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肌酐检测方法学评价及其研究进展

2019-06-24谭红军罗春华杨林董贞荣张玉红张新明汪彬彬

系统医学 2019年8期
关键词:苦味酸水解酶酶法

谭红军 ,罗春华 ,杨林 ,董贞荣 ,张玉红 ,张新明 ,汪彬彬

1.湖北三峡职业技术学院医学院,湖北宜昌 443000;2.三峡大学第一临床医学院,湖北宜昌 443003;3.湖北三峡职业技术学院附属医院,湖北宜昌 443000

肌酐 (Creatinine,Cr)是水溶性的有机含氮化合物,分子式为C4H7ON3,分子量为113.1188,又称2-氨基-1-甲基咪唑啉-4-酮,甲基胍基乙酸内酰胺。血中肌酐是肌肉组织中磷酸肌酸和肌酸通过非酶促、不可逆的脱磷酸反应生成的代谢终产物,少部分由肉类食物代谢产生,肌酐由肾脏排出。与尿素相比,肌酐从肾小球滤过后不被肾小管重吸收,受饮食因素影响也更小,因此血Cr和内生肌酐清除率Ccr更能准确反映肾小球滤过率(GFR)即肾脏的排泄功能。美国肾脏基金会肾脏病预后质量倡议(K/DOQI)专家组和我国均将GFR作为慢性肾脏病 (CKD)诊断与分期的依据,且均推荐根据血清Cr计算Ccr以评估GFR。全世界有超过5亿人患有不同程度的慢性肾脏病,发病率位居前10,我国CKD的发病率为10%~13%,所以准确检测Cr对CKD诊断与分期具有重要意义。Cr检测方法至今已报道过10余种,以下从肌酐检测方法学层面进行评述。

1 检测方法与评价

1.1 Jaffe反应

Jaffe反应法是检测肌酐的经典方法,1886年Jaffe发现在碱性环境中,肌酐和苦味酸反应生成橘红色的苦味酸肌酐(Janovski)复合物,在500~520 nm处检测,Greenwald经系统研究后认为是肌酐与苦味酸形成络合物所至。由于基质效应,血清存在不少的假肌酐,使检测结果偏高,如肌酐同系物乙内酰脲、及乙酰乙酸、葡萄糖、蛋白质、头孢菌类抗生素等;而胆红素、维生素C、血红蛋白等可使结果偏低。假肌酐属于非特异性范畴,胆红素、维生素C、血红蛋白则属于干扰,假肌酐约60%存在于红细胞中,约20%存在于血浆或血清,约5%存在于尿液,因此测定血液肌酐时最好用血清或血浆且不溶血。Nah等[1]证实胆红素负干扰Jaffe法当血Cr<53 μmol/L时与胆红素浓度相关,Cr53~97.2 μmol/L时胆红素干扰显著,而酶法则显示无此干扰。Jaffe's法延用至今100多年,特异性不高以及干扰问题是其方法学的固有属性,为此Jaffe法经过了不断改良。

1.1.1 终点法从全血到血清,进行不去蛋白和去蛋白检测。利用钨酸溶液离心去蛋白终点法,回收率受无蛋白滤液pH影响,pH在3~4.5时为85%~90%,pH小于2时为100%,线性范围1320 umol/L。为减少非特异性反应,还采用过①利用白陶土、Fuller’s土、硅酸铝土或皂土吸附无蛋白滤液中的Cr,②利用阳离子交换树脂吸附无蛋白滤液中的Cr,再洗脱测定。这些方法样品处理繁琐,不适于自动仪器上进行批量样本测定。

1.1.2 二点(速率)法 根据肌酐、假肌酐与苦味酸形成络合物的速度不同,即快反应假肌酐物质如乙酰乙酸在20 s内完成反应,慢反应假肌酐物质(其它多数假肌酐)在80 s后才发生呈色反应,在此两个时间段内Cr与苦味酸显色反应占绝对优势,故选择20~80 s“窗口期”的反应速率来计算真肌酐的含量(不同于酶活性浓度速率法测定,肌酐的二点法是与校准液同步测定的)。回收率96.7%~100.4%,平均98.5%,线性范围1 768 μmol/L,CV5%。该方法成本低廉,操作简便,不需去蛋白等处理,适于自动分析,是血肌酐测定的常规方法,也是二点法在实际检验工作中的典型应用,在尿样重金属检测时的尿肌酐检测中也有重要价值[2]。

相关学者研究我国1 402家临床实验室肌酐检测系统的性能,室间质量评价EQA显示碱性苦味酸法CV为1.03%~18.23%,酶法CV为1.50%~8.08%,与酶法相比,可见Jaffe法虽经各种改良,但并没有从根本上改变非特异性反应的问题。

1.2 硫酸铜肌酐复合物氧化Metol光度法

相关研究者[3]于2017年进行硫酸铜肌酐复合物氧化Metol光度法分析,回收率101%~106%,日内CV2.5%~4.8%,日间 CV3.2%~7.8%,线性范围 4.4~620 μmol/L,与其他分光光度法相比,非特异反应与干扰可以忽略不计,结果不受样品基质影响,该固定时间法手工与自动分析均可。

此原理由Birdsall和Weber提出,硫酸铜与肌酐生成硫酸铜肌酐复合物,此复合物选择性氧化对-甲基氨基苯酚硫酸盐(Metol米吐尔)并被还原为硫酸亚铜肌酐复合物,导致形成亚胺基团并呈现深紫色,硫酸亚铜肌酐复合物的量与亚胺基团的生成量成正比,室温(27±5℃)30 min,在 530 nm 处定量检测。

1.3 酶法

酶法是基于肌酐经酶促反应而建立,目前报道有4条反应途径。

1.3.1 肌酐酰胺水解酶法 第一个酶法于1975年由Moss等报道,在肌酐酰胺水解酶(Creatinine amidohydrolase,EC3.5.2.10)也称肌酐酶(Creatininase)、肌酸激酶(CK)、丙酮酸激酶(PK)、乳酸脱氢酶(LDH)催化下,肌酐经肌酸、磷酸肌酸、丙酮酸生成乳酸,还需要还原型辅酶I、ATP和磷酸烯醇式丙酮酸参与反应,340 nm处动力学法检测,由标准曲线确定浓度。线性范围100 mg/L,回收率102%,1.0g/L的肝素、草酸盐、柠檬酸盐、乙二胺四乙酸盐、抗坏血酸盐或葡萄糖对测定没有显著影响;但30 g/L时对试验有抑制作用。该原理偶联四步反应使影响因素增加,内源性肌酸、肌酸磷酸、丙酮酸等会使结果偏高,以双试剂法消除之,即以肌酐酰胺水解酶构成试剂R2,其他成份组成试剂R1。该法曾被作为参考方法候选,但还原型辅酶I的高度不稳定和试剂高成本为临床实际应用带来障碍。

1.3.2 肌酐亚氨基水解酶-GLDH法1982年Tanganelli等报道了由肌酐亚氨基水解酶(creatinine iminohydrolase,EC3.5.4.21)催化肌酐生成N-甲基乙内酰脲和铵根,产物铵根再参与形成谷氨酸,20~37℃,15 min到达终点,340 nm处吸光度降低速率标准对照求得肌酐含量。反应的另一个工具酶是谷氨酸脱氢酶(GLDH,EC1.4.1.3),需 α-酮戊二酸及还原型辅酶Ⅱ,主要影响为内源性氨的干扰,Tanganelli采用双试剂法,试剂R1中含有GLDH、α-酮戊二酸、NADPH,消除内源性氨影响,再加试剂R2含肌酐亚氨基水解酶启动检测,为消除基质中其他脱氢酶(NADH)的影响,GLDH采用NADPH作辅酶。线性范围884 μmol/L,血清和尿液肌酐的平均回收率99%,肌酐335 μmol/L和80μmol/L时,批内 CV2%,批间 CV6%,肌酐亚氨基水解酶法 (y=0.987x-13.2)与Jaffe动力学法 (y=1.01x-12.8)结果相当,在去蛋白和Fuller’s土吸附后的Jaffe测试为(y=0.985x-3.08)。该原理仅需二步酶偶联反应,试剂组分少,影响因素和试剂成本下降,主要缺点是还原型辅酶Ⅱ不够稳定。

1.3.3 肌酐酰胺水解酶-肌酸脒基水解酶-Trinder反应法 1983年Fossati等报道了一个基于过氧化氢测量的新酶促比色法,在肌酐酰胺水解酶、肌酸脒基水解酶(creatine amidinohydrolase,EC3.5.3.3)也称为肌酸酶(Creatinase)、肌氨酸氧化酶(sarcosine oxidase,EC1.5.3.1)、过氧化物酶POD催化下,肌酐经肌酸、肌氨酸生成过氧化氢,再利用著名的Trinder反应,色原体为 3,5-二氯-2-羟基苯磺酸(钠)盐(DHBA)和 4-氨基苯腙,室温30 min内510 nm处比色测定。线性范围高达2.21 mmol/L,回收率平均99.8%,肌酐69 μmol/L时,批内CV3.3%,批间CV4.3%,与Wahlefeld的酶法紫外法和Fuller’s土Jaffe法结果一致(r大于0.99)。此检测波长为可见光,灵敏度高,线性范围宽,试剂组分简化,稳定性高,试剂成本下降,目前商品试剂盒多采用此法,是酶法的代表。

但指示系统也存在rinder反应固有的优缺点,除维生素C等,药物酚磺乙胺[4]、羟苯磺酸钙[5]可消耗过氧化氢形成明显负干扰,但酚磺乙胺对肌酐亚氨基水解酶-GLDH(紫外)酶法无影响[6]、羟苯磺酸钙对苦味酸法基本无干扰[7]。

1.3.4 N-甲基乙内酰脲酰胺水解酶-Trinder反应法1995年Ogawa等建立起一个基于通过N-甲基乙内酰脲的肌酐降解途径,原理如下:

肌氨酸再经肌氨酸氧化酶生成过氧化氢,POD催化Trinder反应,510 nm处比色测定。五个工具酶中N-甲基乙内酰脲酰胺水解酶 (N-methylhydantoin amidohydrolase,EC3.5.2.14)和N-氨基甲酰肌氨酸酰胺 水 解 酶 (N-carbamoylsarcosine amidohydrolase,EC3.5.1.59)是两个关键酶,其中N-甲基乙内酰脲酰胺水解酶打开咪唑啉环需消耗1分子ATP,酰胺水解酶需依赖ATP较少见。基质中氨和肌酸不参与反应,故特异性和灵敏度高,但国内该法的应用较少,可能与关键酶来源困难有关。

可见,酶法从根本上解决了反应特异性的问题,适于自动分析,是目前临床上检测Cr的主流方法,但仍存在内源、外源性干扰、试剂不稳定等问题,同时酶试剂成本比苦味酸试剂贵得多。

1.4 化学发光法与荧光匀相法

化学发光技术因其灵敏度高、线性范围宽、分析速度快等特点,替代同位素技术且无放射性污染而在临床上被快速应用,程武等建立了可手工检测肌酐的化学发光匀相法和荧光匀相法。化学发光匀相法的线性范围1 225 μmol/L,回收率100.2%,批内和批间为CV2.06%、3.29%;荧光匀相法的线性范围1 280 μmol/L,回收率为101.2%,批内和批间CV1.63%、4.27%。但尚未见临床应用的报道。

1.5 毛细管电泳法

毛细管电泳法检测肌酐的研究和应用仅十余年时间,张燕玲等用国产TH-2000毛细管电泳仪,将血清直接 (或过滤后)进行二氧化硅毛细管胶束电泳,235nm处紫外检测定量,线性范围25~1 600 μmol/L,高、中、低浓度的回收率分别为96.5%、99.4%、96.0%,批内、日内CV均小于5%,检出限12.3 μmol/L,与全自动生化分析仪 (碱性苦味酸法)测定结果相关系数r=0.997 7。赵绍林等实验显示,线性范围4.32~8840 μmol/L,回收率 99.6%,日内、日间 CV 均小于4.8%,检出限0.977 μmol/L。该方法简单快速,分离效果好,线性范围宽,困扰Jaffe法和酶法中的非特异性及尿素、尿酸、咖啡因、维生素C、血红蛋白、胆红素、脂血等的干扰问题都不存在,但相对于分光光度法需使用特殊设备,临床常规使用仍有不便。

1.6 拉曼散射法

2005年Rainer Stosch等提出了表面增强拉曼散射(surface-enhanced Raman scattering,SERS)法检测肌酐。以2-13C,2,3-15N2同位素标记的肌酐为内标,0.02 mol/L的NaCl诱导银胶体粒子发生部分聚集,20 μl反应液石英杯中混匀检测,以标记物肌酐和天然肌酐特征拉曼散射峰强度对比计算结果。CV小于2%。该原理与ID-MS类似,虽无需质谱仪,但因使用同位素,不便于常规检测。

1.7 电极法

利用离子选择电极制备相应的酶电极检测肌酐,是建立在酶促反应基础上的电化学技术。操作简单,速度快,适合POCT,但具有酶法抗内源性物质干扰能力较差的特点,临床应用较少。

1.8 高效液相层析(HPLC)法

HPLC通过阳离子交换层析柱分离肌酐,233~236 nm处检测。线性范围1~2000 μmol/L,回收率97%~102%。HPLC法分离性能强,大大降低了检测的非特异性和干扰,准确度和精密度均较Jaffe法和酶法高,但样品前处理及检测过程较繁琐,用时较长,不太适合临床大批量样本检测。IFCC将离子交换层析法确定为Cr测定的参考方法。

1.9 同位素稀释质谱(isotope dilution mass spectrometry,ID-MS)法

ID-MS是将已知质量和丰度的同位素标记物作为稀释剂与样本混合,平衡后通过质谱检测标记物混合前后同位素丰度的变化,计算样本中元素(或溶质)含量。ID-MS法不受基质效应等影响,特异性、准确度、精密度都很高,几乎无系统误差,是IFCC常用的决定性方法,其测定结果与真值最为接近。由于技术条件、辐射污染等问题,这类方法通常只用于产生一级参考测量程序、评价参考方法和对一级校标准品定值。

同位素稀释-气相色谱-质谱法(isotope dilutiongas chromatography mass spectrometry,GC-ID-MS)以13C和15N2肌酐作为标记物,通过阳离子交换柱分离提纯肌酐,再用GC-ID-MS检测。该方法的准确度高,但样本处理比较复杂,费时且成本高。

同位素稀释-液相色谱-质谱法(isotope dilutionliquid chromatography mass spectrometry,LC-ID-MS)样本经离心、沉淀蛋白质、过滤后便可直接进样检测,样本前处理较GC-ID-MS简单,且检测偏差与GCID-MS相当。国际上将此方法作为肌酐检测的决定性方法。

2 国内外血清肌酐检测参考测量系统及量值溯源性研究现状

国内外的能力验证PT和EQA执行的评价标准均依据CLIA’88允许误差范围,肌酐:靶值±26.5 μmol/L或靶值±15%(取最大值)。2005年Greg等报道,美国病理学家协会(CAP)发放血清标本检测肌酐,回收5 624有效结果 (约1125个实验室),ID-MS赋值79.7 μmol/L的标本,在50种仪器方法相同组内存在-5.3~27.4 μmol/L的偏差。目前,美欧等国对血清肌酐的参考测量系统经详细研究,采用GC-ID-MS和LC-ID-MS两种方法为肌酐定值以实现结果溯源。我国也已起步,继血清胆固醇检测具有比较完整的参考系统后,2013年颁布了我国卫生行业标准WS/T414-2013《血肌酐测定参考方法——同位素稀释液相色谱串联质谱法》,同年宋云霄等[8]对ID-MS、酶法和碱性苦味酸法比较显示,酶法与LC-ID-MS的测定结果可比性较好,Y酶法=0.964XIDMS+0.385,r=0.994,平均偏差-2.93%,Jaffe法结果明显偏高,与LC-ID-MS比较为YJaffe=0.955XIDMS+13.14,r=0.979,平均偏差 13.9%,溶血和高脂对酶法和Jaffe法均有干扰使结果偏低。2015年金中淦[9]对152家实验室进行肌酐正确度调查,依据国际检验医学溯源联合委员会(JCTLM))推荐方法,应用LC-ID-MS方法赋值58.80umol/L的样本,酶法和Jaffe法的检测结果与相对偏移分别为67.60 μmol/L,14.97%;71.38 μmol/L,21.39%;LC-IDMS赋值300.69 μmol/L的样本,酶法和Jaffe法的检测结果与相对偏移分别为294.92 μmol/L,-1.92%;307.86 μmol/L,2.38%, 验证了 LC-ID-MS测定血清肌酐的方法准确度、精密度均较好,同时提示临床实验室低浓度肌酐检测的准确度和一致性值得重视;牛长春等[10]提出双浓度水平校准可纠正苦味酸法在低值范围存在的正偏移;李有强[11]对肌酐在不同检测系统间的测定不确定度和量值溯源进行了评估,结果显示具有可比性;欧阳后先[12]还研究了全自动生化分析仪丙氨酸转氨酶-肌酐(ALT-Cr)顺序检测会使肌酐结果显著偏高,可改换为α-L-岩藻糖苷酶-肌酐(AFU-Cr)顺序检测以消除;王正印等[13]总结了多种药物对Jaffe法与酶法带来正向或负向干扰,造成检测结果的偏倚。

方法的多样性是技术不断发展进步的必然结果,量值的溯源性是检验医学的永恒主题。临床上肌酐的检测方法、仪器、试剂(盒)种类各异客观存在,为使不同方法、系统之间的测定结果准确、可比,建立肌酐检测的体外诊断参考测量系统并保证ISO17511计量学溯源性,深入研究内源物质及药物对肌酐检测的干扰机制,不断追求检测结果的准确度和精密度,是国际国内肌酐检测的发展趋势。

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