异氟醚全凭吸入诱导下大鼠经口气管插管的方法比较*

龚 廷 薛佩彤 张 振

(湖北医药学院附属襄阳市第一人民医院麻醉科， 襄阳 441100)

在医学、生物学试验研究中,大鼠已是国际通用的标准化实验动物。对大鼠进行呼吸机控制呼吸或者行呼吸功能监测等实验中，大鼠气管插管的成功与否是实验成败的关键。目前常用的插管方法有:颈部切口钢丝引导插管法[1-2]、经口明视插管法[3]、盲插法、内窥镜辅助插管法[4-5]、颈部切口插管法[6]和经颈部透照气管插管法[7]等，但其中一部分是有创性操作，增加了对气管及咽喉部周围组织的损伤，影响插管的速度及可重复性，甚至如操作不当会造成动物死亡，进而影响整个实验的进展。而盲插法的成功率低，反复插管易损伤气道及其周边黏膜，容易造成喉痉挛水肿、出血和分泌物增多阻塞气管导致窒息等并发症。因此无创而又快捷的插管方法为大家所推崇。多年来诸多学者对大鼠气管内插管的方法和插管器械做了大量的研究和改进，但由于大鼠呼吸频率较快、口腔空间狭小、声门位置较高，插管时声门暴露困难，加之大小鼠专用的气管插管内窥镜装置，价格昂贵，不适于教学实验。我们在反复实践中，对直视插管方法进行了多方面的摸索研究，通过改造，自创小器械，取得满意的效果，并采用经颈透照和经口可视喉镜两种直视气管插管方法，为大鼠进行插管操作。对两种方法的安全性和有效性进行了比较。

1 材料与方法

1.1 动物分组

雄性SD大鼠40只，体质量280～350 g，由军事医学科学院实验动物中心提供,实验动物生产许可证号：[SCXK-(军)2012-0004)]，实验在天津武警后勤学院附属医院武警救援所动物实验室内进行。根据随机对照原则，将大鼠分为经口可视喉镜组和经颈透照直视组两组。

1.2 其他材料

异氟醚挥发罐(HARVARD APPARATUS)、双头冷光源(北京众实迪创科技发展有限责任公司ZS 310)、小动物人工呼吸机(北京众实迪创科技发展有限责任公司DW3000-B)、干净纱布、自制可视喉镜、开口器、静脉留置针、小棉签、玻片一个。

1.2.1自制可视喉镜:购置家庭应用发光挖耳勺(light earpick)[执行标准：Q/YXY 001-2010]，选择其中较小的透明耳勺勺头，将其中间部分在酒精灯上烤热塑形，使其前端成30度角，整个形状成弧形(如图1、2、3)。前端处理光滑，以防刮伤大鼠口腔内黏膜组织。

图1 家用挖耳勺勺头(light earpick)Fig.1 Household ear spoon scoop

图2 自制可视喉镜镜片Fig.2 Homemade video laryngoscope lens

图3 自制可视喉镜成品Fig.3 Homemade video laryngoscope

图4 自制开口器Fig.4 Homemade opener

1.2.2气管导管:采用16～18G 静脉留置针，针头钝化，套管比针头略长0.3 cm，弯曲约15 度。根据大鼠体质量选择合适的静脉留置针[8]。

1.3 大鼠麻醉

异氟醚挥发罐进气口接压缩氧气管道,出气口连接三通, 一端接15 cm×15 cm×40 cm有机玻璃动物麻醉箱, 另一端接自制大鼠麻醉面罩。将大鼠置于麻醉箱中，打开氧气，调节流量为0.6～1.2 L/min, 异氟醚吸入浓度为2%～3%, 待大鼠的意识消失，钳夹脚掌无反射后, 取动物仰卧位, 固定于动物手术台面上。用自制环形面罩扣住大鼠面部(鼻子), 吸入异氟醚维持麻醉，待气管插管结束连接呼吸机控制呼吸。

1.4 经颈透照组

固定大鼠，用橡皮筋固定大鼠上门齿，将双头冷光源靠近大鼠下颌部，术者左手持平镊将鼠舌向左外上方拉出口腔。右手持自制开口器[8](如图4)，暴露声门，光源透过大鼠颈部皮肤和肌层，能够看到大鼠的声门随着呼吸开启与闭合。此时术者左手捏住开口器，保持喉部暴露状态，右手持插管，弯曲端朝上，从开口器中进入，趁声门打开瞬间迅速将气管插管插入气道，退出针芯，将留置针套管留在气道内。将玻片放置于管口，如插管是在气道中，则有水蒸气凝结，随后连接呼吸机控制呼吸；若无则判定插入不成功，应立即拔管，吸氧，稍后重新插管。

1.5 经口可视喉镜组

固定大鼠，方法同上，术者左手持平镊将鼠舌向左外上方拉出口腔，右手持自制可视喉镜，弯曲端朝上，沿舌面缓缓进入，当进入达舌根部时，轻轻上挑喉镜，可见薄而粉嫩的会厌，其下方便可见随呼吸一张一合的声门。趁声门打开瞬间迅速将气管插管插入气道，退出针芯，将留置针套管留在气道内。将玻片放置于管口，如插管是在气道中，则有水蒸气凝结，随后连接呼吸机控制呼吸；若无则判定插入不成功，应立即拔管，吸氧，稍后重新插管。

1.6 观察指标

分别用秒表计时，记录两组插管时间(从大鼠麻醉固定好，准备插管开始到确定插管成功所需时间，以秒为单位)、插管次数、一次插管成功率。

1.7 统计方法

2 结果

两组气管插管时间、插管次数及一次插管成功率的比较，经口可视喉镜组的插管操作时间、插管次数、一次插管成功率均优于经颈透照组(P<0.05)，见表1。

表1 气管插管时间、插管次数及一次成功率的比较Table 1 Comparison of the time, frequency of intubation and the success rate of the first

注： 与经颈透照组比较，*P<0.05

Note：Compared with the transilluminated group,*P<0.05

3 讨论

在临床麻醉过程中, 良好的全麻诱导是气管插管的必要条件,亦可减少插管的并发症[9]。啮齿类动物与人类相比,吸入麻醉药的剂量个体差异较小, 其中大鼠最小肺泡浓度(minimum alveolar concentration，MAC)与人类的MAC 之比为100∶67[10]，本实验中,采用异氟醚全凭诱导，足够的麻醉深度有利于插管时避免喉痉挛的发生, 同时便于观察大鼠的声门运动而方便插管。在气管插管遇到困难时，大鼠亦可快速苏醒。而静脉麻醉时，个体差异较大,往往导致麻醉深度不易控制, 从而导致麻醉过浅、长时间未能进入麻醉状态, 或者麻醉过深而苏醒延迟甚至死亡。本试验中对比使用了两种无创直视气管插管的方法，两种方法都可顺利完成气管插管。

采用参考文献[8]自制的开口器，经颈透照插管存在以下问题：

1)自制开口器标准不一，不同的制作往往存在细小的差别，从而导致使用过程中达不到文献中使用效果。

2)开口器的管径太小对插管操作有一定限制。

3)经颈透照，毕竟是间接照射，光线较暗，观察气道口存在偏差。

4)光源要求较高，需要冷光源且聚光，普通动物手术灯透照效果较差。

而采用笔者自制可视喉镜操作更简单，并且避开了经颈透照组所存在的问题。依据临床使用的可视喉镜原理，可在直视下观察到会厌，可清晰观察到气管口的位置，在掌握好大鼠呼吸节奏，插管成功率很高，且操作时间更短，显著降低气管插管后的死亡率，是进行大鼠气管插管的好方法，而且材料易得，价格低廉，改造方便，使用简单，特别适用于动物实验教学。

气管插管是麻醉的基本操作之一，亦是大多数动物实验的关键步骤。气管插管一直遵循减少对实验动物的损伤和插管中的应激反应，缩短气管插管的时间，提高气管插管的成功率的原则。随着科技不断发展，多年来大鼠气管插方法不断改进，各种气管插管工具有效降低了大鼠气管插管的难度，使气管插管变得越来越方便快捷，从而提高了动物实验的质量，降低了实验成本。与此同时，方便快捷的工具的产生，仍需要操作者熟练的应用和实践，在使用中不断改善，从而真正提高气管插管的质量。