禁止使用金刚烷胺,但仍然存在非法使用的情况[1],我国农业部公告第560 号《兽药地方标准废止目录》规定,金刚烷胺不得检出。
目前,对金刚烷胺的检测较多,但多集中于鸡肉、鸡蛋等畜产品,对牛奶中金刚烷胺检测的研究较少,本论文对牛奶中金刚烷胺的检测方法进行建立、优化。
1 实验方法
1.1 样品采集及准备
实验中用到的牛奶为生鲜乳, 采自养殖场,冷冻备用。
1.2 仪器设备
I-Class 高效液相色谱(美国Waters 公司);TQS 三重四级杆串联质谱仪(美国Waters 公司,配有电喷雾ESI 源);超纯水仪(美国Millipore 公司);冷冻离心机(日本HITACHI 公司);氮吹仪;涡旋振荡器;固相萃取装置;电子天平等。
1.3 药品与试剂
金刚烷胺溶液标准物质(1 000μg/mL,上海安谱实验科技股份有限公司)、金刚烷胺-D15 溶液标准物质(10μg/mL,农业部农产品质量标准研究中心)。
Bond Elut C18 小柱 (Agilent,100mg/3mL);乙腈(色谱纯,Fisher);冰乙酸(优级纯,天津凯信化学工业有限公司);磷酸二氢钾(优级纯,天津科密欧公司);甲酸(优级纯,Thermo 试剂)等。
0.1%的甲酸乙腈溶液:取1mL 甲酸用乙腈定容至1L;
0.1%的甲酸水溶液:取1mL 甲酸用超纯水稀释至1L;
1.8%的三氯乙酸乙腈水溶液:称取20g 三氯乙酸溶于10%的乙腈水溶液中;
磷酸盐缓冲溶液0.1mol/L:称取13.6g 磷酸二氢钾,用水定容至1L,用10.0mol/L 的氢氧化钠调PH至6.9-7.1 。
1%的冰乙酸乙腈溶液:取10mL 冰乙酸用乙腈稀释至1L。
1.4 配制标准溶液
移取金刚烷胺溶液0.1mL 用乙腈定容至100mL, 配成浓度为1.0μg/mL 的混合外标中间溶液,用乙腈稀释成100ng/mL 外标混合使用溶液。 移取金刚烷胺-D15 溶液1mL,用乙腈定容至100mL,配成100ng/mL 内标使用溶液。
1.5 样品前处理
1.5.1 提取
准确称取牛奶2.0g,置于50mL 塑料离心管中,加入0.1mL 内标使用溶液, 震荡混匀; 加入10mL 1%的冰乙酸乙腈溶液, 以2 000rpm 的速度涡旋振荡1min,4℃,9 000rpm 离心10 分钟,上清液移入另一离心管中。 再加入10mL 1%的冰乙酸乙腈溶液,重复提取一次, 离心后合并上清液,45℃氮气吹干,加入2.5mL 磷酸盐缓冲液,涡旋振荡,待净化。
1.5.2 净化
C18 小柱依次经2.5mL 乙腈、2.5mL 磷酸盐缓冲液活化后, 将1.5.1 的提取液过柱, 待自然流干后,用2.5mL 超纯水洗柱,加压挤干。用1mL 0.1%的甲酸乙腈水溶液(3∶7)洗脱,收集洗脱液,过0.2μm有机系滤膜后上机测定。
1.6 仪器条件
色谱条件:Waters BEH C18 反相色谱柱(2.1mm×100mm,粒度1.7μm);柱温为35℃;进样量为2μL; 流动相为0.1%甲酸乙腈溶液-0.1%甲酸水溶液(8:92,V/V);流速为0.3 mL/min。
质谱条件:电喷雾离子源(ESI),正离子扫描模式;去溶剂气温度:500℃;雾化气、干燥气为高纯氮气,气体流量为800L/Hr;碰撞气为氩气,输出压力为0.07MPa;离子模式:多反应监测扫描模式;选择反应监测母离子(Parent ion)、子离子(Product ion)、碰撞能量(CE)和锥孔电压(CV)质谱参数。 (见表1)。
表1 金刚烷胺和氟喹诺酮类药物质谱条件
2 结果与讨论
2.1 提取试剂的确定
测定牛奶的基质干扰物主要为脂肪和蛋白质,为了提高检测灵敏度,降低基质干扰,需要将样品进行适当的净化和浓缩。 因金刚烷胺在乙腈中的溶解性较好,且乙腈有沉淀蛋白的作用,同时对样品中脂肪的提取率比较低, 故选择乙腈为提取溶剂。在商检标准SN/T4253-2015 中[2],用三氯乙酸乙腈水溶液提取金刚烷胺等抗病毒类药物,本论文综合考察乙腈、1%的甲酸乙腈溶液、1.8%的三氯乙酸乙腈水溶液、2%的冰乙酸乙腈溶液的提取效果, 三氟乙酸的乙腈水溶液和1%的甲酸乙腈溶液, 提取效果均较好,但考虑到三氟乙酸处理不彻底会造成质谱的损害[3],本论文选用1%的甲酸乙腈溶液为牛奶中金刚烷胺的提取溶液。
2.2 固相萃取小柱的确定
在研究牛奶中金刚烷胺的检测方法时,仲伶俐等人采用HLB 小柱,对磷脂和蛋白具有很好去除作用。 赵静等人在对牛奶和奶粉中维吉尼霉素残留量的测定中,采用C18 小柱对牛奶进行净化[4],商检标准SN/T4253-2015 中,用混合阳离子交换固相萃取小柱净化, 在比较了这三种小柱的净化洗脱效果后,本论文选用具有高键合度、低流失、高回收率、选择性广、对金刚烷胺净化洗脱效果好、回收率较高的C18 小柱。
2.3 工作曲线的绘制
称取5 份牛奶空白样品,每份2g,分别置于50mL离心管中,加入金刚烷胺标准使用溶液,处理后上机的浓度梯度依次为0.5、1.0、2.0、5.0 和10.0 ng·mL-1,其中同位素内标的含量为10.0 ng·mL-1。 金刚烷胺以金刚烷胺-D15 为内标物进行定量计算。 按照1.5 进行样品前处理、1.6 仪器条件上机检测,数据处理选用内标法,工作曲线方程为y=1.03017x-0.03579,线性相关系数R2为0.999631, 其中y 为外标和内标峰面积的比值,x 为外标和内标浓度的比值,结果表明,金刚烷胺在1.0μg·kg-1~10μg·kg-1范围内线性关系良好。
2.4 方法的定量限
采用空白样品添加低浓度的标准溶液,按1.5、1.6 进行测定,以信噪比S/N≥10 确定金刚烷胺的定量限,为1.0μg·kg-1[5-6],满足金刚烷胺药物残留的检测要求。
2.5 准确度和精密度
本方法的准确度通过测定加标样品的平均回收率来确定,精密度通过计算平均回收率的相对标准偏差来确定。 在称样量为2g,加标样品的添加浓度分别为1、2、10μg·kg-1、每个添加浓度做6 个平行样品,按1.5、1.6 进行准确度和精密度实验[7],平均回收率在80%~112%之间, 相对标准偏差小于10%, 说明该方法具有较高的准确度和较好的精密度,满足牛奶中金刚烷胺药物残留的检测要求。 添加浓度为2μg·kg-1的加标样品测得的质谱图,保留时间为145min。 (见图1)。
图1 金刚烷胺和氘代金刚烷胺加标溶液质谱图
3 结论
本研究建立了牛奶中金刚烷胺的检测方法,定量限为1.0μg·kg-1, 线性范围为0.5ng·mL-1~10ng·mL-1,批内相对标准偏差小于10%,重复性较好,满足牛奶中金刚烷胺的检测要求。