急性髓系白血病免疫表型特征与预后相关性分析*
2018-08-22郑源海林元峰许瑞元张志坚文晓芳福建医科大学附属漳州市医院福建漳州363000
郑源海,林元峰,许瑞元,张志坚,文晓芳 (福建医科大学附属漳州市医院,福建漳州 363000)
白血病细胞抗原的跨系表达是白血病免疫分型中常见的现象。研究表明,抗原跨系表达由白血病细胞异常发育引起,赋予白血病细胞不同的生物学特征,深入了解白血病抗原跨系表达的本质,对于明确白血病诊断、判断预后和临床治疗有重要的意义。急性髓系白血病(acute myeloid jeukemia,AML)跨系表达 CD19,CD7,CD4和 CD56等较常见[1]。CD56抗原作为免疫球蛋白家族的一员,是一种同型人神经细胞黏附分子,能够介导细胞黏附和细胞毒性[2]。CD7分子主要表达在 T细胞表面,在早期造血细胞也有表达。近年来,国内有学者研究白血病细胞CD56,CD7抗原表达与AML患者预后的关系[3~6]。CD56,CD7 在 AML 中伴随表达在评估预后中的价值仍有争议。既往研究多关注白细胞计数、骨髓原始细胞数、临床指征、完全缓解(CR)及与细胞遗传学和分子生物学结果的联系。较少研究CD56,CD7与其他抗原表达的联系,本研究旨在探究伴CD56,CD7表达的AML患者免疫表型特征,发现AML伴CD56,CD7表达与某些抗原表达存在联系,进而探讨其对于判断预后和临床治疗有重要的意义。
1 材料和方法
1.1 研究对象 收集2007年1月~2016年12月来我院就诊的525例AML患者骨髓,其中男性304例,女性221例。年龄1~85岁,中位年龄40岁。
1.2 试剂与仪器 流式细胞仪(美国BD FACSCantoTMⅡ BD公司),抗体(美国BD公司)。
1.3 方法
1.3.1 标本收集:取2 ml左右肝素抗凝的白血病患者骨髓样本,计数单个核细胞,调整每个检测管中细胞数106细胞左右。
1.3.2 白血病细胞免疫表型分析:每个检测管中分别组合标记单克隆抗体,包括异硫氰酸荧光素(FITC),藻红蛋白(PE),多甲早叶绿素蛋白(Per-CP),别藻清蛋白(APC)标记的 CD45,CD4,CD7,CD10,CD11b,CD13,CD14,CD15,CD19,CD33,CD34,CD38,CD56,CD64,CD117,HLA-DR,Cy-CD3,CyMPO,CyCD79a抗体。胞浆抗原 CyMPO,CyCD79a,CyCD3检测需先破膜,再加标记抗体。上机检测,获取10000个细胞,通过CD45/SSC设门圈定白血病细胞,观察其抗原表达情况。除胞浆抗原 CyMPO,CyCD79a,CyCD3外(≥10%为阳性),其它抗原表达率≥20%定义为阳性。免疫分型标准采用欧洲白血病免疫分型研究组(EGIL)[7]中的抗原积分系统分析白血病免疫分型。
1.4 统计学分析 采用SPSS 19.0统计软件进行数据分析,两组间样本率的比较用χ2检验,P<0.05为差异具有统计学意义。
2 结果
2.1 病例特征 525例病人中,伴CD56表达的AML 145例,占27.62%;伴 CD7表达的AML 131例,占 24.95%;伴 CD4表达的 AML 70例,占13.33%;伴 CD19表达的 AML 51例,占9.71%。CD56+AML,CD7+AML 作为实验组,CD56-AML,CD7-AML作为对照组。
2.2 CD56+AML组与CD56-AML组各种表面抗原表达情况比较 见表1。CD56+AML组CD11b,CD19,CD4表达率高于 CD56-AML组,差异均具有统计学意义(χ2=14.93,36.84,85.32,均P<0.01) 。CD34,CD117,CD7,HLA-DR,CD38,CD64,CD15,CD14,CD10,CD13,CD33 在两组之间的表达差异均无统计学意义(χ2=0.01~3.68,P>0.05)。
表1 CD56+AML组与CD56-AML组各种表面抗原表达情况比较[n(%)]
2.3 CD7+AML组与CD7-AML组各种表面抗原表达情况比较 见表2。CD7+AML组CD34,HLADR,CD117表达率高于CD7-AML组,差异均具有统计学意义(χ2=26.37,P<0.01;χ2=21.29,P<0.01;χ2=4.84,P<0.05);CD7+AML 组 CD38,CD64,CD15,CD19 表达率低于 CD7-AML 组,差异均具有统计学意义(χ2=11.43,18.43,12.65,9.87,均P<0.01) 。CD56,CD11b,CD10,CD14,CD4,CD13,CD33在两组之间的表达差异均无统计学意义(χ2=0.03~3.13,均P>0.05)。
表2 CD7+AML组与CD7-AML组各种表面抗原表达情况的比较[n(%)]
3 讨论随着白血病细胞形态学(Morphology)、免疫学(Immunology)、细胞遗传学(Cytogenetics)和分子生物学(Molecular)分型,即MICM诊断和分型标准的逐步推广,白血病免疫分型在临床应用中越来越重要。近年来,白血病相关免疫表型(LAIP)的提出,能更加准确地判定白血病细胞。而在AML中,最常见的LAIP方式,即出现跨系列表达、跨阶段表达、表达缺少及表达过度等[8]。AML跨系表达CD19,CD7,CD4 和 CD56 等较常见[1],在本研究中,CD56,CD7,CD4和 CD19表达的 AML分别占 AML总病例的 27.62%,24.95%,13.33%,9.71%,与国内外报道一致[9,10]。
CD56抗原是存在于细胞表面的一种糖蛋白,主要参与神经细胞间的黏附反应,又是自然杀伤淋巴细胞的标志[11,12]。由于其介导细胞和细胞之间的相互作用,可能调节细胞归巢从而导致AML细胞的扩散[13]。在本研究中,CD56+AML组病人中CD11b表达率高于CD56-AML组,与国内报道一致[14~16]。CD11b 与 CD56 同属于细胞黏附分子家族成员,其神经细胞黏附分子特性使肿瘤细胞更具有侵袭性,髓外浸润的风险更高,使预后变差。AML伴CD56,CD11b患者预后差,是独立的影响因素还是伴随因素,需要进一步研究证明。与其他研究不同[15],我们研究结果提示,CD56+AML组病人中CD19,CD4表达率高于 CD56-AML组,这可能与抗体连接的荧光素不同,如FITC荧光素强度较弱,造成某个标志表达在不同文献的差异;或者可能其他研究是特定AML病例组,而本研究是以大样本分析有关。
上世纪90年代,伴CD7表达的AML就已经被认知,并被定义为一类特殊类型的 AML[17]。Kita等[17]学者分析发现,伴有CD7表达的AML好发于年轻男性,有更突出的肝肿大和神经系统浸润临床表现,因此认为CD7表达是AML一个预后不良因素。近年来,有研究显示[18],CD7+AML患者多发生肝脾大、弥散性血管内凝血、中枢神经系统侵犯等,化学治疗完全缓解率低,总生存期及无病生存期短。基础研究的结果认为,白血病干细胞主要存在于CD34+/CD38-细胞群中。在本研究中,CD7+AML组病人中CD34表达率高于CD7-AML组;CD7+AML病人中CD38表达率低于CD7-AML组,说明 CD7+AML患者白血病细胞多来源于CD34+/CD38-细胞群中的白血病干细胞,这一特征性免疫表型提示CD7+AML白血病细胞停滞于较早期阶段,并具有较强的增殖和分化优势,导致临床治疗预后差。在本研究中,CD7+AML组病人中HLA-DR表达率高于CD7-AML组,与文献报道[19]CD7+AML大多同时表达CD34和HLA-DR相符。CD34,HLA-DR均为早期细胞标志,进一步揭示CD7+AML可能使起源CD7+CD34+多能造血干细胞或更早期造血阶段的独立类型的学说。有研究发现[20],AML中 CD117阳性的患者生存时间较CD117阴性患者明显缩短,且CD117高表达患者的完全缓解(CR)率较低。在本研究中,CD7+AML组病人中 CD117表达率高于 CD7-AML组,AML伴CD7,CD117患者预后差,是独立的影响因素还是伴随因素,需要进一步研究证明。本研究发现CD7+AML组病人中CD64,CD15表达率低于CD7-AML组。一般认为,CD64,CD15是较为成熟的髓系标志,说明了CD7-AML患者白血病细胞多来源于较成熟阶段的细胞。通过CD7+AML与CD34,CD38,HLA-DR,CD117,CD64,CD15 表达关系进行探讨,我们发现CD7+AML患者白血病细胞多来源于较早期阶段的细胞,这可能是导致CD7+AML患者治疗预后不佳的原因。
Huiwitz等[21]回顾性分析发现,B淋巴系抗原CD19在t(8;21)(q22;q22)AML的表达显著高于其他类型的AML,而t(8;21)(q22;q22)AML是一组预后较好的AML,可见CD19和t(8;21)(q22;q22)一样是AML预后好的指标,同时也有研究[22]表明,CD19+AML患者的缓解率高。本研究发现,CD7+AML组病人中CD19表达率低于CD7-AML组,本研究已证实CD7+AML患者白血病细胞多来源于较早期阶段的细胞,说明CD19+AML患者白血病细胞多来源于较为成熟阶段的细胞,这可能是导致CD19+AML患者治疗预后好的原因。
综上所述,CD56+AML患者更具有侵袭性,髓外浸润的风险更高,使预后变差。CD7+AML患者白血病细胞多来源于较早期阶段的细胞,治疗预后不佳。CD19+AML患者白血病细胞多来源于较为成熟阶段的细胞,治疗预后好。因此,通过研究CD56和CD7,能更全面、准确地评估患者的预后,从而寻找更合适的治疗方案。