冷应激对雉鸡生长性能、屠宰性能及血清抗氧化能力的影响

2019-01-02周长海张铭琪刘明远赵立龙高俊雷廖先东

饲料工业 2018年15期

■王楠周长海张铭琪张晶刘明远赵立龙高俊雷廖先东

（吉林大学动物科学学院吉林长春130062）

雉鸡(Piasianus colchicus)是鸟纲鸡形目雉科重要的猎禽和经济鸟类之一，又称环颈雉。雉鸡的肉美味鲜，营养丰富，而且耐粗饲，容易饲养[1]。适应性强，成年后能耐40℃的高温和零下10℃的严寒，在我国除羌塘高原、海南岛外遍及各省[2]。雉鸡在生长、脂肪积累等方面，都表现出野生禽类所具有的季节性和特殊性。在11月下雪、气温骤降后，环颈雉体内积累的脂肪发生特殊变化，肉质变得良好[3]。而肉品质是禽类生产中一个重要的评判依据。陈豪等[4]研究表明，雉鸡的肉品质指标中肉色和滴水损失率优于AA肉鸡。雉鸡肌肉中的必需氨基酸、芳香族氨基酸、微量元素和粗蛋白含量都高于普通鸡肉[5]，其肉质鲜美、细腻、营养全面、口感好，是具有低脂肪、低胆固醇和高蛋白质等优点的野味珍品[6]，满足了现代高品质鸡肉的消费需求，雉鸡的养殖业拥有着强大的市场潜力。随着国民生活水平的提高雉鸡养殖业在畜牧业中的地位越来越重要[7]。所以，研究冷应激使雉鸡风味变好的同时探讨其对雉鸡生产、屠宰性能和抗氧化性能的影响对指导畜禽养殖业具有重要意义。

1 材料与方法

1.1 基础日粮

基础日粮组成及营养水平见表1。

1.2 试验动物及设计

选取雄性12周龄雉鸡，按体重相近原则随机分为2组，冷应激雉鸡为A组(试验组)，正常条件下雉鸡为B组(对照组)，每组8个重复，每个重复5只雉鸡。预饲养2周，正式饲养4周，饲喂相同日粮，整个饲养期共6周（2016年11月9日～2016年12月22日）。

1.3 饲养管理

雉鸡采用单笼饲养的方式，保证雉鸡有足够的活动空间。试验前将鸡舍、鸡栏、饮水器、料槽等彻底打扫干净消毒，并将鸡舍进行整体消毒处理。对照组室内正常室温约20～25℃常温下饲养。试验组在冬季室外环境，平均气温0℃左右露天饲养，湿度50%～60%。期间雉鸡自由采食和饮水，并进行定期打扫和消毒。

表1 基础日粮组成及营养水平

1.4 样品采集与处理

试验开始后，每周对试验雉鸡称重并记录日采食量。饲养至18周龄时进行屠宰取样。断食12 h后颈部放血采集血液，离心（3 000 r/min、10 min）取血清，冷冻于-20℃冰箱保存待测，致死后立即取腿肌、胸肌、腹脂、法氏囊、脾脏、肝脏组织等称重并记录。

1.5 测定指标及方法

1.5.1 生长性能测定

试验期间每天记录观察鸡群健康情况。在雉鸡15～18周龄逐只称量试验鸡空腹重，记录饲料添加情况，并计算平均日采食量(ADFI)、平均日增重(ADG)和料肉比（F/G）。

1.5.2 屠宰性能测定

测定活体重后屠宰，进行胴体分割，测定腿肌率、胸肌率、腹脂率、半净膛率、全净膛率等胴体指标。

1.5.3 组织器官相对指数

器官组织相对指数（%）=器官组织重量/个体活重×100。

器官组织包括胸腺、法氏囊、肝脏、脾脏、肾脏等。

1.5.4 血清抗氧化能力

血清中谷胱甘肽过氧化物酶（glutathione peroxidase，GSH-Px）、超氧化物歧化酶（superoxidase，SOD）、过氧化氢酶（carboxyatractylate，CAT）的活力和丙二醛（malonald-ehyde，MDA）含量的测定采用试剂盒（南京建成试剂盒）进行测定。

1.6 数据统计与分析

试验结果用“平均值±标准误”表示。试验数据采用统计软件SPSS 19.0进行独立样本T检验分析，以P＜0.05为差异显著性标准。

2 结果与分析

2.1 冷应激对雉鸡生长性能的影响

2.1.1 冷应激对雉鸡各周平均日增重的影响

表2 冷应激对雉鸡各周平均日增重的影响（g）

由表2可知，与对照组相比，冷应激处理显著降低了雉鸡W1平均日增重（ADG）（P＜0.05），W3、W4平均日增重有增加的趋势，但差异均不显著（P＞0.05）。

2.1.2 冷应激对雉鸡各周平均日采食量的影响

表3 冷应激对雉鸡各周平均日采食量的影响（g）

由表3可知，与对照组相比，冷应激处理组显著增加了雉鸡W1及W1～W4平均日采食量（P＜0.05）,W2、W3、W4平均日采食量均有增加的趋势，但差异不显著（P＞0.05）。

2.1.3 冷应激对雉鸡各周料肉比的影响

表4 冷应激对雉鸡各周料肉比的影响

由表4可知，与对照组相比，冷应激处理组极显著增加了雉鸡W1料肉比（P＜0.01），增加了W1～W4料肉比（P＜0.05），W2、W3、W4料肉比有增加的趋势，但差异不显著（P＞0.05）。

2.2 冷应激对雉鸡屠宰性能的影响

表5 冷应激对雉鸡屠宰性能的影响

由表5可知，与对照组相比，冷应激处理组有增加雉鸡的活体重、腿肌率和腹脂率，降低屠宰率、半净膛率、全净膛率和胸肌率的趋势，但差异均不显著（P＞0.05）。

2.3 冷应激对雉鸡组织器官相对重量的影响

表6 冷应激对雉鸡器官相对指数的影响

由表6可知，与对照组相比，冷应激处理组有提高雉鸡胸腺和肾脏相对器官指数，降低法式囊指数、肝脏指数的趋势，但差异均不显著（P＞0.05）。

2.4 冷应激对雉鸡血液抗氧化能力的影响

由表7可知，与对照组相比，冷应激处理组显著提高了雉鸡血清中CAT活力（P＜0.05），有降低MDA含量，增加GSH-Px酶活性和SOD活力的趋势，但差异不显著（P＞0.05）。

表7 冷应激对雉鸡血液抗氧化能力的影响

3 讨论

3.1 冷应激对雉鸡生长性能的影响

在冷应激下动物采食量增加、增加产热和减少散热来维持体温。王密等在研究冷应激对家禽采食量及料肉比影响时发现，在20℃环境下的料肉比为2.7∶1；而在10℃环境下的料肉比为3.5∶1[8]。李春雨等的研究表明，当环境温度降至10～12℃时，在一段冷适应期内，蛋鸡体重未发生显著改变；同时，低温组肉仔鸡的体增重、饲料转化率和成活率与对照组相比差异不显著[9]。M.C.Souza等认为，同处在等热区的动物相比，寒冷条件下动物的采食量升高，而消化率下降，但动物可成倍增加采食量，而消化率下降却有限，因此动物大幅度增加饲料的采食量来获取更多能量[10]。周长海等研究低温(5℃)条件下适量在饲料中添加DLM及LMA不但可以缓解低温对蛋鸡的不利影响,而且可以提高饲料利用率，减少低温造成的应激[11-12]。本试验中，冷应激刺激显著增加了雉鸡的平均日采食量和料肉比（P＜0.05），降低平均日增重，但差异不显著（P＞0.05）。这可能是由于成年家禽体温调节系统发育相对完善，对低温环境的耐受性也较强。而且雉鸡长期饲养于高寒山区等地带,对寒冷适应性良好，冷应激对其不利影响较小，受寒冷刺激采食量大幅度提高，能获得更多的能量，而消化率和维持体温消耗的能量有限，所以仍能够维持生产需要。

3.2 冷应激对雉鸡屠宰性能的影响

在冷应激条件下，动物摄取能量从原来的维持生产转变为维持体温。当外界环境温度低于机体下调临界值时，家禽增加产热和减少散热来提高机体温度，建立了新的代谢平衡，维持正常的新陈代谢。本试验中，冷应激处理有增加雉鸡的活体重、腿肌率和腹脂率，降低屠宰率、半净膛率、全净膛率和胸肌率的趋势，但差异均不显著（P＞0.05）。据研究，腹脂率/肌间脂肪值与腹脂率和皮脂率均呈显著正相关(P＜0.05)，可在一定程度上反映脂肪在肌内和皮下及腹部的分布状况。因此，可把腹脂率/肌间脂肪值作为一个有效的指标来衡量优质鸡的体脂分布[13]。本试验中，冷应激处理组腹脂率有增加的趋势，说明肌内脂肪含量上升。而肌内脂肪绝大部分由磷脂构成(48%～83%)，具有较高的营养价值[14]。同时，肌内脂肪也是影响肉品质和风味的重要因素之一。孙玉民等的研究表明，肌内脂肪含量与肉品的多汁性有关。肌肉脂肪含量高是高品质肉块比低品质肉块更为多汁的原因之一[15]。Wood等研究表明，肌内脂肪含量与嫩度呈正相关[16]；所以我们可以猜测冷应激处理使雉鸡肉质脂肪酸风味物质增加，肉块更为多汁，肉质更细嫩，雉鸡肉品质变得更加良好。

3.3 冷应激对雉鸡器官相对重量的影响

有研究表示，冷应激会导致肉鸡免疫器官发育不良[17]。在Sahin等研究中，在脑、肾脏及肝脏中Cu Zn-SOD的活性呈升高趋势，在心脏和胃中呈下降趋势；在脑、肝脏、心脏及肾脏中CAT与GSH-Px的活性呈上升趋势，在胃中CAT的活性呈降低趋势，表明冷应激对器官造成氧化损伤[18]。同时也有研究表明，慢性冷应激和温和冷应激会引起免疫增强[19]。本试验中，冷应激有促进雉鸡免疫器官（胸腺）及肾发育的趋势，这可能与本试验温和的冷应激引起免疫增强有关；而且为了维持体温雉鸡新陈代谢加快，肾脏为了清除代谢废物，保持机体内环境稳定性而重量有所增加；肝脏的重量有降低的趋势，可能与冷应激影响机体去氧化性有关。

3.4 冷应激对雉鸡血液抗氧化性的影响

根据自由基学说，机体自由基的产生、利用和消除之间的动态平衡，与各种疾病的发生有着直接关系。据报道，冷应激可以改变生物体抗氧化与促氧化间的平衡，使机体产生过多的自由基，导致脂质过氧化，诱发氧化损伤[20-21]。而血清的抗氧化能力在一定程度上可以代表机体的抗氧化性能力，所以测定血清抗氧化能力具有很重要的意义。机体清除自由基的主要抗氧化酶有SOD、GSH-Px等。血清中SOD和GSH-Px活性的高低可以间接反映机体清除自由基的能力；MDA其含量高低反映自由基对机体脂肪的损伤程度[22]；CAT主要清除过氧化氢，常与GSH-Px协同作用。

王建鑫等的研究表明，金定产蛋鸭在冷应激后血清的总抗氧化能力(T-AOC)先迅速升高，并在应激1 h出现峰值，然后呈现波动变化且规律不十分明显；机体内丙二醛含量在冷应激时的变化规律不是很明显，但是在应激后机体内自由基含量上升后，又迅速下降[23]。说明冷应激使机体的总抗氧化能力迅速得到增强，也说明机体在迅速清除应激中对动物自身生长不利因素，同时也表明机体对于这种变化的调节能力很强。王金涛研究表明，急、慢性冷应激条件下，下丘脑与血清超氧化物歧化酶（SOD）、过氧化氢酶（CAT）活性降低，但随应激时间的延长又渐缓升高[24]，说明随应激时间延长，机体逐渐适应外界环境，T-AOC代偿性升高。Gumuslu等研究证明，慢性冷应激可使鼠红细胞Cu Zn-SOD活性下降，CAT与GSH-Px活性升高[25]。Kaushik等发现慢性冷应激使肾脏中的CAT的活性显著提高[26]。本试验中，冷应激显著提高了CAT活力，降低了MDA含量，增加了GSH-Px酶活性和SOD的活力，表明在一定周期的冷应激处理下提高了雉鸡的血液抗氧化性能力，雉鸡对冷应激表现出较强的适应能力，能清除应激对机体的不利影响，对在高寒地区饲养雉鸡具有良好的指导意义。