一起山羊传染性胸膜肺炎的诊治

刘俊虎，杜文华

（内蒙古乌兰察布市四子王旗动物卫生监督所，乌兰察布 011800）

0 引言

羊传染性胸膜肺炎致病菌分为山羊丝状支原体和绵羊丝状支原体，在自然条件下，山羊丝状支原体只感染山羊，不会感染绵羊，主要危害3岁以下的山羊。而绵羊肺炎支原体既可以感染山羊，也可以感染绵羊。患病羊和隐性带菌羊是该种疾病的主要传染源。患病羊的肺组织和胸腔渗出液中含有大量致病菌，健康羊通过接触被患病羊污染过的环境、饲料、垫料、饮用水、饲养用具会导致该种疾病在羊群中快速传播。山羊传染性胸膜肺炎，一年四季均可发生，常发生于秋末冬初和早春，牧草较少季节。饲养管理不科学，免疫不到位，引种不当，均会导致该种疾病在羊群中传播，给养殖户造成严重危害。

1 发病经过

内蒙古乌兰察布市四子王旗2017年3月12日，向上级兽医站报告，他养殖的羊群中出现异常发病情况，主要表现为体温升高，咳嗽流鼻涕，食欲减退等症状。接到求助后，兽医立即赶往该养殖场。到达养殖场后，通过和养殖户进行全面的沟通交流得知该养殖户于上个月从外地调入20只断奶羔羊，到场后没有进行严格的检疫和隔离观察就混群饲养。饲养1个月后，羊群中陆续出现患病羊。同时通过调查发现该养殖场免疫程序不到位，未对羊群免疫接种山羊传染性支原体肺炎疫苗、口蹄疫疫苗和布鲁氏杆菌疫苗。整个养殖场饲养管理较差，羊群集中饲养，未科学分群，同时羊舍卫生环境较差，垫料板结严重，粪便堆积，没有及时清理，羊舍内通风不良，有毒有害气体累积。结合该养殖场饲养条件和免疫程序，兽医怀疑是羊传染性胸膜肺炎，确诊之后立即采取措施进行针对性防治，很好的控制了病情，避免养殖户经济损失进一步扩大。

2 临床症状

发病初期，患病羊体温升高到41℃以上，精神沉郁，食欲减退，随后出现明显的咳嗽症状，从鼻腔中先是流出清澈鼻液，患病羊发病4～5 d后，鼻液逐渐由清澈变为脓性，脓性鼻液常常粘附于鼻孔、上唇，随后鼻液进一步转化成黄白色，有时在鼻液中还会夹杂大量铁锈色血丝。患病羊一侧出现严重的胸膜肺炎变化，按压患病羊胸腔，表现为明显的疼痛、敏感。随着病情进一步发展，患病羊呼吸困难并出现嘶哑呻吟声，被毛杂乱无光泽，头颈伸直呼吸，腰背拱起，粘膜严重充血发紫，从眼睑分泌出脓性分泌物。2头妊娠中期，母羊出现流产症状。有11只病死羊，最终因为严重衰竭而死。

3 病理学变化

解剖11只病死羊，发现病变位置主要集中在胸部，所有病死羊胸腔内存在大量黄色积液，暴露在空气中，一段时间后，能够凝结成纤维素性蛋白块。主要病变脏器在肺脏，所有病死羊尖叶、心叶和部分隔叶前缘出现不同程度的肝变和实质性病变，病变部位和健康部位界限十分明显，病变部位呈现肉红色或者暗红色。有6只病死羊胸膜增厚而变得粗糙，肺脏与肋膜、心包膜严重粘连，不能正常分离。将采集到的肺脏组织放入到10%的福尔马林溶液中，进行全面固定，常规方法制成石蜡切片，用H.E.染色镜检，发现肺泡壁显著增厚，并存在大量淋巴细胞，巨噬细胞浸润。部分区域的小叶间质因水肿显著增宽。在支气管及肺泡腔内存在浆液纤维素性渗出物，大量嗜中性粒细胞浸润，并能够发现大量脱落的上皮组织细胞。

4 实验室诊断

4.1 病原菌镜检

无菌环境下采集上述病死羊胸腔积液，肺脏病变组织，送到内蒙古动物防疫中心进行病原学检查。将采集到的病料制成图片后经火焰固定，用革兰氏和姬姆萨染色后镜检，镜检发现用革兰氏染色的触片致病菌不能很好着色。用姬姆萨染色的触片着色明显，视区内存在大量的两极浓染，呈现球形、杆状、逗点状等多种形态的致病菌体。

4.2 致病菌分离

将采集到的病料分别接种到普通琼脂培养基和鲜血琼脂培养基上，将培养基放置在37℃含有5%的二氧化碳恒温箱内培养3 d，观察普通琼脂培养基和鲜血琼脂培养基致病菌生长状态。观察发现在普通琼脂培养基上致病菌不能正常生长，而鲜血琼脂培养基上生长出透明、水滴状致病菌菌落，放在显微镜下观察致病菌菌落中央呈现乳头状突起[1]。小心挑取分离得到的致病菌，制成涂片用革兰氏染色镜检，为革兰氏阴性染色，多种形态的致病菌。

4.3 全血凝集试验

无菌环境下采集典型临床症状，患病羊新鲜血液，使用羊传染性胸膜肺炎标准抗原，进行全血凝集试验。取经过消毒灭菌的玻璃板滴加一滴标准抗原，然后向其中滴加新鲜血液，混合均匀后作用5 min，发现新鲜血液凝集[2]。结合发病经过、临床症状、病理学变化、实验室诊断结果最终确诊为山羊传染性胸膜肺炎。

4.4 药敏实验

取分离得到的致病菌，使用常规纸片法，进行药敏实验。实验结果显示该种致病菌对泰乐菌素、氟苯尼考、林可霉素、替米考生高敏。

5 防治

5.1 药物治疗

本次诊治共出现患病羊43头，治疗前死亡11头，治疗无效死亡9头。本次治疗选择使用30%的替米考星注射液，按照体重每公斤使用0.2 mL，肌肉注射，每天1次，连续使用5 d为1个疗程。同时，针对病情较为严重的患病羊，每天使用10%的葡萄糖注射液500 mL，维生素C注射液10 mL，5%的碳酸氢钠注射液250 mL，混合后1次静脉注射，每天1次，连用5 d。治疗5 d后使用10%的氟苯尼考注射液，按照体重每公斤使用0.2 mL，每天2次，连续使用3 d为1个疗程。通过采用上述治疗手段，治疗9 d，除9头患病羊因为病情严重治疗无效死亡外，剩余患病羊恢复健康，病情得到有效控制，连续跟踪随访1个月羊群未继续发病。同时对健康羊颈及接种羊传染性胸膜肺炎疫苗，皮下免疫接种。

5.2 预防

将换病羊和健康羊进行全面隔离养殖，健康羊异地放牧。及时清理羊舍内的粪便和污染物堆积发酵，对地面、环境、饲槽、运动场使用400倍液的百毒杀消毒剂喷雾消毒，每天1次，连续使用1周。病死羊禁止上市销售，运送到指定无害化处理地点，进行深埋处理。导致该养殖场发病的主要原因是因为引种不当，因此要指导饲养户科学引种，禁止到疫区引种，在引种之前要做好引种第一病调查工作，充分掌握当地疫病流行特点和流行趋势。新引进的羊群到场后必须进行严格的检疫和隔离观察，至少30 d以上，确保健康，再次检疫、免疫注射、全面消毒后才能混群饲养。同时患病羊才恢复健康后每个月采集患病羊新鲜血液，进行全血凝集试验，检测出隐性带菌羊后，立即淘汰处理，连续3次检测未发现隐性带菌羊，表示净化完全[3]。共检测7次，检测出带菌羊13头。要为养殖户制定严格的免疫程序，并要求养殖户严格执行免疫接种制度。定期免疫接种羊口蹄疫、羊小反刍兽疫、羊传染性胸膜肺炎、羊三联四防疫苗、羊痘疫苗，定期做好羊群驱虫消毒工作。

[1] 江锦秀，林裕胜，游伟，等．福建省羊支原体性肺炎分子流行病学研究[J]．福建农业学报，2017（1）：12-16．

[2] 崔康康，姚亚军，肖虎锁，等．一起羊支原体性肺炎的诊疗[J]．山东畜牧兽医，2017（10）：38．

[3] 郭立民，李信涛，王伟霞．规模化羊场羊支原体性肺炎的诊治与防控[J]．黑龙江畜牧兽医，2015（6）：87-88．