SRT1720对高糖诱导的小鼠系膜细胞凋亡的影响
2017-07-25李冠青史永红
刘 静,张 瑞,李冠青,史永红,3
(1.河北医科大学病理学教研室,河北 石家庄 050017;2.开滦总医院肾内科,河北 唐山 063000;3.河北省肾脏病重点实验室,河北 石家庄 050017)
SRT1720对高糖诱导的小鼠系膜细胞凋亡的影响
刘 静1,2,张 瑞1,李冠青1,史永红1,3
(1.河北医科大学病理学教研室,河北 石家庄 050017;2.开滦总医院肾内科,河北 唐山 063000;3.河北省肾脏病重点实验室,河北 石家庄 050017)
目的 观察Sirt1激活剂SRT1720对高糖诱导的小鼠肾小球系膜细胞凋亡的作用。方法 体外培养小鼠肾小球系膜细胞,随机分为正常糖组、正常糖+甘露醇组、高糖组及高糖+SRT1720组。采用原位末端转移酶标记技术(TUNEL)及流式细胞术检测细胞凋亡;流式细胞术检测活性氧簇(ROS)产生;Western blot检测caspase-3、cleaved caspase-3、Bax、Bcl-2、p38 MAPK、p-p38 MAPK、Sirt1、p53、乙酰化p53及细胞色素C的表达;实时定量PCR检测Bax和Bcl-2 mRNA的表达。结果 与正常糖对照组相比,高糖组系膜细胞ROS产生和细胞凋亡明显增加,cleaved caspase-3、p-p38 MAPK和乙酰化p53表达增高、Bax/Bcl-2比率明显升高、Sirt1表达下降以及细胞色素C易位。SRT1720干预能够明显抑制高糖诱导的系膜细胞凋亡和ROS产生;下调cleaved caspase-3、乙酰化p53和p-p38 MAPK的表达;上调Sirt1的表达;减少Bax/Bcl-2比率和细胞色素C 易位。结论 SRT1720能够抑制高糖诱导的系膜细胞凋亡,可能是通过减少ROS产生、保护线粒体功能、抑制p53乙酰化以及p38MAPK信号通路激活而实现的。
SRT1720;小鼠肾小球系膜细胞;凋亡;氧化应激;沉默信息调节因子2 相关酶1;p53
随着人均寿命的延长和生活习惯的改变,糖尿病(diabetes mellitus, DM)发病率逐年增加。糖尿病肾病(diabetic nephropathy, DN)是糖尿病最常见的微血管并发症。肾小球系膜细胞的凋亡在DN发病过程中发挥重要作用,其造成的系膜细胞缺失是导致糖尿病肾损伤的重要机制之一[1-2]。高糖(high glucose, HG)可通过诱导活性氧簇(reactive oxygen species, ROS)的产生,促进肾小球系膜细胞凋亡[1]。我们的前期研究表明,抗氧化肽SS-31能够明显抑制高糖诱导的肾小球系膜细胞ROS产生以及细胞凋亡[3]。研究表明,肾脏特异性过表达沉默信息调节因子2 相关酶1 (silent mating type information regulation 2 homolog 1,Sirt1)能够抑制顺铂引起的肾脏ROS产生[4]。Sirt1激活剂白藜芦醇能够抑制糖尿病肾脏细胞氧化应激以及细胞凋亡[5]。SRT1720是一种Sirt1的激活剂,其在体内的代谢时间比白藜芦醇更长,它与Sirt1 之间的结合能力是白藜芦醇的1 000倍左右[6]。研究表明,SRT1720对缺血/再灌注引起的肾脏细胞凋亡具有明显保护作用[7]。然而,SRT1720对HG诱导的肾小球系膜细胞凋亡的作用,还未见报道。本实验旨在探讨SRT1720对HG诱导的小鼠肾小球系膜细胞凋亡的作用以及相关作用机制。
1 材料与方法
1.1 材料 小鼠系膜细胞(CRL-1927)来自美国菌种保藏中心(Manassas, VA)。D-glucose和Mannitol为Sigma公司产品;兔抗caspase-3、cleaved caspase-3、p38 MAPK和p-p38 MAPK为美国Cell Signaling公司产品;兔抗Sirt1、Bax、Bcl-2、p53、acetylated p53和细胞色素C抗体购自英国Abcam公司;TUNEL试剂盒为美国Promega公司产品;SRT1720购自美国Selleckchem公司;辣根酶标记羊抗兔IgG购自北京中杉金桥公司;聚偏二氟乙烯膜(PVDF)为美国Millipore公司产品。
1.2 方法
1.2.1 细胞培养和分组刺激实验 以含5%胎牛血清、2 mmol·L-1L-谷氨酰胺、100 kU·L-1青霉素和100 mg·L-1链霉素的DMEM-F12(3 ∶1)培养基,5% CO2、37℃培养箱中常规培养细胞。待MMCs达75%~85%融合后,用无血清培养基同步24 h。将细胞分成4组: 正常糖组(5.6 mmol·L-1葡萄糖,NG)、正常糖+甘露醇组(5.6 mmol·L-1葡萄糖+24.4 mmol·L-1甘露醇,M)、高糖组(30 mmol·L-1葡萄糖,HG)、高糖+SRT1720组(30 mmol·L-1葡萄糖+10 μmol·L-1SRT1720, HG+SRT)。于刺激的不同时间收集细胞,进行以下观察。
1.2.2 流式细胞术(FCM)检测细胞凋亡 收集上清及贴壁细胞,用PBS洗2次,用体积分数0.70的乙醇4℃固定24 h,PBS洗2次,碘化丙啶避光染色30 min,流式细胞仪观察。
1.2.3 末端脱氧核苷酸转移酶介导dUTP缺口标记法(TUNEL)检测细胞凋亡 MMCs接种于8孔Lab-Tek®腔室玻片(美国Nalge Nunc公司)上,分组刺激48 h。根据说明书使用DeadEndTM荧光TUNEL系统检测细胞凋亡。荧光显微镜下计数每个高倍视野中阳性染色细胞数和总细胞数,计算阳性细胞百分比。
1.2.4 Western blot检测 细胞用冰冷PBS洗2遍,加入细胞裂解液(25 mmol·L-1Tris-HCl, 10 mmol·L-1EDTA,体积分数0.01 NP-40,150 mmol·L-1氯化钠,质量浓度1 g·L-1苯甲基磺酰氟), 冰浴1 h,4 ℃、14 000 r·min-1离心25 min,Lowry法测定上清液蛋白浓度。分离线粒体和不含线粒体的胞质蛋白。不含线粒体的胞质蛋白用于检测细胞色素C。细胞裂解蛋白50 μg,经十二烷基硫酸钠-聚丙烯酰胺(SDS-PAGE)凝胶电泳后,电转移至PVDF膜;5%脱脂奶粉封闭PVDF膜2 h,分别加入caspase-3、cleaved caspase-3、p38 MAPK、p-p38 MAPK、Bax、Bcl-2、p53、acetylated p53以及细胞色素C抗体,4℃过夜,洗膜后,加辣根过氧化物酶标记的羊抗兔抗体(1 ∶5 000稀释),37 ℃孵育1.5 h;洗膜后加ECL试剂。采用ODYSSEY双色红外激光成像系统(美国LICOR公司)扫描。用美国UVP公司LabWorks 4.5分析系统软件对Western blot条带进行定量分析。
1.2.5 实时定量PCR(real-time PCR)检测 TRIzol法提取系膜细胞总RNA,采用逆转录酶将RNA逆转录为cDNA。所用引物均由上海生工生物技术公司合成。Bcl-2引物序列,正义5′-GGCGGAGAACAGGGTACGATAAC-3′, 反义5′-CGGGATGCGGCTGGATGGGG-3′;Bax引物序列,正义5′-GCTTGCTTCAGGGTTTCATCCA-3,反义5′-TGTCCACGGCGGCAATCATC-3′;18S rRNA引物序列,正义5′-ACACGGACAGGATTGACAGA-3′,反义5′-GGACATCTAAGGGCATCACAG-3′。扩增条件为:预变性 95°C 30 s,进入循环,95 ℃ 5 s,57~59 ℃ 30 s,72 ℃ 30 s扩增40个循环。以18S rRNA作为内参照校正,用2-△△Ct法分析基因的相对表达。
1.2.6 FCM检测细胞内ROS 使用荧光探针5-(6)-羧基-2 ,7 -二氯荧光素(CM-DCHF-DA, Invitrogen) 检测细胞内ROS含量。MMCs接种于6孔板内,分组刺激48 h,洗涤细胞,胰酶消化,悬浮于PBS,最后加入含 10 μmol·L-1DCHF-DA的染液,37 ℃避光孵育30 min,流式细胞仪检测。
2 结果
2.1 SRT1720对高糖诱导的系膜细胞凋亡的影响 TUNEL和流式细胞术检测结果表明,与NG组相比,在高糖刺激48 h,小鼠系膜细胞凋亡细胞数明显增加(P<0.01);与HG组相比,SRT1720干预能够明显减少高糖诱导的细胞凋亡数(P<0.05,Fig 1)。此外,与正常对照组相比,渗透压(甘露醇)对细胞凋亡无明显影响。
2.2 SRT1720对高糖诱导的系膜细胞凋亡相关分子表达的影响 与NG组相比,HG糖组cleaved caspase-3表达和Bax/Bcl-2蛋白和mRNA比率明显增加(P<0.01);SRT1720干预能够明显抑制HG诱导的 cleaved caspase-3表达和Bax/Bcl-2蛋白和mRNA比率(P<0.05,Fig 2)。此外,甘露醇对系膜细胞cleaved caspase-3表达和Bax/Bcl-2蛋白和mRNA比率无明显影响。
2.3 SRT1720对HG诱导的系膜细胞线粒体细胞色素C释放的影响 亚细胞提取物的Western blot结果显示,HG刺激系膜细胞48 h,与正常糖对照组相比,高糖组胞质中的细胞色素C水平明显增加(P<0.01);与高糖组相比,SRT1720干预组细胞胞质中细胞色素C水平明显降低(P<0.05,Fig 3)。甘露醇组与正常对照组相比,胞质中细胞色素C水平无明显差异。
2.4 SRT1720对HG诱导系膜细胞p53乙酰化的影响 在高糖刺激的48 h,与NG组相比,HG组乙酰化p53水平明显升高(P<0.01);与高糖组相比,SRT1720干预组乙酰化p53水平明显降低(P<0.05,Fig 4)。甘露醇组与正常对照组相比,乙酰化p53水平无明显差异。
Fig 1 Effect of SRT1720 on HG-induced apoptosis in MMCs(n=6)
Apoptosis was detected by TUNEL(A) and flow cytometry(B). NG: 5.6 mmol·L-1glucose; M: 5.6 mmol·L-1glucose+24.4 mmol·L-1mannitol; HG: 30 mmol·L-1glucose; HG+SRT: 30 mmol·L-1glucose+10 μmol·L-1SRT1720.**P<0.01vsNG;#P<0.05vsHG
2.5 SRT1720对HG诱导的系膜细胞Sirt1表达以及ROS产生的影响 与NG组相比,HG组Sirt1蛋白水平表达明显降低(P<0.01);SRT1720干预能够增加高糖诱导的系膜细胞Sirt1蛋白的表达(P<0.05,Fig 5A)。与NG组相比,高糖组系膜细胞ROS产生明显升高(P<0.01);SRT1720干预能够明显减少高糖诱导的ROS产生(P<0.05,Fig 5B)。与正常对照组相比,甘露醇对系膜细胞Sirt1表达和ROS产生无明显影响。
Fig 2 Effect of SRT1720 on HG-induced activation of caspase-3 and expression of Bax and Bcl-2 in MMCs(n=6)
A:The protein expression of cleaved caspase-3, Bax and Bcl-2 was detected by Western blot; B: The mRNA expression of Bax and Bcl-2 was detected by real-time PCR. NG: 5.6 mmol·L-1glucose; M: 5.6 mmol·L-1glucose+24.4 mmol·L-1mannitol; HG: 30 mmol·L-1glucose; HG+SRT: 30 mmol·L-1glucose+10 μmol·L-1SRT1720.**P<0.01vsNG;#P<0.05vsHG
Fig 3 Effect of SRT1720 on HG-induced release of cytochrome C from mitochondria to cytoplasm in MMCs(n=6)
NG:5.6 mmol·L-1glucose; M:5.6 mmol·L-1glucose+24.4 mmol·L-1mannitol; HG: 30 mmol·L-1glucose; HG+SRT: 30 mmol·L-1glucose+10 μmol·L-1SRT1720.**P<0.01vsNG;#P<0.05vsHG
Fig 4 Effect of SRT1720 on HG-induced acetylated p53(Ac-p53) in MMCs(n=6)
NG: 5.6 mmol·L-1glucose; M: 5.6 mmol·L-1glucose+24.4 mmol·L-1mannitol; HG: 30 mmol·L-1glucose; HG+SRT: 30 mmol·L-1glucose+10 μmol·L-1SRT1720.**P<0.01vsNG;#P<0.05vsHG
Fig 5 Effect of SRT1720 on HG-induced Sirt1 expression and ROS production in MMCs(n=6)
A: The protein expression of Sirt1 was detected by Western blot; B: Intracellular ROS was detected by flow cytometry. NG: 5.6 mmol·L-1glucose; M: 5.6 mmol·L-1glucose+24.4 mmol·L-1mannitol; HG: 30 mmol·L-1glucose; HG+SRT: 30 mmol·L-1glucose+10 μmol·L-1SRT1720.**P<0.01vsNG;#P<0.05vsHG
2.6 SRT1720对HG诱导系膜细胞p38 MAPK激活的影响 在高糖刺激的48 h,与NG组相比,HG组p38 MAPK的磷酸化水平明显升高(P<0.01);与高糖组相比,SRT1720干预组p38 MAPK磷酸化水平明显降低(P<0.05,Fig 6)。甘露醇组与正常对照组相比,p38 MAPK磷酸化水平无明显差异。
3 讨论
研究表明[8],在糖尿病时,肾脏蓄积的大量ROS参与了糖尿病肾病的发病过程。系膜细胞是肾小球中的固有细胞之一,系膜细胞的凋亡在糖尿病肾病的发生、发展中发挥着重要作用。研究表明,实验性糖尿病肾病肾小球固有细胞数量可通过细胞凋亡而减少,并且肾小球系膜细胞凋亡数与蛋白尿的程度密切相关[9]。高糖能够明显诱导体外培养系膜细胞的凋亡,而抗氧化剂N-乙酰半胱氨酸、二亚苯基碘及维生素C能够明显抑制高糖诱导的小鼠系膜细胞的凋亡[1]。我们的研究也证实,抗氧化肽SS-31以及抗氧化剂tempol均能够抑制高糖诱导的系膜细胞凋亡[3,10]。以上提示,氧化应激参与了糖尿病状态下肾脏系膜细胞的凋亡。
Fig 6 Effect of SRT1720 on HG-induced activation of p38 MAPK in MMCs(n=6)
NG: 5.6 mmol·L-1glucose; M: 5.6 mmol·L-1glucose+24.4 mmol·L-1mannitol; HG: 30 mmol·L-1glucose; HG+SRT: 30 mmol·L-1glucose+10 μmol·L-1SRT1720.**P<0.01vsNG;#P<0.05vsHG
Sirt1为哺乳动物Sirtuins家族成员之一,是一种依赖于烟酰胺腺嘌呤二核苷酸(NAD+)的去乙酰化酶,在人组织中广泛表达, 参与了细胞的生存、衰老、凋亡和代谢等生物学过程。研究表明,Sirt1的激活剂白藜芦醇具有明显的抗氧化功能[11]。以往的研究已证实,Sirt1与糖尿病肾病密切相关。肾小管细胞过表达Sirt1能够改善糖尿病动物的蛋白尿[12]。白藜芦醇通过激活Sirt1对2型糖尿病小鼠肾脏具有明显保护作用[5]。本研究结果显示, Sirt1的激活剂SRT1720能够明显提高HG诱导的系膜细胞Sirt1表达,抑制HG诱导的MMCs内 ROS产生、细胞凋亡、cleaved caspase-3表达、Bax/Bcl-2比率和细胞色素C的易位。这些结果表明,SRT1720抑制HG诱导的系膜细胞凋亡可能是通过增加Sirt1表达、减少ROS和保护线粒体功能实现的。
p53是一个重要的抑癌基因,它可以通过乙酰化而激活,激活的p53能够诱导多种基因表达,导致细胞周期阻滞或凋亡。Sirt1过表达能够通过抑制p53的乙酰化,减少过氧化氢诱导的小鼠系膜细胞的凋亡[13]。体内外实验证实,Sirt1能够直接和p53蛋白结合,从而抑制p53的乙酰化以及细胞凋亡[14]。本研究结果显示,高糖刺激系膜细胞48 h,细胞内p53乙酰化水平明显升高,而SRT1720干预能够抑制高糖诱导的p53的乙酰化。以上结果提示,SRT1720抑制高糖诱导的细胞凋亡可能部分是通过调控p53的乙酰化实现的。
p38蛋白激酶(p38 MAPK)为丝氨酸/苏氨酸激酶家族成员,是一个重要的信号分子,参与调控包括细胞凋亡在内的许多细胞功能。Jung等[15]的研究显示,给予FR 167653(一种p38 MAPK抑制剂),能够改善糖尿病肾小球和HG诱导的系膜细胞凋亡。阻断p38 MAPK通路能够减少HG诱导的系膜细胞凋亡、cleaved、caspase-3表达、Bax/Bcl-2比率[10]。以上说明,p38 MAPK信号通路与系膜细胞凋亡密切相关。本研究显示,SRT1720能够明显抑制HG诱导的p38 MAPK的活化,提示SRT1720抑制HG诱导的MMCs凋亡可能部分是通过调节p38 MAPK通路活化实现的。
综上所述,SRT1720能够抑制高糖诱导的肾小球系膜细胞凋亡,这种作用可能是通过激活Sirt1,减少ROS产生,保护线粒体功能,抑制p53乙酰化以及p38 MAPK信号通路激活而实现的。
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Influence of SRT1720 on apoptosis of high glucose-induced mouse mesangial cells
LIU Jing1,2, ZHANG Rui1, LI Guan-qing1, SHI Yong-hong1,3
(1.DeptofPathology,HebeiMedicalUniversity,Shijiazhuang050017,China; 2.DeptofNephrology,KailuanGeneralHospital,TangshanHebei063000,China;3.HebeiKeyLabofKidneyDiseases,Shijiazhuang050017,China)
Aim To investigate the effect of Sirt1 activator SRT1720 on high glucose(HG)-induced apoptosis in mouse mesangial cells(MMCs).Methods Cultured mouse MMCs were divided into normal glucose group(NG), NG plus mannitol group(M), high glucose group(HG), HG plus SRT1720 group(HG+SRT). Apoptosis of MMCs was analyzed by DeadEndTMFluorometric TUNEL System and flow cytometry. Reactive oxygen species(ROS) production was observed by flow cytometry. The expression levels of caspase-3, cleaved caspase-3, Bax, Bcl-2, p38 MAPK, p-p38 MAPK, p53, acetylated p53 and cytochrome C protein were observed by Western blot. The mRNA levels of Bax and Bcl-2 were detected by real-time PCR. Results Compared with normal glucose group, the production of ROS, the number of cell apoptosis, the expression of cleaved caspase-3, p-p38 MAPK and acetylated p53 and ratio of Bax/Bcl-2 were significantly increased, the expression of Sirt1 was decreased, meanwhile, the release of cytochrome C from mitochondria to cytoplasm was significantly increased in MMCs in high glucose group. Treatment with SRT1720 inhibited HG-induced increase of ROS production, cell apoptosis, expression of cleaved caspase-3, acetylated p53 and p-p38 MAPK, ratio of Bax/Bcl-2 and release of cytochrome C, and reversed HG-induced Sirt1 expression.Conclusion SRT1720 could prevent HG-induced apoptosis maybe by decreasing ROS production, preserving mitochondrial function and inhibiting p53 acetylation and activation of p38 MAPK in MMCs.
SRT1720; mouse mesangial cells; apoptosis; oxidative stress; Sirt1; p53
2017-05-10,
2017-06-12
国家自然科学基金资助项目(No 81370825,81470966)
刘 静(1977-),女,硕士,副主任医师,研究方向:肾脏病学,E-mail: lj_ts@sohu.com; 史永红(1970-),男,博士,教授,博士生导师,研究方向:肾脏病理学,通讯作者,E-mail: yonghongshi@163.com
时间:2017-7-7 11:05 网络出版地址:http://kns.cnki.net/kcms/detail/34.1086.R.20170707.1104.048.html
10.3969/j.issn.1001-1978.2017.08.024
A
1001-1978(2017)08-1164-06
R-332;R322.61;R329.25;R587.2;R977.3