金 纳 米 花 的 快 速 可 控 制 备 及 应 用
2018-07-27郭新秋
郭 攀, 郭新秋, 殷 姗, 陈 峰, 何 琳
(上海交通大学 a.化学化工学院;b.分析测试中心,上海 200240)
0 引 言
金纳米花独特的光学性质、高的光热转化效率、良好的生物相容性,在表面增强拉曼散射、生物医用材料等方面得到普遍应用,并引起了研究者的重视[1-5]。
制备金纳米花的主要方法是模板法[6]。表面活性剂在金纳米花生长过程中起到模板-结构导向剂作用,对其形貌调控起到至关重要的作用[7-9]。目前合成金纳米花的表面活性剂主要有:聚乙烯吡咯烷酮(PVP)[10]、N-(2-羟乙基)哌嗪-N-2-乙烷磺酸(HEPES)[11-12]、六亚甲基-1,6-双(十二烷基二甲基铵溴)(C12C6C12Br2)[13]和N,N,N’-二甲基-N,N’-二十四烷基乙烷-1,2-二胺(C14C2C14Br2)[4]等。Xie等[14]采用HEPES为表面活性剂制备金纳米花,以牛血清白蛋白为稳定剂,罗丹明B为拉曼探针,检测出细胞内拉曼信号。Jia等[15]用十八烷基胺(C18N3)制备金纳米花,获得多分枝的金纳米花,极大增强了表面拉曼散射强度。金纳米花的制备虽然较成熟,但仍存在一些问题:① 制备时间长;② 金纳米花不稳定;③ 生物相容性差。
HED3A[16]与金属离子具有超强的螯合作用,且稳定性高和结构导向强。因此,本文采用HED3A作为合成金纳米花的表面活性剂,高效制备出稳定性高、拉曼信号增强效果显著和生物相容性好的金纳米花。通过改变HED3A、AA和HAuCl4浓度,实现了对金纳米花的形貌调控。该反应快速,1 min完成,制得的金纳米花有以下优点:① 稳定性高,12个月形貌无变化;② 拉曼散射信号增强效果显著,R6G检出限可达10 nmol/L;③ 生物相容性好。
1 实验部分
1.1 实验试剂及仪器
主要试剂:氯金酸(HAuCl4·3H2O)、抗坏血酸(AA)、罗丹明6G(R6G)、二甲基亚砜(DMSO)(均购于国药集团化学试剂),噻唑蓝(MTT)购于Aldrich,细胞培养基(DMEM)、胎牛血清(FBS)购于PAA公司,大鼠肝脏细胞(BRL-3A)购于中科院上海细胞所。
主要仪器:FEI生物型透射电镜(Tecnai G2 spirit Biotwin,)、核磁共振波谱仪(AvanceⅢ400 MHz,Bruker)、红外光谱仪(IR/Nicolet 6700,Agilent)、高液相色谱-线性离子阱质谱联用仪(HPLC1260<QXL,Thermo-fisher)、紫外可见分光光度计(UV/EV300,Thermo Electron CORP)、色散型共聚焦拉曼光谱仪(Senterra R200-L,Bruke)、酶标仪(Elx800,BioTek)。
1.2 金纳米花的制备
根据文献[16]中制备HED3A。取4个烧杯,依次加入不同浓度的HED3A溶液,混合均匀后分别加入HAuCl4,AA,1 min内溶液颜色由黄色变成褐色或紫色,证明反应完全,离心10 min,1 000 r/s,上清液除掉,将得到的金纳米花分散在超纯水中。
1.3 金纳米花形貌的调控
1.3.1HED3A浓度的影响
将4 mL浓度为0.1、1、10及50 mmol/L的HED3A分别加入到反应体系中,然后加入2 mL 2 mg/mL的HAuCl4和 0.2 mL 0.08 mol/L的AA,其他制备过程与1.2节相同。
1.3.2AA浓度的影响
将4 mL 1 mmol/L的HED3A溶液,2 mL 2 mg/mL的HAuCl4溶液分别加入到反应体系中,然后加入2 mL浓度为0.06、0.08 、0.12及0.2 mol/L的AA溶液,其他制备过程与1.2节相同。
1.3.3HAuCl4浓度的影响
将4 mL 1 mmol/L的HED3A溶液分别加入到反应体系中,然后加入2 mL浓度为0.5、1、2及3 mg/mL的HAuCl4溶液和2 mL 0.08 mol/L的AA溶液,其他制备过程与1.2节相同。
1.3.4温度的影响
向体系中分别加入4 mL 1 mmol/L的HED3A,2 mL 2 mg/mL的HAuCl4溶液,2 mL 80 mmol/L的AA溶液,改变反应温度20 °C、30 °C、50 °C、80 °C,其他制备条件与1.2节相同。
1.4 表面增强拉曼光谱的测试
以R6G为拉曼探针,金纳米花为基底,使用激发波长532 nm激光器,激发功率10 mV,曝光时间10 s。
1.5 细胞毒性测定
将BRL-3A细胞种植于96孔板中,放在培养箱(5% CO2和37 ℃)中培养,当细胞完全贴壁后,加不同浓度的金纳米花,继续培养细胞24 h或48 h后,加入MTT溶液,再将96孔板培养4 h后,加入DMSO,酶标仪测定490 nm处的吸光(A)值。
2 结果与讨论
2.1 HED3A浓度的影响
保持体系中V(AA0.08 mol/L)=0.2 mL,V(HAuCl4 2 mg/mL)=2 mL不变,当HED3A浓度从0.1 mmol/L增加到10 mmol/L时,金纳米花形貌由致密变得疏松(见图1(a)~(c));随着浓度继续增大,则生成金纳米球(见图1(d))。由此可见,HED3A可有效调控金纳米花的形貌,在金纳米花合成过程中起到结构导向剂的作用。这种现象与有限配体和充足配体保护效应有关[17-18]。当HAuCl4及AA的浓度相同,HED3A浓度较低时,初期产生的金纳米晶由于表面包裹的表面活性剂较少,为了减少体系的表面能,生成的金纳米晶不稳定,作为晶核聚集成金纳米花。随着表面活性剂浓度的增加,包裹在金纳米晶表面的表面活性剂较多,使金纳米晶无法进行各向异性生长,从而生成最稳定的球形。
(a)0.1 mmol/L,(b)1 mmol/L,(c)10 mmol/L,(d)50 mmol/L
2.2 AA浓度的影响
保持体系中V(HED3A 1 mmol/L)=4 mL,V(HAuCl4 2 mg/mL)=2 mL不变,当AA浓度为0.06 mol/L时,得到金纳米花结构较致密(见图2(a));随着AA浓度增加,金纳米花形貌没有显著变化(见图2(b)~(d))。表明AA浓度对金纳米花形貌影响不大,不能实现对金纳米花形貌的有效调控。当HED3A、HAuCl4浓度一定时,改变AA浓度,只是稍微改变金纳米晶生长速度,对金纳米花形貌影响不显著。
(a)
(b)
(c)
(d)
2.3 HAuCl4浓度的影响
保持体系中V(HED3A 1 mmol/L)=4 mL,V(AA 0.08 mol/L)=0.2 mL不变,当HAuCl4浓度小于0.5 mg/mL时,制备得到的是金纳米球(见图3(a));当浓度从0.5 mg/mL 增加至3 mg/mL时,制备得到金纳米花(见图3(b)~(d))。由此可知,改变HAuCl4浓度,可有效改变金纳米花的形貌。当HED3A、AA浓度一定,HAuCl4浓度较低时,初期得到的金纳米晶数目少,包裹在单个金纳米晶表面的表面活性剂相对较多,阻止了金纳米晶各向异性生长,趋向于生成最稳定的球形;随着氯金酸浓度增加,初期生产的金纳米晶数目增多,则单个金纳米晶表面包裹的表面活性剂较少,金纳米晶不稳定,聚集生成金纳米花。
(a) 0.5 mg/mL,(b)1 mg/mL, (c)2 mg/mL, (d)3 mg/mL
2.4 温度的影响
保持体系中V(HED3A 1 mmol/L)=4 mL,V(HAuCl4 2 mg/mL)=2 mL,V(AA 0.08 mol/L)=0.2 mL,不变,改变反应温度,当温度在10~50 °C变化时,得到金纳米花(见图4(a)~(c));当温度升高到80 °C时,制得金纳米球(见图4(d))。表明控制温度在80 °C以下,可有效地制备出金纳米花。温度过高,反应速度过快,得到金纳米晶数目较多,制备得到金纳米球。
(a)20 °C,(b) 30 °C, (c) 50 °C, (d)80 °C
2.5 金纳米花的稳定性测试
金纳米花在室温放置12月后,形貌基本没有变化(见图5(a)~(b)),表明此金纳米花的稳定性好,可长期保存。
(a)0个月 (b)12个月
2.6 SERS性能测试
以金纳米花作为拉曼基底,测得R6G的拉曼信号检出限可达10 nmol/L(见图6),表明该金纳米花可显著增强R6G的拉曼信号,是一种较好的拉曼增强基底材料。
图6 罗丹明6G的拉曼光谱图
2.7 细胞毒性实验
当金纳米花的浓度达到4 mg/mL,与大鼠肝脏细胞共同培养48 h后,细胞的存活率仍>75%(见图7),表明该金纳米花具有较小的细胞毒性,是一种潜在的生物医用材料。
图7 不同浓度的金纳米花与大鼠肝脏细胞共同
3 结 语
本文以HED3A作为制备金纳米花的表面活性剂。通过改变反应条件,制备出形貌可控的金纳米花。实验发现:HED3A、HAuCl4及温度可有效调控金纳米花的形貌。
制备得到的金纳米花稳定性高,拉曼增强效果显著、细胞毒性小,是一种潜在的表面增强拉曼及生物医用材料。