锌指样转录因子4与动脉粥样硬化研究进展
2018-01-24罗彩云丁家望郑霞霞张再强
罗彩云 丁家望 郑霞霞 周 天 张再强
(三峡大学第一临床医学院心内科,湖北 宜昌 443003)
动脉粥样硬化(AS)是引起心血管事件的病理基础,其发病机制尚不明确。目前更倾向于认为AS是一种慢性血管炎症性疾病〔1〕,血管壁在各种内源性及外界刺激下损伤,多种炎症因子、免疫细胞及相关细胞因子相互作用发挥炎性效应,形成慢性炎症。近来发现,锌指样转录因子(KLF)4是参与调控心血管系统的重要转录因子〔2〕,能通过不同途径抑制或激活炎性因子,调控血管内皮细胞活化、巨噬细胞极化、平滑肌细胞(SMC)增殖和迁移,发挥心血管保护作用。本文探讨KLF4在AS的作用。
1 KLF4的概述
KLFs家族属于真核生物中含锌指结构较保守的转录因子家族,是生物体内一类具有重要功能的蛋白质,参与细胞生长、增殖、分化及凋亡等多个生命活动的调控〔2〕。KLF4是KLFs家族中的一员,在机体多种组织及细胞表达,如血管内皮、SMC、巨噬细胞等。KLF4基因定位于9q31,其cDNA编码全长为1 413 bp,编码由470个氨基酸组成的蛋白质。KLF4具有3个不同功能的结构域,包括DNA结合结构域、转录调节结构域和核定位序列,是其发挥生物学效应的基础。DNA结合结构域位于羧基末端,主要识别并结合与其具有高度亲和力的富含GC的DNA序列〔3〕,这是KLF家族其中一个显著的特点。KLF4氨基端含有转录调节结构域,包括两个不同位点的转录激活结构域和转录抑制结构域,表明 KLF4具有激活基因转录和抑制基因转录双重效应。由于非DNA结合区域高度变异,KLF4能与不同靶基因结合发挥不同的生物学效应。KLF4在细胞周期或细胞凋亡中发挥作用,主要是通过抑制P53的表达参与调节细胞周期中的G1/S期和G2/M期〔4〕。
2 KLF4与AS炎症细胞的相互作用
KLF4是AS斑块浸润的SMC、内皮细胞、单核细胞、巨噬细胞等细胞中的重要转录因子,在不同细胞中发挥着不同的作用,从基因水平上调控靶基因将为防治AS提高到新水平。
2.1KLF4与SMC表型转化 血管SMC(VSMCs)的表型转化是高血压、AS和血管再狭窄等血管重塑性疾病的主要病理学基础〔5〕。正常VSMC呈收缩表型,KLF4低表达,但是,当氧化型低密度脂蛋白(oxLDL)、免疫损伤等AS危险因素存在时,SMC向合成型转化,KLF4表达水平明显升高〔6〕,这表明KLF4表达水平的高低与SMC表型有关。Shankman等〔7〕研究发现,条件性敲除SMC KLF4基因可抑制SMC表型转化及增强斑块稳定性,免疫沉淀技术检测到SMC有多个KLF4靶点,而这些靶点可能参与吞噬、凋亡、细胞迁移及炎症等多个过程,抑制或促进AS发生发展。由此推断,VSMC表型的转化受到KLF4信号网络的调控。
Myocardin是血清反应因子(SRF)的转录激活因子,通过调控 CArG-盒依赖性基因,参与SMC分化的关键环节〔8〕。Turner等〔9〕研究发现,Myocardin启动子内的上游阻遏区域(URR)有3个进化保守的KLF4位点,在特定条件下阻遏KLF4与启动子结合,持续促进Myocardin基因表达。相反,当KLF4过表达显著降低Myocardin mRNA水平,抑制Myocardin对SMC分化标记基因的激活作用。然而,KLF家族中的KLF5或KLF2并不具备这种功能。这表明,KLF4在调控SMC分化标志基因方面可能具有特异性。还有研究发现,KLF4是一个直接受过氧化物酶体增殖物激活受体(PPAR)γ蛋白调控的下游靶因,PPARγ拮抗剂通过激活Akt蛋白激酶信号及抑制KLF4去泛素化来维持KLF4蛋白的稳定表达,从而影响VSMCs增殖分化〔10〕。
表观遗传调控是判定SMC分化状态的一个重要调节方式,尤其是在SMC分化标志基因启动子区域组蛋白乙酰化修饰的调控。SMC染色质结构受到多种因素的影响,转化生长因子(TGF)-β1是一个强效促 VSMC 分化因子,TGF-β1 通过介导p38丝裂原活化蛋白激酶(MAPK)和smad信号通路促进磷酸化KLF4与P300结合及组蛋白H3乙酰化,从而促进SMC标志基因的转录〔11,12〕。而视黄酸活化KLF4与TGF-β1 有着类似的作用方式〔13〕。促SMC增殖刺激因子血小板源性生长因子(PDGF)-BB诱导KLF4去磷酸化和组蛋白去乙酰化酶(HDAC)2去乙酰化,两者与细胞外信号调节激酶(ELK)1协同作用抑制SMC标志基因的表达〔14〕,这表明,促使组蛋白乙酰化的因素都与诱导KLF4 表达有关,可以推断,染色质重塑的过程依赖于KLF4。SMC α-actin标志基因组蛋白H4乙酰化,被发现是HDAC2和HDAC5与KLF4直接交互作用产生〔15〕。这一结果进一步说明,KLF4 是通过组蛋白乙酰化修饰抑制SMC分化标志基因。研究KLF4与组蛋白乙酰化之间的关系,从表观遗传学角度揭示VSMC表型调节机制及分化的新机制。
MicroRNAs代表控制SMC分化状态的另一种表观遗传机制,通过针对性降解信使RNA发挥转录后抑制作用。miR-1与KLF4直接结合调控胚胎干细胞向SMC分化〔16〕。KLF4是TGF-β和骨形态发生蛋白(BMP)4诱导SMC收缩基因表达的先决条件,TGF-β和BMP4通过诱导miRs-143 和miRs-145迅速下调KLF4表达〔17〕。此外,KLF4介导miR-15a阻止细胞周期进程,减少内皮细胞和VSMC细胞周期蛋白D1表达〔18〕。综上所述,转录因子 KLF4对维持VSMC内环境的平衡是必不可少的。
2.2KLF4与巨噬细胞 内皮下的巨噬细胞是泡沫细胞的主要来源。巨噬细胞不同亚型极化及其作用是近年来AS病理研究的热点,巨噬细胞主要分为经典活化的巨噬细胞M1和替代性活化的巨噬细胞M2两个亚型。Sharma等〔19〕发现,巨噬细胞极化依赖于转录因子KLF4的调控。骨髓细胞或巨噬细胞KLF4缺失的APOE-/-小鼠较APOE-/-小鼠血脂明显升高,IL-6和IL-1β促炎因子表达水平升高,AS斑块面积增加。提示KLF4促进巨噬细胞向M2型分化,负向调控免疫应答。这表明,KLF4具有抑制血管炎症和抗AS的作用。Karpurapu等〔20〕研究者运用非增殖性PU.1诱导的髓系祖细胞和分化的骨髓巨噬细胞模型,发现PU.1能够特异性与去甲基化的KLF4启动子结合,巨噬细胞分化标志F4/80表达增强。相反,敲除胞嘧啶核苷脱氨酶(AICDA)基因可抑制KLF4启动子去甲基化,PU.1与KLF4亲和力明显下降。结果表明,KLF4启动子通过去甲基化修饰调控巨噬细胞的活化,可能是通过胞嘧啶核苷脱氨酶发挥作用。
巨噬细胞是促进斑块不稳定的重要炎症细胞,微环境的变化会影响巨噬细胞活化。干扰素(IFN)-γ、脂多糖(LPS)、肿瘤坏死因子(TNF)-α下调KLF4表达,诱导巨噬细胞活化,降低斑块稳定性,而抗炎因子TGF-β1作用则相反〔21〕。然而,KLF4与TGF-β1相互作用的分子机制尚不清楚。Feinberg等〔21〕研究发现,KLF4与核因子(NF)-κB家族P65共同作用于诱导型一氧化氮合酶(iNOS)启动子,通过拮抗信号蛋白Smad3羧基端激活剂p300/CBP 抑制TGF-β1/Smad3信号通路。由此证明,KLF4在调控促炎症反应巨噬细胞发挥重要作用,同时可以作为调控 TGF-β1/Smad3信号通路的靶点。此外,其他研究从促进脂质代谢方面阐述了KLF4在巨噬细胞中的意义。 Stavri等〔22〕发现,单核细胞向巨噬细胞分化时,高表达的KLF4与CAMP反应元件结合蛋白(CREB)协同激活载脂蛋白(APO)E基因启动子,抑制斑块的进展并减少并发症的发生。提示以KLF4为靶点调控巨噬细胞APOE基因表达,改善脂质代谢内环境,将为抗AS治疗提供更有效的方式。
2.3KLF4与血管内皮细胞 KLF4表达于血管内皮细胞的细胞质和胞核,在调节血管生物学功能中起重要作用。缺失KLF4的内皮细胞或造血细胞可上调黏附分子的表达,促使AS斑块巨噬细胞聚集,浸润的炎性细胞以旁分泌的方式促进SMC增殖,诱导损伤的新生内膜形成〔23〕。KLF4高表达可下调TNF-α诱导的血管细胞黏附分子(VCAM)1的表达,并能抑制内皮型一氧化氮合酶(eNOS)、血栓调节蛋白(TM)的表达并能减少促炎细胞因子产生,具有抗炎、抗血栓作用〔24〕。研究发现,运用siRNA技术沉默 KLF4基因的小鼠较控制组血管内皮钙黏蛋白的表达减弱,内皮细胞通透性增强,小鼠更易出现肝损伤、肺水肿〔25〕。结果表明,KLF4具有维持内皮细胞屏障功能的作用。他汀类药物上调内皮细胞抗AS基因与KLF家族转录因子相关〔26〕。为明确基因调控的机制,研究者对人脐静脉内皮细胞(HUVECs)给予他汀类药物处理后进行微阵列分析,发现KLF4是高度诱导基因,靶点则是位于其近端启动子区域的肌细胞增强因子(MEF)2。由此可见,KLF4将是他汀类药物调节内皮细胞的一个新的转录因子。
NF-κB是调控炎症、凋亡、自噬过程的中枢,选择性抑制SMC NF-κB信号通路,能减弱SMC表型转化和新生内膜形成。并且,NF-κB与KLF4同时参与内皮细胞表达黏附因子、巨噬细胞迁移的调控,但是两者之间的作用方式具有细胞选择性,如在SMC中两者具有协同作用,而在内皮细胞和巨噬细胞相互拮抗〔27〕。
2.4KLF4与淋巴细胞 TH17是新近发现的一种CD4+细胞亚型,在炎症性疾病、自身免疫性疾病扮演重要作用。初始CD4+细胞向其他T细胞亚型分化受到特异性转录因子调控。研究者〔28〕发现,KLF4能与TH17 细胞启动子结合,表明KLF4能直接调控TH17细胞分化。并且,在敲除KLF4基因小鼠体内发现,调控TH7细胞的重要转录因子维甲酸相关孤核受体(ROR)yt表达上调,这表明KLF4与RORyt两种转录因子在调节TH17细胞分化方面分别发挥作用。
3 展 望
AS是多种细胞及细胞因子参与的慢性血管炎症性疾病,其中斑块的形成是AS的标志。如何减缓斑块的形成和破裂,减少并发症的发生仍是目前最大的难题。大量研究表明,KLF4具有调节SMC增殖和分化、抑制巨噬细胞发挥炎症效应、维持内皮细胞的正常功能等多种生物学效应,从而减轻炎症和增强斑块稳定性,以KLF4为靶点将会为治疗AS带来新的曙光。但是,KLF4调控AS斑块浸润的不同细胞的分子机制及是否能诱导SMC向其他细胞表型定向转化等一系列问题仍需大量的研究验证。
4 参考文献
1Lahoute C,Herbin O,Mallat Z,etal.Adaptive immunity in atherosclerosis:mechanisms and future therapeutic targets〔J〕.Nat Rev Cardiol,2011;8(6):348-58.
2Yoshida T,Hayashi M.Role of Krüppel-like factor 4 and its binding proteins in vascular disease〔J〕.J Atheroscler Thromb,2014;21(5):402-13.
3Park CS,Shen Y,Lewis A,etal.Role of the reprogramming factor KLF4 in blood formation 〔J〕.J Leukoc Biol,2016;99(5):673-85.
4Tetreault MP,Yang Y,Katz JP.Krüppel-like factors in cancer〔J〕.Nat Rev Cancer,2013;13(10):701-13.
5Yoshida T,Owens GK.Molecualr determinants of vascular smooth muscle cell diversity〔J〕.Circ Res,2005;96(3):280-91.
6Zheng B,Han M,Wen JK,etal.Role of Krüppel-like factor 4 in phenotypic switching and proliferation of vascular smooth muscle cells〔J〕.IUBMB Life,2010;62(2):132-9.
7Shankman LS,Gomez D,Cherepanova OA,etal.KLF4-dependent phenotypic modulation of smooth muscle cells has a key role in atherosclerotic plaque pathogenesis〔J〕.Nat Med,2015;21(6):628-37.
8Zheng XL.Myocardin and smooth muscle differentiation〔J〕.Arch Biochem Biophys,2014;543(1):48-56.
9Turner EC,Huang CL,Govindarajan K,etal.Identification of a Klf4-dependent upstream repressor region mediating transcriptional regulation of the myocardin gene in human smooth muscle cells〔J〕.Biochim Biophys Acta,2013;1829(11):1191-201.
10Sun Y,Zheng B,Zhang XH,etal.PPAR-γ agonist stabilizes KLF4 protein via activating akt signaling and reducing KLF4 ubiquitination〔J〕.Biochem Biophys Res Commun,2014;443(2):382-8.
11Spin JM,Maegdefessel L,Tsao PS.Vascular smooth muscle cell phenotypic plasticity:focus on chromatin remodelling〔J〕.Cardiovasc Res,2012;95(2):147-55.
12He M,Zheng B,Zhang Y,etal.KLF4 mediates the link between TGF-β1-induced gene transcription and H3 acetylation in vascular smooth muscle cells〔J〕.FASEB J,2015;29(9):4059-70.
13Zhang R,Han M,Zheng B,etal.Krüppel-like factor 4 interacts with p300 to activate mitofusin 2 gene expression induced by all-trans retinoic acidin VSMCs〔J〕.Acta Pharmacol Sin,2010;31(10):1293-302.
14Salmon M,Gomez D,Greene E,etal.Cooperative binding of KLF4,pELK-1,and HDAC2 to a G/C repressor element in the SM22α promoter mediates transcriptional silencing during SMC phenotypic switching in vivo〔J〕.Circ Res,2012;111(6):685-96.
15Yoshida T,Gan Q,Owens GK.Krüppel-like factor 4,Elk-1,and histone deacetylases cooperatively suppress smooth muscle cell differentiation markers in response to oxidized phospholipids〔J〕.Am J Physiol Cell Physiol,2008;295(5):C1175-82.
16Xie C,Huang H,Sun X,etal.MicroRNA-1 regulates smooth muscle cell differentiation by repressing Kruppel-like factor 4〔J〕.Stem Cells Dev,2011;20(2):205-10.
17Davis-Dusenbery BN,Chan MC,Reno KE,etal.Down-regulation of Kruppel-like factor-4 (KLF4) by microRNA-143/145 is critical for modulation of vascular smooth muscle cell phenotype by transforming growth factor-beta and bone morphogenetic protein 4〔J〕.J Biol Chem,2011;286(32):28097-110.
18Zheng X,Li A,Zhao L,etal.Key role of microRNA-15a in the KLF4 suppressions of proliferation and angiogenesis in endothelial and vascular smooth muscle cells〔J〕.Biochem Biophys Res Commun,2013;437(4):625-31.
19Sharma N,Lu Y,Zhou G.Myeloid Krüppel-like factor 4 deficiency augments atherogenesis in ApoE-/-mice-brief report〔J〕.Arterioscler Thromb Vasc Biol,2012;32(12):2836-8.
20Karpurapu M,Ranjan R,Deng J,etal.Krüppel like factor 4 promoter undergoes active demethylation during monocyte/macrophage differentiation〔J〕.PLoS One,2014;9(4):e93362.
21Feinberg MW,Cao Z,Wara AK,etal.Kruppel-like factor 4 is a mediator of proinflammatory signaling in macrophages〔J〕.J Biol Chem,2005;280(46):38247-58.
22Stavri S,Simionescu M,Kardassis D,etal.Krüppel-like factor 4 synergizes with CREB to increase the activity of apolipoprotein E gene promoter in macrophages〔J〕.Biochem Biophys Res Commun,2015;468(1-2):66-72.
23Yoshida T,Yamashita M,Horimai C,etal.Deletion of Krüppel-like factor 4 in endothelial and hematopoietic cells enhances neointimal formation following vascular injury〔J〕.J Am Heart Assoc,2014;3(1):e000622.
24Zhou G,Hamik A,Nayak L,etal.Endothelial Krüppel-like factor 4 protects against atherothrombosis in mice〔J〕.J Clin Investig,2012;122(12):4727-31.
25Shatat MA,Tian H,Zhang R,etal.Endothelial Kruppel-like factor 4 modulates pulmonary arterial hypertension〔J〕.Am J Respir Cell Mol Biol,2014;50(3):647-53.
26Maejima T,Inoue T,Kanki Y,etal.Direct evidence for pitavastatin induced chromatin structure change in the KLF4 gene in endothelial cells〔J〕.PLoS One,2014;9(5):e96005.
27Atkins GB,Simon DI.Interplay between NF-κB and Kruppel-like factors in vascular inflammation and atherosclerosis:location,location,location〔J〕.J Am Heart Assoc,2013;2(3):e000290.
28Lebson L,Gocke A,Rosenzweig J,etal.Cutting edge:the transcription factor Kruppel-like factor 4 regulates the differentiation of Th17 cells independently of RORγt〔J〕.J Immunol,2010;185(12):7161-4.