miR-7对乳腺癌细胞阿霉素耐药性的逆转作用及机制
2016-04-06路选陈飞王颖李瑞青高小康孙鹤庆扬州市第一人民医院江苏扬州225000
路选,陈飞,王颖,李瑞青,高小康,孙鹤庆(扬州市第一人民医院,江苏扬州225000)
miR-7对乳腺癌细胞阿霉素耐药性的逆转作用及机制
路选,陈飞,王颖,李瑞青,高小康,孙鹤庆(扬州市第一人民医院,江苏扬州225000)
摘要:目的探讨microR (miR)-7对乳腺癌细胞阿霉素耐药性的逆转作用及可能的下游分子机制。方法采用ADR诱导体外人乳腺癌MCF-7细胞,建立阿霉素耐药性MCF-7/ADR细胞株;MCF-7或MCF-7/ADR乳腺癌细胞转染miR-7过表达载体(miR-7 mimic) 或干扰miR-7载体(miR-7 inhibitor)48 h后,阿霉素(100 ng/mL)处理24 h,MTT法测算细胞存活率;荧光定量PCR法测定miR-7和ABCC10 mRNA表达;蛋白免疫印迹法检测ABCC10蛋白表达。结果MCF-7/ADR细胞表达低水平的miR-7和高水平的ABCC10。MCF-7/ADR过表达miR-7,ABCC10 mRNA 和蛋白表达受抑制,细胞的阿霉素敏感性增加,细胞活性下降;MCF-7低表达miR-7,ABCC10 mRNA和蛋白表达增加,细胞的阿霉素敏感性降低,而细胞活性增加。结论调控miR-7表达能逆转乳腺癌细胞阿霉素耐药性,其机制可能是miR-7通过调节ABCC10表达实现。
关键词:乳腺癌;阿霉素;细胞活性;微小RNA-7;ABCC10蛋白
乳腺癌是威胁女性健康常见的恶性肿瘤[1]。尽管随着预防筛查及诊疗技术的发展,乳腺癌的病死率明显降低,但仍有部分乳腺癌患者发展为恶性肿瘤,其中主要原因是患者对初期化疗无效,产生耐药性[2],如阿霉素耐药。研究发现,microRNAs是哺乳动物体内普遍存在的一类非编码小分子RNA,可通过对功能蛋白的表达调控,在乳腺癌的各类生理病理过程中发挥重要作用[3~5]。miR-7是调控乳腺癌发病的重要微小RNA(miRNA)[6,7],可参与调控乳腺癌的治疗[8]。ABCC10 是新近发现的ABC 家族,介导癌症的多种药物敏感性。2014年1~12月,我们通过调控人乳腺癌MCF-7和MCF-7/ADR细胞系miR-7表达,探讨miR-7对乳腺癌细胞阿霉素敏感性的逆转作用及其可能机制。
1材料与方法
1.1材料人乳腺癌MCF-7细胞株购自中国科学院细胞库;RPMI1640培养基、胎牛血清(美国Gibco公司);阿霉素(美国Sigma公司);兔抗人ABCC10多克隆抗体、FITC标记的羊抗兔IgG(美国Santa Cruz Technology公司);β-Actin抗体(美国Abcam公司);胰蛋白酶、RPIR细胞裂解液(美国Invitrogen公司);miR-7和ABCC10引物(上海生物工程公司);SYBR Green 试剂盒(大连宝生物科技公司);PVDF膜(美国 Millipore 公司);MTT比色试剂盒(美国 Becton, Dickinson and Company);miR-7 mimic和miR-7 inhibitor(美国Thermo scientific 公司)。
1.2细胞培养和ADR耐药细胞系的建立MCF-7细胞培养于10% FBS的RPMI1640 完全培养基中,置于37 ℃、5%CO2孵箱中培养,以后每间隔3 d换液1次,待细胞增殖密度达90%左右时进行传代培养。0.25%的胰酶消化贴壁细胞,离心后加入新的培养基,37 ℃、5%CO2条件下进行传代培养。取对数生长期的MCF-7细胞,制成5×107细胞悬浮液,取10 mL悬浮液接种至培养瓶,培养24 h后,加入阿霉素至其终浓度为10 ng/mL,孵育48 h,弃去培养基。新鲜培养基再培养48 h。如此反复培养,逐步提高阿霉素的作用浓度,最终获得耐受500 ng/mL阿霉素的细胞系称为MCF-7/ADR,并维持培养在含10 ng/mL阿霉素的完全培养基。
1.3MCF-7及MCF-7/ADR细胞中miR-7表达检测采用荧光定量PCR法。将贴壁生长的MCF-7及MCF-7/ADR细胞用胰蛋白酶消化,加入培养基终止消化,离心弃上清,加裂解液反复吹打使细胞悬浮、裂解;氯仿-异戊醇法提取细胞裂解中的RNAs;分光光度法检测RNA样品的纯度和浓度,260 nm/280 nm吸光度比值1.8~2.0视为RNA纯度合格;根据反转录试剂盒说明,取2 μg的RNA样本,制备20 μL反转录体系,在反转录酶催化下,反转录成cDNA;取1 μL的cDNA样本,制备50 μL定量PCR反应体系,其中包含SYBR Green Ⅰ荧光和miR-7 和ABCC10 mRNA 的引物,经历94 ℃预变性1 min,95 ℃变性25 s,62 ℃退火30 s,72 ℃延伸20 s,共35个循环;循环结束之后72 ℃再延伸5 min。升温速率为0.4 ℃/次,恒温时间为30 s/次,制作熔解曲线,用于评价PCR扩增的特异性。miR-7的内参基因为U6,相对表达量的计算采用2-ΔΔCt法。
1.4MCF-7及MCF-7/ADR细胞中ABCC10 mRNA、蛋白表达检测采用蛋白免疫印迹法。取贴壁培养的MCF-7细胞,PBS清洗后,根据蛋白提取试剂盒说明书提取总蛋白;Bradford法对蛋白进行定量;等量40 μg蛋白样品加入2X蛋白上样缓冲液,100 ℃变性5 min;样品加入SDS-PAGE凝胶中进行电泳,60 V浓缩胶电压,110 V分离胶电压;电泳结束后进行PVDF转膜;转膜结束,清洗膜,封闭液常温封闭非特异性结合蛋白2 h;一抗4 ℃孵育过夜;二抗室温孵育2 h;根据超敏ECL化学发光试剂盒说明书,结合凝胶成像仪,检测ABCC10蛋白条带,以β-actin为内参,比较不同处理的细胞中ABCC10蛋白表达水平。
1.5miR-7 mimic 和miR-7 inhibitor转染取对数生长期的MCF-7及MCF-7/ADR细胞,以细胞密度为5×105/孔接种于6孔板,待细胞生长至密度为50%~60%时按照脂质体Lipofectamine 2000转染试剂说明书,将100 nmol/L的miR-7 mimic (miR-7 mimic组)或pre-NC(pre-NC组)转染至MCF-7/ADR;miR-7 inhibitor(miR-7 inhibitor组)或NC(NC组)转染至MCF-7,孵育 48 h收集细胞,参照1.3、1.4中方法检测miR-7、ABCC10蛋白表达。
1.6细胞活性检测 采用MTT法。取miR-7 mimic 或miR-7 inhibitor处理后的细胞悬浮液,加入5、10、20、40 ng/mL或0.5、1、2、4 ng/mL的阿霉素。细胞置于37 ℃、5%CO2条件下培养24 h。然后再培养液中加入二甲基亚砜,振荡溶解,置于自动酶标仪570 nm处测各孔吸光密度(OD)。
2结果
2.1MCF-7及MCF-7/ADR细胞中miR-7和ABCC10蛋白表达比较miR-7在乳腺癌细胞MCF-7、耐阿霉素乳腺癌细胞MCF-7/ADR中的相对表达量分别为1、0.28±0.04,ABCC10 mRNA在乳腺癌细胞MCF-7、耐阿霉素乳腺癌细胞MCF-7/ ADR中的相对表达量分别为1、2.90±0.26,与MCF-7相比,P均<0.01。
2.2miR-7过表达的MCF-7/ADR细胞中ABCC10 mRNA表达ABCC10 mRNA在miR-7过表达的MCF-7/ADR细胞中的相对表达量为0.36±0.04,与Pre-NC转染组对比,miR-7 mimic转染MCF-7/ADR细胞,过表达miR-7,抑制了ABCC10 mRNA和蛋白表达。
2.3miR-7抑制表达的MCF-7细胞中ABCC10 mRNA表达ABCC10 mRNA在抑制miR-7表达的MCF-7细胞中的相对表达量为2.70±0.21,与NC转染相比,miR-7 inhibitor转染MCF-7细胞抑制miR-7表达,引起ABCC10 mRNA和蛋白表达上调。
2.4MCF-7/ADR细胞过表达miR-7后细胞活性转染miR-7 mimic增加了MCF-7/ADR对阿霉素的敏感性,细胞活性显著下降。Pre-NC组5、10、20、40 ng/mL阿霉素干预MCF-7/ADR细胞后细胞活性分别为95.3±2.1、84.7±3.5、75.3±4.5、63.3±5.0,miR-7 mimic组5、10、20、40 ng/mL阿霉素干预MCF-7/ADR细胞后细胞活性分别为88.7±4.5、66.3±4.2、49.0±4.6、37.0±0.0,两组10、20、40 ng/mL阿霉素干预后细胞活性比较,P均<0.01。
2.5抑制miR-7表达对细胞活性的影响转染miR-7 inhibitor减弱了MCF-7/ADR对阿霉素的敏感性,细胞活性增加。NC组0.5、1、2、4 ng/mL阿霉素干预MCF-7/ADR细胞后细胞活性分别为89.0±4.0、63.3±2.1、48.7±5.5、27.7±2.5,miR-7 inhibitor组0.5、1、2、4 ng/mL阿霉素干预MCF-7/ADR细胞后细胞活性分别为92.3±3.1、80.3±3.1、69.7±4.2、55.7±5.0,两组1、2、4 ng/mL阿霉素干预后细胞活性比较,P均<0.01。
3讨论
目前化疗或辅助化疗仍是治疗乳腺癌的重要手段。部分患者由于对化疗的抵抗性导致癌症复发死亡。阿霉素是用于乳腺癌的主要化疗药物,其机制是通过抑制肿瘤细胞生长和促进细胞凋亡来控制肿瘤。如何控制乳腺癌细胞的阿霉素耐药性是目前亟待解决的问题。
miRNA是真核细胞中普遍存在的一类小分子RNA,长度约22 bp,主要参与功能基因转录后调控,通过与目标基因的mRNA结合,介导mRNA的降解或抑制mRNA翻译。研究发现,超过50%的miRNA基因位于癌相关的基因组区域,miRNA在肿瘤发生机制中扮演重要角色。肿瘤组织中miRNA表达处于低水平亦或高水平,调控致癌基因或抑癌基因的表达。miR-7 被认为是多种肿瘤的抑制分子,包括肾上腺皮质癌[9]、宫颈癌[10]和乳腺癌[11]等。近期,miR-7被认为可调控肺癌[12]等肿瘤的化疗敏感性,但其对乳腺癌的阿霉素敏感性的调控鲜有报道。ABCC10水平影响肿瘤的生长、迁移,同时亦是介导多种肿瘤化疗敏感性的功能蛋白[13]。因此,我们推测miR-7可能调控ABCC10表达,并参与乳腺癌细胞的阿霉素敏感性调节。
miRNA mimic 是一种化学合成的RNA寡核苷酸,可模拟内源miRNA,提高细胞内miRNA水平,增强miRNA的功能。另外,miRNA inhibitor 作为特异性靶miRNA的抑制剂,导致内源性miRNAs表达降低。因此,miRNA mimic 和miRNA inhibitor 常用来操纵miRNA表达,进行miRNA功能研究。在我们的实验中,MCF-7/ADR 细胞中miR-7表达下降,所以我们在MCF-7/ADR 中转染miRNA-7 mimic,在MCF-7细胞中转染miR-7 inhibitor, 结果显示,miR-7过表达抑制了MCF-7/ADR细胞的ABCC10 mRNA和ABCC10蛋白表达,表明miR-7可负向调控ABCC10表达。另外,miR-7过表达增加了MCF-7/ADR细胞的阿霉素敏感性,引起细胞活性降低;干扰miR-7增强了MCF-7细胞的阿霉素活性,导致细胞活性下降。由此可见,上调miR-7表达可增加MCF-7的阿霉素化疗敏感性,其可能机制是通过调控ABCC10表达实现。
参考文献:
[1] Froes Brandao D, Strasser-Weippl K, Goss PE. Prolactin and breast cancer: The need to avoid undertreatment of serious psychiatric illnesses in breast cancer patients: A review [J]. Cancer, 2016,122(2):184-188.
[2] De Mattos-Arruda L, Bottai G, Nuciforo PG, et al. MicroRNA-21 links epithelial-to-mesenchymal transition and inflammatory signals to confer resistance to neoadjuvant trastuzumab and chemotherapy in HER2-positive breast cancer patients[J]. Oncotarget, 2015,6(35):37269-37280.
[3] Wang J, Yang M, Li Y, et al. The Role of MicroRNAs in the Chemoresistance of Breast Cancer [J]. Drug Dev Res, 2015,76(7):368-374.
[4] LeBlanc VC, Morin P. Exploring miRNA-Associated Signatures with Diagnostic Relevance in Glioblastoma Multiforme and Breast Cancer Patients [J]. J Clin Med, 2015,4(8):1612-1630.
[5] Bertoli G, Cava C, Castiglioni I. MicroRNAs: new biomarkers for diagnosis, prognosis, therapy prediction and therapeutic tools for breast cancer [J]. Theranostics, 2015,5(10):1122.
[6] Lee KM, Choi EJ, Kim IA. microRNA-7 increases radiosensitivity of human cancer cells with activated EGFR-associated signaling [J]. Radiother Oncol, 2011,101(1):171-176.
[7] Li Q, Zhu F, Chen P. miR-7 and miR-218 epigenetically control tumor suppressor genes RASSF1A and Claudin-6 by targeting HoxB3 in breast cancer [J]. Biochem Biophys Res Commun, 2012,424(1):28-33.
[8] Huynh FC, Jones FE. MicroRNA-7 inhibits multiple oncogenic pathways to suppress HER2Δ16 mediated breast tumorigenesis and reverse trastuzumab resistance [J]. PLoS One, 2014,9(12):e114419.
[9] Glover AR, Zhao JT, Gill AJ, et al. microRNA-7 as a tumor suppressor and novel therapeutic for adrenocortical carcinoma [J]. Oncotarget, 2015,6(34):36675-36688.
[10] Hao Z, Yang J, Wang C, et al. MicroRNA-7 inhibits metastasis and invasion through targeting focal adhesion kinase in cervical cancer [J]. Int J Clin Exp Med, 2015,8(1):480-487.
[11] Shi Y, Luo X, Li P, et al. miR-7-5p suppresses cell proliferation and induces apoptosis of breast cancer cells mainly by targeting REGγ[J].Cancer Lett, 2015,358(1):27-36.
[12] Liu H, Huang J, Peng J, et al. Upregulation of the inwardly rectifying potassium channel Kir2. 1 (KCNJ2) modulates multidrug resistance of small-cell lung cancer under the regulation of miR-7 and the Ras/MAPK pathway[J]. Mol Cancer, 2015,14(1):59.
[13] Domanitskaya N, Wangari-Talbot J, Jacobs J, et al. Abcc10 status affects mammary tumour growth, metastasis, and docetaxel treatment response[J]. Br J Cancer, 2014,111(4):696-707.
Reverse offect of miR-7 on adriamycin resistance of breast cancer cells
LUXuan,CHENFei,WANGYing,LIRuiqing,GAOXiaokang,SUNHeqing
(TheFirstPeople'sHospialofYangzhou,Yangzhou225000,China)
Abstract:ObjectiveTo investigate the reverse effect of microR (miR)-7 on adriamycin resistance of breast cancer cells and its downstream molecule mechanism. MethodsHuman breast cancer MCF-7 cell line was exposed to gradually increasing density of adriamycin (ADR) that was used to establish ADR-resistant MCF-7/ADR cell line. MCF-7 or MCF-7/ADR cells were transfected with miR-7 mimic or miR-7 inhibitor for 48 h. Then cells were exposed to ADR (100 ng/mL) for 24 h. MTT assay was used to evaluate cell survival, fluorescent quantitative PCR was used to determine miR-7 and ABCC10 mRNA expression and immunoblotting was used to determine ABCC10 protein expression. ResultsMCF-7/ADR cell expressed lower level of miR-7 and high level of ABCC10. MiR-7 overexpression in MCF-7/ADR cell inhibited ABCC10 mRNA and protein expression and enhanced ADR resistance thereby leading to the reduction of cell viability. In the contrary, silencing miR-7 in MCF-7 promoted ABCC10 mRNA and protein expression and increased cell viability.ConclusionRegulating MiR-7 expression may reverse the ADR resistance of breast cancer cells and its mechanism may be that miR-7 reverses ADR resistance by regulating ABCC10 expression.
Key words:breast carcinoma; adriamycin; cell viability; microRNA-7; ABCC10 protein
(收稿日期:2015-12-24)
中图分类号:R737.9
文献标志码:A
文章编号:1002-266X(2016)13-0020-03
doi:10.3969/j.issn.1002-266X.2016.13.007
第一作者简介:路选(1980-),男,主治医师,主要研究方向为乳腺肿瘤的理论与临床研究。E-mail:xuanlulx@163.com