非繁殖季节母驴诱导发情、排卵效果的研究

张永昌 ，娜仁花 ，达拉吉如嘎 ，刘永斌 ，吴海青

（1.内蒙古农业大学动物科学学院，内蒙古 呼和浩特 010018；2.内蒙古自治区农牧业科学院，内蒙古 呼和浩特010031）

驴具有较高的经济价值。其肉具有独特的营养价值，例如拥有补血、益气补虚等保健功能，并且风味鲜美。科学研究表明，每100 g驴肉当中含脂肪 0.7 g、蛋白质 18.6 g、钙 10 mg、磷 144 mg、铁136 mg，尤其是蛋白质的含量要比牛肉、猪肉均高，而脂肪含量却低于这些肉类，是典型的高蛋白低脂肪肉食品［1］；驴脂肪中含有高达 59.38%的不饱和脂肪酸［2］。目前，我国驴存栏量低，生产及管理水平低，繁殖技术落后，同人们对驴产品的大量需求形成了巨大的矛盾。针对驴本身的繁殖特点导致的驴繁殖率不高、难以快速增加驴存栏量等难题，从非繁殖季节和繁殖季节空怀母驴入手，利用诱导发情方法、人工授精技术、超数排卵技术和胚胎移植技术等来提高优良公、母驴的繁殖力，加速品种改良，提高肉驴繁殖率，已成为当下养驴事业中刻不容缓的任务。该试验通过外源激素诱导非繁殖季节母驴发情进行试验研究，摸索出诱导母驴发情的激素使用方案，确定激素用量，人为控制母驴排卵时间，从而减短母驴空怀期，提高母驴妊娠率。

1 材料与方法

1.1 时间与地点

试验始于2017年10月1日，在内蒙古通辽市奈曼旗“绿野牧歌驴业有限公司”进行。

1.2 实验动物和材料

1.2.1 实验动物：选择 50头年龄为 2～6岁、膘情良好、体重相近（200～280 kg）、未受孕的母驴。 全部母驴均处于非发情季节 （当年9月—次年3月），经直肠检查卵巢、生殖道机能均正常，无生殖系统疾病。

1.2.2 试验材料

1.2.2.1 试验器材：ESAOTE Tringa Linear Vet便携式兽用B超仪（意大利百胜公司），6.5 MHz大家畜用直肠线阵探头，照相机，电脑，体重泵，驴用保定架，蒋氏一次性直检长臂手套，注射器（5～10 mL），石蜡油。

1.2.2.2 试验药品：注射用血促性素（PMSG），1 000IU/瓶，浙江宁波第二激素厂，批号110254564；注射用绒促性素Ⅰ（hCG），500 IU/支，浙江宁波第二激素厂，批号 110251281；氯前列醇注射液（PGF2α），规格为 2 mL：0.2 mg，丹东市绿丹和华动物药有限公司，批号060292200；生理盐水。

1.3 试验方法

1.3.1 试验分组：将50头母驴随机分为4个组，其中 A组 15头，B组 15头，C组 10头，D组 10头；再将 A 组又分为 A1组（10 头）、A2组（5 头），B组又分为 B1组（10 头）、B2组（5 头）。 A、B、C 组为试验组，各组均用激素处理；D组为对照组，不做激素处理。A1、B1组注射 hCG 促进卵泡排卵；A2、B2组自然排卵，不使用hCG处理。试验期间所有母驴均以正常标准饲养。

1.3.2 诱导发情：每天对A、B、C 3组母驴分别注射PGF2α2 mL/头，连续注射 5 d。D组为空白对照组，给予2 mL的生理盐水为安慰剂。经PGF2α处理后，第6天对A组和 B组用 PMSG处理，剂量分别为 1 000 IU和 500 IU，C、D两组不予 PMSG处理，但在同一时间给予等量生理盐水作为安慰剂。详情如表1所示。

1.3.3 诱导排卵：用 B超仪检查 A1、B1、C 3组中的发情母驴，当卵泡直径大于35 mm时注射hCG（hCG总量为1 500 IU/头，早、晚各注射 1次，每次750 IU/头）促进卵泡的发育并诱导其排卵。A2、B2组母驴不做hCG处理，由卵泡自然发育至排卵。详情如表2所示。

1.3.4 试验母驴的发情鉴定：母驴发情时表现为举尾巴、后肢开张、阴门肿胀、频频排尿且排尿时可见阴道口为鲜红色、离群、精神不安、吧嗒嘴、张嘴流涎、嘴唇上翻、频繁鸣叫、耳朵后抿、主动爬跨其他母驴或接受其他母驴爬跨等表现。试情时，将身体状况良好具有保护措施的公驴放入母驴群中，处于发情期的母驴会主动接近公驴，并伴有明显的发情行为，公驴具有明显的爬跨行为，且发情的母驴与试情公驴很难分开，据此可判断该母驴已发情；而未发情的母驴具有排斥公驴的特点，并对靠近的公驴发出警告声。试验中，将试情公驴放入试验母驴群中试情，每天 2 次（8：00、15：00），来断定母驴是否发情。

表1 试验分组及激素处理过程

表2 卵泡直径大于35 mm时采用hCG诱导排卵

1.3.5 直肠检查方法：直肠检查是鉴定母驴发情阶段及妊娠情况的最直接方法。在直肠检查前检查人员应事先修剪双手指甲，以免对其直肠造成伤害。在进行直肠检查时，首先将驴赶入四柱栏里进行保定，然后检查人员双手带长臂手套并涂抹适量石蜡油，一手抓住驴尾，另一只手伸入直肠中检查。检查过程中，如果驴发生强烈的努责，应配合其努责稍微退后手臂，待肠道缓和后继续进行检查。驴的直肠与牛的相比，较为狭窄，所以直肠检查时需要双手交替工作：用左手去检查驴右侧卵巢，驴右侧卵巢位于右侧第三、第四腰椎横突之下；用右手检查驴左侧卵巢，左侧卵巢位于左侧第四、第五腰椎横突末端下面。因上午驴肠道内粪便较少，且肠道蠕动不如下午强烈，易于直肠检查的操作，该试验直肠检查定于每日上午进行。该试验中为更准确记录试验数据，直肠检查时采用B超辅助检查，先进行直肠检查确定卵巢位置，确定优势卵泡波发生在哪侧卵巢，确定优势卵泡发育具体位置，然后用便携式兽用B超仪检查，将探头贴在卵巢上，转动探头寻找卵泡，选择最佳位置进行拍摄，并测量卵泡大小、数量和形状。结合试情法和发情观察对有发情表现的母驴，每天上午进行仔细检查，观察其卵泡变化。对经激素处理后无发情表现的母驴隔天进行检查。

1.3.6 发情母驴的配种：在种公驴数量充裕的情况下，为避免人工授精中的各种不确定因素影响到试验受胎率，该次试验对所有经诱导发情后有发情表现的母驴进行了自然本交。A1、B1、C 3组在经过 hCG处理后连续 2 d进行配种，A2、B2、D 3组根据卵泡发育情况进行配种。

1.3.7 妊娠检查：2018年3月初，对试验母驴中接受过交配的母驴进行直肠检查。此时，配种已有4个多月，若母驴已经妊娠，此时进行直肠检查子宫及胎儿已十分明显。

1.3.8 繁殖指标的统计

受胎率=妊娠母驴/参配母驴

妊娠率=妊娠母驴/试验母驴

1.4 数据处理

利用Excel软件整理原始数据，利用SAS 9.0对试验数据进行统计分析。

2 结果与分析

2.1 PGF2α在诱导发情中的作用

由表3可知，在PGF2α单一处理试验中，采用PGF2α对C组母驴进行连续5 d的处理，D组为空白对照。C、D 2组发情率都较低，C组仅有3头母驴在PGF2α处理后有发情表现，而D组10头母驴在非繁殖季节观测的40 d内仍然有1头母驴在较早时（10月初）出现发情表现，这可能与驴自身体质有关，但之后D组并未再有母驴出现发情现象。C组平均发情持续时间明显低于D组，C组和D组平均发情持续时间分别为2.67 d和5.00 d。发情次日卵泡直径C、D 2组差别不大，分别为27 mm和30 mm。在利用B超仪辅助直肠检查时发现，C组母驴在经PGF2α处理后，卵巢上黄体均开始逐渐消退，处理第5天时黄体基本全部消退。对D组10头母驴进行直肠检查时发现，在非繁殖季节母驴卵巢上仍有卵泡发育波的存在，但卵泡发育直径均较小，未出现排卵现象。

表3 PGF2α对母驴发情的影响

表4 不同剂量PMSG对母驴发情情况的影响

表5 不同剂量PMSG对卵泡发育的影响

综上所述，驴属于季节性发情动物，通辽地区母驴进入10月后，母驴卵巢还有卵泡波的存在，但基本上处于停止自然发情状态；单独使用PGF2α对非繁殖季节母驴诱导发情效果不明显，而PGF2α对母驴黄体却有明显的消除作用。

2.2 PGF2α处理后不同浓度PMSG对母驴诱导发情的影响

2.2.1 不同剂量的PMSG对驴发情的影响：由表4可知，PGF2α与PMSG联合处理的 A、B组发情头数分别为14头和13头，发情率分别为93.33%和86.66%，结果显示PGF2α与不同剂量的PMSG联合处理对驴发情的影响并不明显，但均明显高于C组（PGF2α单独使用对母驴的处理）。以PMSG处理当日为第1天，A、B、C 3组分别在处理后（3.93±1.01）d、（4.77±1.00）d 和（6.33±1.15）d 出现发情现象，发情间隔天数随PMSG剂量减少呈上升趋势（见图1），A、B 2组发情间隔天数差异不显著 （P＞0.05），但 A、B 2 组与 C 组差异极显著（P＜0.01）。而发情持续时间 A、B、C 3 组分别为（5.79±1.31）d、（4.54±0.58）d、（2.67±0.97）d，平均发情持续天数随 PMSG剂量减少呈下降趋势（见图1），A、B 2组与C组的发情持续时间存在极显著差异（P＜0.01）。

图1 母驴发情时间的变化

综上所述，PGF2α联合PSMG对诱导乏情母驴发情效果较好，经1 000 IU PMSG处理后的母驴，发情表现的出现要早于500 IU PMSG处理的母驴，但发情持续时间较长。

2.2.2 不同剂量的PMSG对卵泡的影响：由表5可知，诱导发情中不同剂量的PMSG对卵泡波发育的影响不同。发情次日对母驴进行直肠检查，结果显示A组优势卵泡平均直径为（3.47±0.33）mm，B组优势卵泡直径为 （3.15±0.28）mm，C组优势卵泡直径为（2.70±0.17）mm，A、B 2 组卵泡直径大小差异不显著（P＞0.05），A、B 2个组与 C组优势卵泡直径差异极显著（P＜0.01）。大于25 mm卵泡个数A 组为（2.43±0.65）个、B 组（1.62±0.51）个、C 组（0.67±0.58） 个，A、B、C 3 组之间大于 25 mm 卵泡个数差异均极显著（P＜0.01）。由图 2得知，随着PMSG注射量的减少，卵巢内优势卵泡的直径和大于25 mm卵泡个数均呈下降趋势。在直肠触诊时可明显发现经1 000 IU剂量处理后的母驴具有优势卵泡的卵巢个体均较大，明显大于正常发情母驴卵巢，触摸时有肥大且具有弹性的感觉，部分母驴有明显疼痛感；而500 IU剂量处理的母驴，卵巢形态较为正常，优势卵泡突起明显，质地较硬。

表6 不同剂量PMSG对排卵的影响

表7 相同PMSG剂量下的hCG对排卵的影响

综上所述，诱导发情中利用PMSG处理会使非繁殖季节中的母驴卵泡得到明显发育，PMSG剂量越高优势卵泡直径越大、大卵泡数量越多；而没有注射PMSG的母驴卵泡发育较小。但PMSG在1 000 IU剂量下的卵巢形态较为异常，这可能是由于同时出现的大卵泡数量多导致的。

2.3 诱导排卵的试验结果

2.3.1 不同剂量PMSG下hCG对排卵的影响：由表6可知，当卵泡直径大于35 mm时使用总量为1 500 IU的hCG分别对 A1、B1和 C 3组发情母驴进行处理，3组在 48 h内排卵率分别为 88.89%、55.56%、33.33%。

由此得出，1 000 IU PMSG（A1组）处理过的母驴，在hCG促进排卵后，优势卵泡基本全部在48 h内排出，排卵时间较集中，相比之下经500 IU PMSG（B1组）处理的母驴，排卵集中程度较低，不利于配种工作的集中进行。而C组发情的3头母驴，只有 1头成功排卵，其余 2头的优势卵泡并未排卵。采用hCG处理优势卵泡排卵时，PMSG剂量越大，发情母驴在短时间内排卵越集中。

2.3.2 相同PMSG剂量下的hCG对排卵的影响：由表7可知，在相同PMSG水平下，hCG处理排卵效果明显，A1、B1最终的排卵率为 100%和77.78%，而A2和B2的排卵率为60.00%和50.00%。结果表明，在诱导发情试验中，利用hCG处理发情母驴后能成功排卵的母驴数明显高于对照组，这证明了hCG对处于乏情期诱导发情后的母驴卵巢上优势卵泡作用明显，能加快优势卵泡排卵，且明显提高母驴的排卵率。

表8 各试验组发情状况

2.4 各处理方法发情率与妊娠率结果比较

由表8可知，A、B 2组处理方法的发情率分别达到了93.33%和86.67%，而C组发情率较低仅有30.00%，对照组D组发情率仅为10.00%，A、B 2组发情率明显高于C、D组。由表9和图3可知，整个试验过程的受胎率和妊娠率A1组最高分别达到了88.89%和80.00%，其次是B1组（分别为66.67%和60.00%）。B2、C 2组的受胎率和妊娠率都较低，D组虽然存在1头母驴发情，但配种后未妊娠。

分析得出，PGF2α与PMSG联合处理可以使大部分处于非繁殖季节的母驴发情，且PMSG剂量越高，发情率越高。 PGF2α、PMSG、hCG 3 种激素联合使用，可以使处于非繁殖季节的母驴发情，并在配种后成功妊娠。试验中并未出现排多卵的母驴，证明PMSG在诱导母驴发情过程中主要起促进卵泡发育、增大卵泡体积的作用，并不能使卵泡的数量增多。hCG可促进母驴成熟卵泡的排出，提高受胎率。但在试验过程中发现经1 000 IU PMSG处理过后的母驴，卵巢体积明显大于正常水平，并带有一定的肿胀现象，而经500 IU处理的母驴卵巢形态较为正常，为避免长期使用该激素对母驴卵巢造成不利影响，该研究认为A1组和B1相比虽然妊娠率相对较高，但对卵巢的负面影响不利于长期在实践中使用，所以综合考虑，认为 B1组处理方法在实践应用中更有优势。

图2 P MSG对卵泡发育的影响

表9 各处理方法妊娠结果

2.5 优势卵泡发生边侧

由表10统计可知，对试验中所有发情母驴（31头）进行直肠检查发现，优势卵泡在左侧卵巢出现了共计13次，在右侧卵巢出现了共计18次，左、右侧分别占比41.93%和58.07%。由表11可知，左侧排卵母驴妊娠数量为8头，受胎率为61.54%，右侧排卵母驴妊娠头数为11头，受胎率为61.11%。分析发现，母驴右侧卵巢发生优势卵泡的概率要略高于左侧，但左、右两侧卵巢优势卵泡的受胎率接近。

3 讨论

3.1 非繁殖季节母驴卵巢特点

图3 各处理方法妊娠结果比较

表10 优势卵泡发生边侧

在非繁殖季节母畜体内卵巢和垂体分泌激素的能力明显下降，不能促使卵巢上的卵泡发育至成熟并排卵，且母畜不出现发情现象。该试验中通过对非繁殖季节母驴进行直肠检查发现，在乏情季节母驴卵巢上仍有卵泡发育波的出现，但大于30 mm的卵泡并未出现，每一个卵泡波都在发育到一定程度后开始退化，空白对照组D在观测的40 d中仅有1头出现明显的优势卵泡，并出现自然发情的表现，这可能与个别驴体质有关，其他驴在试验过程中未出现发情现象。Quaresma等［3］对非繁殖季节母驴卵巢进行监测时发现，在冬季母驴卵巢上仍会有连续的明显卵泡波活动，但大部分卵泡直径小于18 mm，偶尔出现大于 25 mm卵泡，但未发生优势卵泡和排卵现象，在监测的所有驴中仅有个别母驴出现发情表现。

表11 各侧卵巢受胎率

3.2 母驴左、右侧卵巢对排卵率的影响

研究发现，母驴右侧卵巢发生优势卵泡的概率高于左侧，这说明在母驴繁殖过程中右侧卵巢排卵的次数要高于左侧。这与张新浩等［4］对不同季节母驴卵巢排卵能力统计中发现的右侧卵巢的排卵率为55.38%，显著高于左侧卵巢（P＜0.05）的研究保持一致。但在该试验中两侧卵巢发育的优势卵泡在排卵后受孕的能力是相同的。由此看来，两侧卵巢仅在排卵次数上存在差异，但受孕能力是不存在差异的。

3.3 不同激素在母驴诱导发情中的影响

相比于牛、羊、猪，驴的繁殖力在实际生产中较低，这与驴自身特殊的排卵形式和对繁殖技术处理中常用的外源激素敏感程度较低有密不可分的关系。诱导发情中，常用的激素有神经激素类的促性腺激素释放激素和褪黑激素、促性腺激素类的 FSH、LH、PMSG、hCG等，以及雌激素和孕激素等。该试验并没有使用诱导发情中常用的外源促性腺激素 （例如 FSH、LH），而是选择了 PGF2α、PMSG和hCG 3种激素对驴进行诱导发情和排卵，因为上述3种激素均为母驴较为敏感的激素。而目前国内诱导发情与超数排卵试验过程中常用的FSH，基本都是从猪垂体分泌物中提取出的，且大量研究数据表明马属动物对外源FSH处理极不敏感［5］。早在 2009年，国外研究者便利用马体内提取的促卵泡素（eFSH）或马重组促卵泡素（reFSH）对马和驴进行处理，处理结果证明驴对eFSH和reFSSH处理较为敏感，且诱导发情和超数排卵效果较好［6］，但现阶段国内难以购买到该2种激素。PMSG在动物体内半衰期较长，而驴发情持续时间也相对较长，试验中一次注射就可以达到效果，所以试验并没有选择诱导马属动物发情效果较好的reFSH或eFSH，却选择了PMSG。

3.3.1 PGF2α对非繁殖季节母驴的影响：该试验利用PGF2α处理母驴，可有效消除母驴卵巢上的黄体，B超检查时发现存在黄体的母驴在连续注射PGF2α的过程中黄体全部被溶解，这一结果与Alcantara［7］的研究结果相接近，Alcantara 对 25 匹母马进行氯前列醇处理，处理2 d后，96%的母马体内孕酮水平明显下降，这说明母马体内黄体已被溶解。张翔等［8］研究表明 PGF2α具有溶解黄体的作用，还发现在母驴排卵后5～7 d注射效果最佳，且注射PGF2α后可有效缩短母驴发情周期。

该试验在 PGF2α诱导发情结果中，单独使用PGF2α的 C组发情个体较少，仅有 3头母驴出现发情现象，且发情母驴卵泡发育较小，优势卵泡不明显，仅有1头母驴成功排卵，这与空白对照组（D组）差别不明显，因此，认为单独使用 PGF2α对母驴诱导发情效果不好，且对卵泡发育并没有促进作用，所以单独使用 PGF2α诱导母驴发情效果不明显。同样何良军等［9］利用PGF2α在对母驴进行同期发情试验中证明单独使用PGF2α对母驴同期发情效果不明显。而PGF2α在母牛诱导发情中效果极明显，早在 1996年刘悦竹等［10］利用国产氯前列烯醇对超过3个月未有发情表现及少数参配但未孕的109头母牛进行处理，其中70%以上的母牛在处理后出现发情表现。张良等［11］对不同品种母羊施用氯前列烯醇进行诱导发情，试验母羊共计8 177只，发情率达到了66.19%。由此得出结论，利用PGF2α诱导发情，对牛、羊等动物有效，但其对驴的诱导发情效果不明显。

研究证实，对驴单次注射大剂量的PGF2α会使母驴出现各种副反应，如四肢无力、全身发抖，尤其在对肠胃副作用较大，在注射PGF2α后会出现肠胃功能紊乱、腹泻等症状［7］。而该试验选择小剂量 （0.2 mg/头）PGF2α连续多天注射的方法并未出现上述副反应，说明该处理方法溶解黄体对于母驴是可行的。

3.3.2 不同剂量PMSG对母驴诱导发情效果的影响：试验采用PGF2α结合PMSG的诱导发情方案在非繁殖季节诱导母驴发情，研究了不同剂量PMSG对母驴发情效果的影响。试验中PMSG对非繁殖季节中的母驴卵泡发育和促使乏情母驴发情具有明显的作用，乏情季节母驴对PMSG处理是敏感的，1 000、500 IU/头 PMSG处理后的母驴发情率分别达到了93%和86%，明显高于对照组，该结果与 Noël［12］、 张居农［13］、 张学炜等［14］使用PMSG对羊诱导发情效果较好保持一致。但1 000 IU/头剂量下的卵巢形态较为异常，有囊肿的趋势，其原因可能是由于同时出现的大卵泡数量多导致的。综合PMSG对母驴的副反应，在实际生产过程中，采用PMSG诱导母驴发情剂量选择500 IU/头优于 1 000 IU/头。

该试验中PMSG剂量越高，母驴发情表现出现越早，发情持续天数越长，优势卵泡直径越大，大卵泡数量越多，而没有注射PMSG的母驴发情率很低且卵泡发育较小，试验中并未出现由于PMSG剂量的提高而导致排多卵的情况。这与何良军等［15］的研究结果保持一致，何良军等人认为PMSG可以使卵泡直径增大、发育增快，但并不能使母马超数排卵。

3.3.3 PMSG和hCG对母驴诱导排卵的影响：该试验中诱导排卵过程中使用同样剂量的hCG（1 500 IU/头） 对 PMSG 剂量不同的 A1、B1、C 3组进行处理。结果显示：在处理后48 h内排卵率A1组高于 B1组，分别为 88.89%和 55.56%，但 C组在 48 h内仅有 1头母驴排卵；A1在经hCG处理后排卵时间较为集中，在实际生产中更利于对排卵时间进行把控和准确把握配种时间。这也证明了由于PMSG浓度的增加，卵泡在相同时间内（hCG处理后至排卵）生长速度更快，且卵泡平均直径越大，在hCG注射后越容易在短时间内排卵。

在相同 PMSG剂量下 A1、B12组注射 hCG（1 500 IU/头），而对照组（别为 A2、B2组）未作 hCG处理。结果表明，A1、B1组母驴的排卵率明显高于各自的对照组。试验中均是在卵泡直径达到35 mm时才做hCG处理的，证明hCG对母驴优势卵泡促进排卵具有明显效果。虽然A2、B2组均有优势卵泡出现但部分优势卵泡最后退化掉了，并没有成功排出，这可能是由于处在非繁殖季节时的母驴激素水平较低，而PMSG虽然使卵泡得到了充分的发育，但对母驴优势卵泡破裂排卵的能力并不明显。这与赵德强等［5］对母马的研究结果保持一致，在乏情季节马卵巢功能较低，自身激素分泌能力不足，而hCG对马卵泡的作用具有选择性，卵泡直径＜35 mm的马对hCG的处理不敏感；卵泡直径≥35 mm时，用hCG处理母马，可以促进卵泡发育。丁修芳等［16］3年内用hCG对318匹母马进行处理，研究结果表明10.43%的母马能在处理后 24 h内排卵，69.78%的母马在处理后 25～48 h排卵，48 h内排卵率达80.21%，经处理后无效母马仅占2.83%。而在对羊的试验中，Wani等［17］利用PMSG对母羊诱导发情，当母羊发情时静脉注射hCG，结果发现该方法中hCG组与空白对照组的排卵率差异不显著。

3.4 不同处理方法对诱导发情效果影响

试验中使用不同剂量的PMSG和hCG对母驴进行处理时，经1 000 IU/头和500 IU/头PMSG处理的A、B组发情率均高于对照C、D组，但在总体妊娠率和受胎率中可以看出A1、A2、B13组明显高于 B2、C、D 3组，而A1组的 48 h排卵率明显高于 B1组和 A2组，A1、B1组的试验诱导发情处理方法妊娠率分别为80%和60%，均能有效提高养驴场整体的繁殖率，但A1组注射1 000 IU PMSG对母驴副作用较明显，不利于长期对养驴场进行诱导发情处理。综上所述，B1组处理方法无论发情率、排卵集中程度还是妊娠率，均优于其他处理方法，有利于养驴场减短空怀期和控制母驴排卵时间，从而提高种公驴利用率和养驴场的经济效益。

4 结论

①PGF2α对母驴黄体具有明显溶解作用；PMSG可以诱导非发情季节母驴发情，促进卵泡波中的卵泡增长，增大优势卵泡直径，但对母驴并不具有超排效果。采用PGF2α+PMSG方案在非繁殖季节诱导母驴发情是可行的。

②使用PGF2α与PMSG对处于乏情期的母驴诱导发情后，注射hCG对母驴优势卵泡具有明显的促进排卵作用，可明显提高试验母驴的受胎率。

③该试验最终确定的非繁殖季节诱导发情最佳方案为：使用0.2 mg PGF2α连续处理5 d，第6天使用PMSG 500 IU，当优势卵泡直径达35 mm时使用hCG 1 500 IU，排卵后配种。