妊娠早期孕妇血清PAPP-A水平观察
2016-08-31曾昭伟王学谦常艳敏
曾昭伟 ,王学谦,常艳敏
(天津市南开医院,天津300100)
妊娠早期孕妇血清PAPP-A水平观察
曾昭伟 ,王学谦,常艳敏
(天津市南开医院,天津300100)
目的观察孕早期妇女血清妊娠相关血浆蛋白A(PAPP-A)水平变化。方法采用基于免疫微球标记的化学发光法检测160份孕8~14周妇女血清标本中的PAPP-A,并比较不同年龄、体质量指数(BMI)的孕12周妇女血清PAPP-A水平。结果孕8、9、10、11、12、13、14周孕妇中位血清PAPP-A水平分别为0.37、0.89、1.76、2.85、4.53、7.29、10.46 μg/mL,孕早期血清PAPP-A水平随孕周增加而增高(P均<0.05)。孕12周孕妇中,年龄≤25岁、>25~30岁、>30~35岁、>35岁孕妇血清PAPP-A水平分别为(4.78±0.43)、(5.02±0.38)、(4.28±0.29)、(3.62±0.18)μg/mL,其中年龄>35岁者血清PAPP-A水平低于年龄≤25岁、>25~30岁、>30~35岁者(P均<0.05);BMI 16~19者、>19~24者、>24者血清PAPP-A水平分别为(6.36±0.81)、(5.79±0.66)、(4.70±0.45)μg/mL,其中BMI>24者血清PAPP-A水平高于BMI 16~19者、>19~24者(P均<0.05)。结论孕早期妇女血清PAPP-A水平随孕周增加而增高,高龄者(年龄>35岁)和高BMI者(BMI>24)血清PAPP-A显著降低;在校正孕妇BMI、年龄等因素影响后,可得到更为精确的检测结果。
妊娠相关血浆蛋白A;妊娠早期;体质量指数;年龄;唐氏综合征
妊娠相关血浆蛋白A(PAPP-A)是Lin等[1]于1974年在孕妇血清中发现并分离的特异蛋白,主要由胎盘合体滋养层和蜕膜细胞合成分泌[2]。研究[3]表明,PAPP-A可能特定细胞生长有关,血清PAPP-A是产前筛查的参考指标之一,目前多用于唐氏综合征(DS)的筛查[4,5]。在孕妇血清中,PAPP-A与嗜酸性主要碱性蛋白前体(proMBP)以异源四聚体的形式存在[6]。常规检测手段ELISA法的灵敏性和特异性不足,检测结果易受到孕妇年龄、体质量指数(BMI)等的影响[7],且常规检测所用抗体未排除proMBP的固有干扰,因此在诊断DS方面不够精确。2015年4~8月,本研究采用基于微球的化学发光检测法,观察孕早期妇女血清PAPP-A水平变化,并分析孕妇年龄和BMI对PAPP-A检测结果的影响,现报告如下。
1 材料与方法
1.1试剂与仪器PAPP-A检测超敏试剂盒(由本实验室建立),离心机(型号Allegra X-22,贝克曼公司),0.22 μm微孔滤膜(美国Millipore公司),辣根过氧化物酶(HRP,美国GE公司),牛血清白蛋白(天津北方天医化学试剂厂),生物素、亲和素(Sigma公司),Lica Research 化学发光分析仪(上海博阳生物技术有限公司),96孔发光微孔板、链霉素亲和素包被供体球、受体微球(美国Perkin Elmer公司),其余试剂为国产分析纯。
1.2孕早期妇女血清标本的来源及处理收集来院孕检的妇女孕8、9、10、11、12、13、14周的静脉血标本分别为8、15、20、32、56、16、13份,共计160份、每份4 mL。孕妇年龄19~40岁,平均年龄28.5岁,平均BMI为21.77,入选者均为早孕期8~14周,排除各种异常妊娠者(如异位妊娠、胎儿宫内发育迟缓、妊娠高血压综合征、子痫前期)及合并其他严重疾病者(如心血管疾病、关节炎)。将血液标本以3 000 r/min离心10 min,取上清,-80 ℃保存。
1.3血清PAPP-A检测采用基于微球标记的化学发光免疫法检测血清PAPP-A。PAPP-A标准品浓度分别为0、1、2.5、5、10、25、50 μg/mL,每瓶0.5 mL分装,4 ℃保存备用;利用基于PAPP-A特异表位的重组抗原免疫小鼠制备PAPP-A抗体;在带有滤膜的离心管中加入0.1 mg PAPP-A抗体,9 000 r/min离心8 min,缓冲液洗涤6次,在抗体液中加入受体微球0.5 mg、25 mg/mL的 氰基硼氢化钠(NaBH3CN) 10 μL、10%Tween-20 1.25 μL,加磷酸盐缓冲液(PBS)至100 μL,37 ℃振荡48 h;在离心管中加入另一标记抗体1 mg,9 000 r/min离心8 min,缓冲液洗涤6次,在50 μL抗体溶液中加入22 mg/mL的生物素5 μL,室温振荡20 h,用带有滤膜的离心管去除剩余生物素;在96孔板中加入生物素化抗体(1∶2 000)25 μL、受体球(1∶100)25 μL、血清样本25 μL,37 ℃孵育30 min;避光条件下加入175 μL供体微球,37 ℃孵育10 min,测定信号值。PAPP-A检测结果均以中位数(MOM)表示[8]。
2 结果
2.1不同孕周孕妇血清PAPP-A水平孕8、9、10、11、12、13、14周孕妇中位血清PAPP-A水平分别为0.37、0.89、1.76、2.85、4.53、7.29、10.46 μg/mL,孕早期血清PAPP-A水平随孕周增加而增加(P均<0.05)。
2.2不同年龄孕妇血清PAPP-A水平比较孕12周孕妇中,年龄≤25岁、>25~30岁、>30~35岁、>35岁孕妇血清PAPP-A水平分别为(4.78±0.43)、(5.02±0.38)、(4.28±0.29)、(3.62±0.18)μg/mL,其中年龄>35岁者血清PAPP-A水平低于年龄≤25岁、>25~30岁、>30~35岁者(P均<0.05)。
2.3不同BMI孕妇血清PAPP-A水平比较孕12周孕妇中,BMI 16~19者、>19~24者、>24者血清PAPP-A水平分别为(6.36±0.81)、(5.79±0.66)、(4.70±0.45)μg/mL,其中BMI>24者血清PAPP-A水平高于BMI 16~19者、>19~24者(P均<0.05)。
3 讨论
DS是一种最常见的染色体异常遗传性疾病,智力发育不全是该病最突出、最严重的表现,并伴有其他严重的先天性、多发性畸形[9]。DS已成为影响我国出生人口素质的重要因素之一,尽早诊断并终止妊娠可减轻社会负担、提高出生人口素质。
PAPP-A是金属结合蛋白酶锌指多肽超家族成员之一,分子量约为500 kD[10]。PAPP-A可以由不同类型的细胞分泌,组织分布非常广泛,在子宫内膜、黄体、前列腺、睾丸、心肌、肾脏等处均有分布。巨噬细胞、成纤维细胞、成骨细胞、骨髓基质细胞、血管平滑肌细胞及胎盘滋养层的合体细胞、蜕膜细胞、卵巢粒膜细胞等均具有合成PAPP-A的能力[11]。近年来研究[12]表明,孕妇血清PAPP-A水平异常可能与胎儿染色体异常、异位妊娠、先兆流产、胎儿宫内发育迟缓有关。研究[13]表明,母体血清PAPP-A异常低值与胎儿染色体数目和结构异常有关,PAPP-A是孕早期最常用的筛查指标之一,敏感筛查时间为孕8~14周。PAPP-A与AFP、β-HCG联合检测,可提高染色体疾病检出率,减少畸形儿出生率[14]。PAPP-A检测还为滋养层细胞疾病、妊娠高血压综合征等妊娠相关疾病的筛查提供重要参考,有助于孕妇加强防范,保证母婴健康。
目前PAPP-A常用的检测手段为ELISA法,但检测准确率尚不理想[15],血清PAPP-A检测结果也易受到BMI[16]、年龄[17]以及单双胎[18]等多因素影响。为此,我们在制备PAPP-A特异抗体从而排除proMBP非特异干扰的基础上,利用灵敏性和准确性均较高的基于微球标记的化学发光法检测血清PAPP-A。我们选择了孕8~14周妇女的血清标本,检测结果显示,孕早期妇女血清PAPP-A水平随孕周增加而增加;在孕12周妇女中,高龄者(年龄>35岁)和高BMI者(BMI>24)血清PAPP-A显著降低,与国外研究结果相符[19]。因此,我们推测年龄、BMI等因素对血清PAPP-A检测结果有一定影响。
综上所述,PAPP-A检测虽不能做出诊断,但对胎儿无创伤,且对筛查出的高危人群可采取后续检查措施进一步确认,避免了对所有孕早期妇女进行有创检查。另外,血清PAPP-A水平也可间接反映胎儿宫内发育情况。但根据上述结果,我们认为PAPP-A检测结果必须对年龄、BMI等影响因素进行校正[20],才能反映真实的血清PAPP-A水平。然而,本研究收集的血清标本量相对较小,上述观点有待后续扩大标本量进行验证。我们将利用本实验室建立的优良检测体系,根据孕妇年龄及BMI细化分组,校正影响因素,推算出适用于特定地区的个性化系数,建立孕早期血清PAPP-A正常范围,使PAPP-A检测更好地应用于临床产前筛查。
[1] Lin TM,Halbert SP,Kiefer D,et al.Three pregnancy-associated plasma proteins: purification,monospecific antisera and immunological identication[J].Int Arch Allergy,1974,47(1):35-53.
[2] Zhang Y,Zhao Q,Xie Y,et al.A correlation analysis between the expression of pregnancy-associated plasma protein A in basal decidual cells and recurrent spontaneous abortion[J].Exp Ther Med,2013,6(2):485-488.
[3] Olivo-Vidal ZE,Rodríguez RC,Arroyo-Helguera O.Iodine Affects Differentiation and Migration Process in Trophoblastic Cells[J].Biol Trace Elem Res,2016,169(2):180-188.
[4] Hancerliogullari N,Aktulay A,Engin-Ustün Y,et al.Pregnancy-associated plasma protein a levels are decreased in obstetric cholestasis[J].Clin Exp Obstet Gynecol,2015,42(5):617-618.
[5] Huang T,Dennis A,Meschino WS,et al.First trimester screening for Down syndrome using nuchal translucency,maternal serumpregnancy-associated plasma protein A,free-β human chorionic gonadotrophin,placental growth factor,and α-fetoprotein[J].Prenat Diagn,2015,35(7):709-716.
[6] Kloverpris S,Skov LL,Glerup S,et al.Formation of high-molecular-weight angiotensinogen during pregnancy is a result of competing redox reactions with the proform of eosinophil major basic protein[J].Biochem J,2013,449(1):209-217.
[7] Park FJ,Leung CH,Poon LC,et al.Clinical evaluation of a first trimester algorithm predicting the risk of hypertensive disease of pregnancy[J].Aust N Z J Obstet Gynaecol,2013,53(6):532-539.
[8] Syngelaki A,Kotecha R,Pastides A,et al.First-trimester biochemical markers of placentation in screening for gestational diabetes mellitus[J].Metabolism,2015,64(11):1485-1489.
[9] Carmichael J,Krantz D,Liu HP,et al.Incorporation of dried blood alpha fetoprotein into traditional first trimester Down syndromescreening service[J].Prenat Diagn,2015,35(7):703-708.
[10] Szumska M,Krystyna T,Wielkoszyński T,et al.Evaluation of the influence of exposure to tobacco smoke on the concentration of the pregnancy-associated plasma protein A in the population of healthy men and non-pregnant women[J].Przegl Lek,2013,70(10):813-817.
[11] Jepsen MR,Kloverpris S,Botkjar JA,et al.The proteolytic activity of pregnancy-associated plasma protein-A is potentially regulated by stanniocalcin-1 and -2 during human ovarian follicle development[J].Hum Reprod,2016,31(4):866-874.
[12] Ozkan S,Sanhal CY,Yeniel O,et al.Pregnancy-associated plasma protein A gene polymorphism in pregnant women with preeclampsia and intrauterine growth restriction[J].Kaohsiung J Med Sci,2015,31(10):518-522.
[13] Torring N,Petersen OB,Becher N,et al.First trimester screening for other trisomies than trisomy 21,18,and 13[J].Prenat Diagn,2015,35(6):612-619.
[14] Huang T,Dennis A,Meschino WS,et al.First trimester screening for Down syndrome using nuchal translucency,maternal serumpregnancy-associated plasma protein A,free-β human chorionic gonadotrophin,placental growth factor,and α-fetoprotein[J].Prenat Diagn,2015,35(7):709-716.
[15] Liu Y,Ye X,Zhang N,et al.Diagnostic value of ultrasonographic combining biochemical markers for Down syndrome screening in first trimester: a meta-analysis[J].Prenat Diagn,2015,35(9):879-887.
[16] Esco MR,Nickerson BS,Bicard SC,et al.Agreement of BMI-Based Equations and DXA in Determining Body-Fat Percentage in Adults With Down Syndrome[J].Adapt Phys Activ Q,2016,33(1):89-96.
[17] Huynh L,Kingdom J,Akhtar S.Low pregnancy-associated plasma protein A level in the first trimester[J].Can Fam Physician,2014,60(10):899-903.
[18] Rosner JY,Fox NS,Saltzman D,et al.Abnormal Biochemical Analytes Used for Aneuploidy Screening and Adverse Pregnancy Outcomes in Twin Gestations[J].Am J Perinatol,2015,32(14):1331-1335.
[19] Wright D,Silva M,Papadopoulos S,et al.Serum pregnancy-associated plasma protein-A in the three trimesters of pregnancy: effects of maternalcharacteristics and medical history[J].Ultrasound Obstet Gynecol,2015,46(1):42-50.
[20] Sotiriadis A,Eleftheriades M,Chatzinikolaou F,et al.Fetal growth impairment after first-trimester chorionic villus sampling: a case-control study[J].J Matern Fetal Neonatal Med,2016,29(11):1731-1735.
天津市卫生局科技基金项目(2013KY24)。
10.3969/j.issn.1002-266X.2016.19.027
R714.1
B
1002-266X(2016)19-0074-03
2015-12-08)