NADC30-like PRRSV流行特点

（龙岩学院生命科学学院，福建省家畜传染病防治与生物技术重点实验室，福建省生猪疫病防控工程技术研究中心，福建龙岩 364000）

NADC30-like PRRSV流行特点

刘建奎 戴爱玲 杨小燕

（龙岩学院生命科学学院，福建省家畜传染病防治与生物技术重点实验室，福建省生猪疫病防控工程技术研究中心，福建龙岩 364000）

2013年左右我国出现了引起妊娠母猪严重流产和仔猪呼吸系统疾病的新流行毒株，由于该类毒株与美国毒株NADC30高度同源，称之为NADC30-like PRRSV。本文在调查国内规模化猪场PRRSV流行病学的基础上，结合国内学者的研究成果对NADC30-like PRRSV在我国的流行特点、重组特征以及致病性进行了总结，以期为该类毒株的防控提供参考。

NADC30-like PRRSV；基因重组；致病性；防控

S852.65

A

1673-4645(2017)12-0030-03

2017-12-05

福建省科技重大专项项目（2014NZ0002-3），福建省自然科学基金项目（2016J01168）

刘建奎（1982-），男，山东聊城人，博士，主要从事分子病原学与免疫学研究，E-mail：liujiankui99@126.com

杨小燕（1961-），女，福建龙岩人，主要从事动物疫病的诊断研究，E-mail：lyyxy1988@126.com

猪繁殖与呼吸综合征（PRRS）是由猪繁殖与呼吸综合征病毒（PRRSV）引起的一种高度传染性疾病，主要引起母猪的繁殖障碍及仔猪呼吸道疾病。该病自1987年在美国被首次报道以来，迅速蔓延至几乎所有的养猪国家，给养猪业造成了巨大的经济损失[1-2]。1996年郭宝清等证实PRRS在我国存在[3]，随后迅速传播至全国各个省份，2006年我国多个省份的猪场暴发了高发病率和高死亡率的“猪高热综合征”，给我国的养猪业带来前所未有的经济损失，后证实引起此次疫病的主要病原为高致病性猪繁殖与呼吸综合征病毒（HP-PRRSV）。2013年左右，国内出现了新流行毒株，由于该类毒株与美国毒株NADC30高度同源，称之为NADC30-like PRRSV。其基因组特点是在Nsp2基因缺失131 aa，遗传进化分析表明该类毒株很可能为从美国引进的种猪携带输入NADC30毒株[4-6]。临床调查发现该类毒株主要引起怀孕母猪流产和新生仔猪呼吸道疾病。2014年该类毒株在国内迅速传播，分子流行病学调查研究NADC30-like毒株在我国至少18个省份呈流行态势，给中国的养猪业造成严重的经济损失。NADC30-like PRRSV与以往流行的毒株不同，该类病毒与其他PRRSV重组机率显著提升，重组后毒株之间毒力差异较大，导致现有的商品化疫苗不能对其提供有效的免疫保护。

1 NADC30-likePRRSV复制特点、致病性

PRRSV的毒力不仅与病毒滴度有关，还与病毒在体内复制的速度和时间有关。NADC30-like FJZ03毒株于2013年分离自福建某猪场。动物试验表明，攻毒后第1天（1 DPC），FJZ03组仔猪体温升高到40℃之上，攻毒后第3天（3 DPC）达到最高（平均体温40.5℃），仔猪表现出咳嗽、打喷嚏和厌食等症状。仔猪体内的病毒载量在接种FJZ03后迅速上升，攻毒后第7天（7 DPC）时达到最高，与HP-PRRSV FJLYDX攻毒组相比，FJZ03毒株能更早地诱发仔猪发热，可能与该毒株在体内能较快地复制和较高的病毒载量有关。FJZ03攻毒后在猪只的鼻、咽喉分泌物中检测到PRRSV核酸的时间早于FJLYDX攻毒组，表明猪群感染FJZ03毒株后能迅速向环境中排毒，从而感染其他猪只，导致此类毒株的快速传播（表1）。病理剖检显示，FJZ03攻毒组仔猪主要的病理变化为间质性肺炎、出血性坏死性肾炎，全身淋巴结出现不同程度的淋巴结炎、胸腺萎缩以及脾脏出血等，与HP-PRRSV引起的病理变化相似。中国农业大学杨汉春教授也证实NADC30-like PRRSV CHsx1401是中等毒力毒株，可引起仔猪体温升高和典型呼吸道症状，三种减毒活疫苗对其提供有限的交叉保护[7]。

2 基因重组

目前我国猪群中主要存在以下5种不同的PRRSV：经典PRRSV、经典PRRSV疫苗株、高致病性PRRSV、高致病性PRRSV疫苗株和NADC30-like PRRSV。部分猪场存在两个以上的不同毒株，这为病毒的重组提供了条件。研究表明NADC30-like PRRSV与国内流行毒株的重组机率非常高[8-11]。致病性毒株JL580（NADC30-like HP-PRRSV）来源于HP-PRRSV和NADC30之间的重组，HNyc15毒株（NADC30-like PRRSV）来源于NADC30和经典毒株CH-1a之间重组。基因组特性分析表明JL580和HNyc15为NADC30-like PRRSV，而不属于 JXA1-like PRRSV。14LY01-FJ、14LY02-FJ、15LY01-FJ和15LY02-FJ来源于HP-PRRSV与NADC30之间的重组，重组位置在Nsp2基因，基因组特性分析表明4株毒株为JXA1-like PRRSV（图1）。动物试验表明重组后新毒株导致仔猪的死亡率为40%～100%，明显高于NADC30或NADC30-like PRRSV毒株。临床调查发现JXA1-like PRRSV和NADC30-like PRRSV重组后新毒株不仅具有高致病性，而且传播速度比较快，即使疫苗免疫猪场也不能幸免。

最新研究表明 15JX1、15HEN1、TJnh1501、FJXS15等多个毒株来源于HP-PRRSV与HP-PRRSV疫苗株的重组。动物试验证实，重组毒株PRRSV感染的仔猪比其亲本毒株表现更严重的临床症状，持续的高热、较高的病毒血症和严重肺损（图2）。

3 防控措施

表1 鼻、咽喉分泌物和血清PRRSV ORF7检测结果

图1 14LY01-FJ、 14LY02-FJ、 15LY01-FJ 和 15LY02-FJ （a～d） Simplot重组分析

图2 接种FJXS15、FJZ03和JXA1-R后仔猪体温变化

图3 接种FJXS15、FJZ03和JXA1-R后仔猪存活率

减毒活疫苗已成为控制PRRS的重要手段，虽然PRRSV-MLV疫苗可以诱导机体产生免疫保护反应，但并不能对所有毒株起到有效的交叉保护作用[12-14]。目前在我国市场上有7种PRRSV疫苗销售，研究表明MLV疫苗不能对猪只提供有效的免疫保护，这可能与疫苗毒株和NADC30-like PRRSV之间的抗原性差异性较大有关，不能对异源型病毒产生较好的交叉保护[7,15-16]。

因此，对该类毒株采取综合防控的措施，定期检测PRRSV抗原和抗体，根据检测结果选择与流行毒株相匹配的PRRS减毒活疫苗预防该病，同时采取严格的生物安全措施降低PRRSV在猪场的循环。加强后备母猪的引种管理，后备母猪引种后至少需要隔离60天，经检测和观察确定健康后才能入群，避免引进带毒猪。加强饲养管理，做好消毒工作，减少应激，增强猪非特异性抵抗力。有条件的猪场实行闭群饲养，定期检测，逐步实现猪场PRRSV净化。

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