APP下载

过表达SOX6基因对卵巢癌SKOV3细胞增殖、凋亡的影响及其机制

2018-06-19刘恩令周玉秀王立群李君陈梅张冬红蔡朝辉陈俊臣

山东医药 2018年20期
关键词:孵育卵巢癌荧光

刘恩令,周玉秀,王立群,李君,陈梅,张冬红,蔡朝辉,陈俊臣

(河北医科大学附属唐山市工人医院,河北唐山063000)

SOX6属于SRY相关基因家族,该家族能够编码一系列转录因子,其共同特点是具有保守的HMG-box DNA结合域[1]。有研究表明,SOX6基因异常表达参与多种肿瘤的发生、发展[2,3]。但SOX6基因对卵巢癌细胞生物学特性的影响鲜见报道。2018年1月,本研究采用特异性质粒转染卵巢癌SKOV3细胞,挑选稳定过表达SOX6基因的细胞,检测该细胞增殖、凋亡情况,探讨SOX6基因在卵巢癌发生、发展中的作用。

1 材料与方法

1.1 材料 卵巢癌SKOV3细胞株购于美国ATCC公司。Edu增殖试剂盒、Hoechst33342试剂盒购自南京凯基生物科技有限公司,CCK-8试剂盒购自日本东仁公司,蛋白激酶B(Akt)、磷酸化蛋白激酶B(p-Akt)、PTEN及β-actin抗体均购自美国CST公司。酶标仪购自美国Thermo公司,荧光显微镜购自Becton Dickinson公司,INTERFERINGTM转染试剂购自法国Polyplus Transfection公司,特异性overexpression序列及其阴性对照序列、重组质粒pcDNA3.1-SOX7及其阴性空载体pc-DNA3.1-mock购自上海生工科技公司,cDNA反转录酶试剂盒购自日本TaKaRa公司,RPMI 1640培养基购自Hyclone公司。

1.2 过表达SOX6基因的SKOV3细胞模型构建 SKOV3细胞培养于含10% FBS的RPMI 1640培养基中,每孔2×105个细胞。培养基中常规加入100 IU/mL青霉素、100 IU/mL链霉素,培养温度为37 ℃。挑选生长良好的细胞随机分为实验组及对照组,每组3个复孔,分别转染pcDNA3.1-SOX7及pc-DNA3.1-mock。转染48 h后采用荧光定量PCR法检测SOX6表达,结果显示,实验组及对照组SOX6 mRNA相对表达量分别为(353.3±27.3)%、(100.0±2.1)%,实验组高于对照组(P<0.05)。提示过表达SOX6基因的SKOV3细胞模型构建成功。

1.3 过表达SOX6基因的SKOV3细胞相关指标观察

1.3.1 细胞活性 将两组细胞以1×104个/孔接种于96孔板,置于细胞培养箱中培养72 h。将100 μL新鲜培养基与10 μL CCK-8试剂混合并加入各孔。将96孔板置于37 ℃孵育1 h,采用酶标仪测定450 nm波长处的光密度(OD)值。

1.3.2 细胞增殖情况 采用Edu荧光染色法。取两组对数生长期细胞,以4 000个/孔接种于96孔板中,培养至对数生长期。用细胞培养基按1 000∶1的比例稀释 Edu 溶液(试剂A),制备适量50 μmol/L的Edu培养基,每孔加入100 μL 50 μmol/L的Edu培养基孵育1 h,弃培养基,PBS清洗细胞 1~2次,每次5 min,每孔加入100 μL细胞固定液(含4%多聚甲醛的PBS),室温孵育30 min;每孔加入2 mg/mL甘氨酸,脱色摇床孵育5 min,弃甘氨酸溶液,每孔加入100 μL PBS,脱色摇床清洗5 min,弃PBS,每孔加入100 μL渗透剂(含0.5%Triton X-100的PBS),脱色摇床孵育 10 min,PBS清洗 1次,每孔加入100 μL 1 mg/mL DAPI,避光、室温、脱色摇床孵育10 min,PBS 清洗1~3次。染色完成后,荧光显微镜(×100)下随机取5个视野,计数总细胞数及Edu染色阳性细胞数,计算细胞增殖率。细胞增殖率=Edu染色阳性细胞数/总细胞数×100%。

1.3.3 细胞凋亡情况 采用Hoechst法。将两组细胞接种于事先放有载玻片的培养板中,在培养板中将已爬好细胞的玻片用PBS浸洗,15~25 ℃条件下置于新配制的4%多聚甲醛中固定1 h。PBS洗3遍,将制备好的玻片浸泡在装有Hoechst33342染液的染色缸中,避光作用10 min;荧光显微镜(×100)下选用340 nm的激发光观察,活细胞呈弥散均匀荧光,凋亡细胞核或细胞质内可见浓染致密的颗粒块状荧光。如果观察到≥3个DNA荧光碎片判定为凋亡细胞,计算细胞凋亡率。

1.3.4 PTEN、Akt及p-Akt蛋白表达 采用Western blotting法。将两组细胞用RIPA裂解,提取细胞总蛋白,12% SDS-PAGE电泳后转到聚偏氟乙烯膜上,室温下用5%脱脂牛奶封闭2 h,分别加入特异性PTEN、Akt、p-Akt、β-actin一抗,4 ℃孵育过夜。TBST洗膜3次,每次5 min,室温下孵育1 h,采用ECL化学发光和曝光显影。其中一抗有效浓度为1∶1 000~1∶2 000。以β-actin为内参,以目的蛋白电泳条带灰度值与内参β-actin蛋白电泳条带灰度值的比值作为目的蛋白相对表达量。

2 结果

2.1 两组细胞活性比较 实验组及对照组OD450值分别为2.1±0.1、4.3±0.5,组间比较P<0.05。

2.2 两组细胞增殖率比较 实验组及对照组细胞增殖率分别为(13.2±2.2)%、(43.3±4.2)%,组间比较P<0.05。

2.3 两组细胞凋亡率比较 实验组及对照组细胞凋亡率分别为(15.2±3.2)%、(5.2±1.4)%,组间比较P<0.05。

2.4 两组PTEN、Akt及p-Akt蛋白表达比较 与对照组比较,实验组PTEN蛋白表达增加,p-Akt蛋白表达降低,组间比较P均<0.05。见表1。

表1 两组PTEN、Akt及p-Akt蛋白相对表达量比较

注:与对照组比较,*P<0.05。

3 讨论

SOX家族是一类高度保守的HMG结构域,其编码的蛋白广泛参与性别决定、调节胚胎神经系统发育、软骨形成、血细胞生成、晶状体发育等多脏器分化,在肿瘤的发生、发展中发挥重要作用[4]。SOX6是SOX基因家族的一个重要成员。有研究表明,抑制SOX6基因表达能够促使脑干细胞朝胶质瘤样细胞分化[2];SOX6参与多种肿瘤的发生、发展,在肝癌组织中SOX6表现为抑癌基因作用[3,5]。SOX6表达增加能显著抑制食管癌细胞增殖[6];能够通过抑制胰腺癌细胞表皮间质化过程,同时感染Akt信号通路,从而降低细胞侵袭力[7]。与瘤旁正常组织相比,SOX6在骨肉瘤组织中低表达,通过下调TWIST1表达抑制肿瘤细胞的迁移、侵袭及表皮间质化过程[8]。SOX6还可抑制前列腺癌、直肠癌细胞增殖[9,10]。但是,SOX6与卵巢癌的关系目前尚未明确。本研究结果显示,特异性重组质粒pcDNA3.1-SOX6可增加 SKOV3细胞SOX6基因表达,过表达SOX6的SKOV3细胞活性下降,细胞增殖率降低,细胞凋亡率升高。证实过表达SOX6可显著抑制卵巢癌SKOV3细胞活性及其增殖,并可促进细胞凋亡。SOX6在卵巢癌中的作用与上述研究中的结果相一致。

研究证实,PTEN/Akt信号通路广泛参与肿瘤细胞的增殖、分化、转移等多个过程,在多数恶性肿瘤中,PTEN表达均被抑制,从而导致PI3K/Akt持续激活,如在乳腺癌中PTEN蛋白表达抑制导致Akt蛋白持续磷酸化,进而参与肿瘤的发生、发展[11~14]。PTEN/Akt通路激活可抑制卵巢癌细胞增殖[11],而抑制该通路则促进卵巢癌细胞增殖[15]。本研究采用Western blotting法检测PTEN/Akt信号通路的关键蛋白PTEN、Akt及p-Akt,首次证实在卵巢癌SKOV3细胞中过表达SOX6基因能够显著促进PTEN蛋白表达,Akt蛋白表达无变化,磷酸化的Akt蛋白表达降低,说明PTEN/Akt信号通路参与了SOX6基因过表达对SKOV3细胞增殖及凋亡影响的过程,而是否有其他信号通路参与该过程则有待更进一步研究。

综上所述,过表达SOX6基因能够抑制卵巢癌SKOV3细胞增殖并促进细胞凋亡,其机制可能与抑制PTEN/Akt细胞信号通路激活有关。

参考文献:

[1] Siegel R,Naishadham D,Jemal A. Cancer statistics,2013[J]. CA Cancer J Clin,2013,63(1):11-30.

[2] Kurtsdotter I,Topcic D,Karlen A,et al. SOX5/6/21 prevent oncogene-driven transformation of brain stem cells[J]. Cancer Res,2017,77(18):4985-4997.

[3] Xiong G,Wang Y,Ding Q,et al. Hsa-mir-1269 genetic variant contributes to hepatocellular carcinoma susceptibility through affecting SOX6[J]. Am J Transl Res,2015,7(10):2091-2098.

[4] Zhao L,Koopman P. SRY protein function in sex determination: thinking outside the box[J]. Chromosome Res,2012,20(1):153-162.

[5] Guo X,Yang M,Gu H,et al. Decreased expression of SOX6 confers a poor prognosis in hepatocellular carcinoma[J]. Cancer Epidemiol,2013,37(5):732-736.

[6] Li H,Zheng D,Zhang B,et al. Mir-208 promotes cell proliferation by repressing SOX6 expression in human esophageal squamous cell carcinoma[J]. J Transl Med,2014,12(1):196.

[7] Jiang W,Yuan Q,Jiang Y,et al. Identification of Sox6 as a regulator of pancreatic cancer development[J]. J Cell Mol Med,2018,22(3):1864-1872.

[8] Wang Z,Li J,Li K,et al. SOX6 is downregulated in osteosarcoma and suppresses the migration,invasion and epithelial-mesenchymal transition via TWIST1 regulation[J]. Mol Med Rep,2018,17(5):6803-6811.

[9] Yu Y,Wang Z,Sun D,et al. miR-671 promotes prostate cancer cell proliferation by targeting tumor suppressor SOX6[J]. Eur J Pharmacol,2018(823):65-71.

[10] Li Y,Li C,Chen L,et al. MicroRNA-766 targeting regulation of SOX6 expression promoted cell proliferation of human colorectal cancer[J]. Onco Targets Ther,2015(8):2981.

[11] He Z,Chen AY,Rojanasakul Y,et al. Gallic acid,a phenolic compound,exerts anti-angiogenic effects via the PTEN/AKT/HIF-1alpha/VEGF signaling pathway in ovarian cancer cells[J]. Oncol Rep,2016,35(1):291-297.

[12] 张刚,李中,林晓萌,等.乳腺癌组织中 PTENp-AKT 蛋白表达变化及相关性分析[J].山东医药,2014,54(19):48-49.

[13] Dhar S,Kumar A,Li K,et al. Resveratrol regulates PTEN/Akt pathway through inhibition of MTA1/HDAC unit of the NuRD complex in prostate cancer[J]. Biochim Biophys Acta,2015,1853(2):265-275.

[14] Lim HJ,Crowe P,Yang JL. Current clinical regulation of PI3K/PTEN/Akt/mTOR signalling in treatment of human cancer[J]. J Cancer Res Clin Oncol,2015,141(4):671-689.

[15] Timsah Z,Ahmed Z,Ivan C,et al. Grb2 depletion under non-stimulated conditions inhibits PTEN,promotes Akt-induced tumor formation and contributes to poor prognosis in ovarian cancer[J]. Oncogene,2016,35(17):2186-2196.

猜你喜欢

孵育卵巢癌荧光
miR-181a在卵巢癌细胞中对顺铂的耐药作用
干式荧光发光法在HBV感染诊疗中应用价值
高荧光量子产率BODIPY衍生物的荧光性能研究
三物黄芩汤组分(群)配伍在大鼠肝微粒体孵育模型中的相互作用
大鼠肝微粒体孵育体系中2种成分的测定及其代谢
Wnt3 a和TCF4在人卵巢癌中的表达及临床意义
精子与慢病毒孵育制备转基因猪的分子检测及遗传分析
卵巢癌脾转移的临床研究进展
microRNA与卵巢癌转移的研究进展
荧光增白剂及其安全性和环保性