APP下载

雷公藤甲素对大鼠实验性结肠炎组织中IL-4、IL-13表达的影响

2015-03-07肖明明桑力轩

实用药物与临床 2015年11期
关键词:甲素雷公藤结肠炎

杨 立,肖明明,桑力轩,李 岩,邢 煜,王 岩,姚 远



雷公藤甲素对大鼠实验性结肠炎组织中IL-4、IL-13表达的影响

杨 立1*,肖明明1,桑力轩2,李 岩3,邢 煜1,王 岩1,姚 远1

目的 探讨雷公藤甲素对三硝基苯磺酸钠(TNBS)诱导的大鼠结肠炎的疗效,以及对炎性细胞因子IL-4、IL-13表达的影响。方法 成年SD大鼠18只,随机分为正常对照组(C组)、TNBS模型组(D1组)、雷公藤甲素组(TP组)。观察大鼠的一般情况,比较结肠组织炎症程度。HE染色观察大鼠结肠组织形态学变化。用反转录聚合酶链反应(RT-PCR)和Western blot(WB)法检测大鼠结肠组织IL-4和IL-13的表达水平。结果 PCR和WB法检测结果表明,C组结肠组织IL-4、IL-13的表达水平最高,D1组表达最低,TP组介于两者之间。结论 雷公藤甲素能有效治疗TNBS诱导的大鼠结肠炎,其作用机制可能与雷公藤甲素上调大鼠结肠黏膜抑炎因子IL-4、IL-13的表达,抑制炎症的发生发展有关。

实验性结肠炎;雷公藤甲素;IL-4;IL-13

0 引言

炎症性肠病(Inflammatory bowel disease,IBD)是一种慢性非特异性炎性肠病,包括克罗恩病(CD)和溃疡性结肠炎(UC)。以往的研究表明,其发病机制可能与遗传、感染、免疫异常等因素有关。其中免疫调节异常的作用日益引起人们的重视[1]。研究指出,IBD结肠黏膜聚集的淋巴细胞、巨噬细胞、中性粒细胞和浆细胞等炎性细胞,可通过不同免疫途径损伤结肠黏膜的上皮组织,进而导致疾病发生。雷公藤甲素(Triptolide,TP)是从卫矛科雷公藤属植物根部分离出的二萜类化合物,鉴于其抗炎、免疫抑制等多种活性,临床上多用于关节炎、肾炎、皮肌炎等炎症性疾病的治疗。但用于炎症性肠病治疗的文献报道很少。本文采用三硝基苯磺酸(TNBS)诱导建立实验性大鼠结肠炎模型,检测大鼠结肠组织白细胞介素(IL)-4、IL-13表达的变化,探讨雷公藤甲素对大鼠实验性结肠炎IL-4、IL-13的调节作用及在UC治疗中的作用。

1 材料与方法

1.1 主要试剂和设备 雷公藤甲素,中国药品生物检定所产品。其他主要试剂和设备参看文献[2-3]。

1.2 实验对象、造模及实验分组

1.2.1 实验大鼠 8周左右SD雄性大鼠18只,SPF级,购于辽宁长生生物技术有限公司。许可证号:SCXK(辽)2010-0001。体重(200±20)g。所有大鼠实验前适应环境1周。

1.2.2 急性实验性结肠炎动物模型的建立 建立TNBS结肠炎模型[4]。18只大鼠随机分为3组,每组6只。分别为正常对照组(C组)、TNBS模型组(D1组)、雷公藤甲素组(TP组)。

造模前大鼠禁食24 h以排空大便,乙醚麻醉后进行TNBS造模。将25 mg TNBS溶解于0.25 mL的50%乙醇后,用直径2 mm的无菌聚乙烯管插入大肠内约8 cm处灌肠,保持肛门高位30 s。待清醒后正常喂养。造模完成第2天开始灌胃治疗。TP组:雷公藤甲素100 μg/(kg·d)与生理盐水制成混悬液,腹腔注射。模型组给予0.9%生理盐水灌胃,C组用50%乙醇溶液灌肠后,等体积(0.25 mL)生理盐水灌胃。连续7 d。

1.2.3 标本采集及处理 实验期间每日观察并记录大鼠精神、活动、毛发、粪便、体重。实验大鼠第8天水合氯醛腹腔内注射麻醉后处死,观察各组大鼠大肠的大体改变。用预冷生理盐水将大肠洗净,于结肠末端距离肛门1 cm处剪取0.5 cm结肠,用0.4%多聚甲醛浸泡、石蜡包埋、切片、HE染色做病理学分析。其余标本于-70 ℃冰箱保存备用。

1.3 结肠组织大体和组织学评估 参照Hamamoto等标准[5]计算疾病活动指数(Disease activity index,DAI)评分。结肠组织切片常规HE染色,参照Dieleman等[6]的方法,在光学显微镜下依据炎症程度病变深度、隐窝破坏情况、病变范围、进行结肠炎病理学(组织学损伤)评分。

1.4 组织IL-4、IL-13的RT-PCR检测 结肠黏膜组织总RNA提取按天根公司试剂盒说明书进行。将RNA样本进行逆转录得到对应的cDNA,在PCR仪上进行扩增。用引物设计软件进行引物设计。所有序列引物由生工生物工程(上海)有限公司合成。IL-4上游引物CCTTGCTGTCACCCTGTTCTG,引物长度21 bp,退火温度60.4 ℃,产物长度181 bp;下游引物CTCGTTCTCCGTGGTGTTCCT,引物长度21 bp,退火温度61.4 ℃。IL-13上游引物长度20 bp,退火温度55.8 ℃,产物长度194 bp;下游引物GATATAAACTGGGCTACTTCG,引物长度21 bp,退火温度51.9 ℃。β-actin上游引物GGAGATTACTGCCCTGGCTCCTAGC,引物长度25 bp,退火温度60.1 ℃,产物长度155 bp;下游引物GGCCGGACTCATCGTACTCCTGCTT,引物长度25 bp,退火温度62 ℃。在PCR管中加入如下反应体系:cDNA模板1 μL,上下游引物各1 μL,2×Taq PCR Master-mix 10 μL,用ddH2O补足至20 μL。根据设计PCR反应程序进行扩增,共30次循环,然后4 ℃ 5 min终止反应。PCR产物片段经1.5%的琼脂糖凝胶电泳。电泳后利用凝胶成像系统对得到的凝胶进行拍照,分析目的条带的灰度值。

1.5 结肠组织IL-4、IL-13 Western blot免疫印迹检测 主要操作参照试剂盒蛋白提取说明书进行。提取结肠黏膜总蛋白,SDS-PAGE蛋白质电泳,采用半干式电转,然后进行Western杂交。一抗:IL-4、IL-13,1∶1 000;二抗:IgG-HRP,1∶5 000稀释。内参抗体Mouse antiβ-actin-HRP 1∶10 000稀释。GEL-PRO凝胶成像系统成像,分析目的条带的灰度值。

2 结果

2.1 一般情况及肠组织损伤大体形态 D1组大鼠在TNBS灌肠后第2天出现精神萎靡、体毛凌乱、活动减少,肛周可见稀便沾染甚至血便,体重逐渐减轻,TP组大鼠未见肉眼血便,体重逐渐增加,症状明显轻于D1组。C组大鼠未见明显异常。C组结肠大体正常,大肠腺体规则,可见大量胞质富含黏液的杯状细胞,黏膜固有层、黏膜下层未见炎性细胞浸润。D1组肠组织可见肠壁坏死、变薄,肠黏膜可见溃疡,炎症程度较重,可见肠黏膜和黏膜下组织大量中性粒细胞、淋巴细胞、浆细胞及嗜酸性粒细胞浸润,杯状细胞胞质黏液分泌减少,肠黏膜隐窝变形,隐窝脓肿形成,黏膜下组织充血、水肿,伴急性小血管炎症、出血和纤维素样坏死。与D1组相比,TP组可见不同程度的炎症消散,表现为炎性细胞浸润减少、隐窝变形恢复和杯状细胞胞质黏液增多,溃疡缩小修复。

2.2 结肠组织炎性因子IL-4、IL-13的RT-PCR检测 RT-PCR结果表明,与C组比较,D1组大鼠结肠组织IL-4、IL-13相对表达水平明显下调,相对表达量由低到高依次为D1组、TP组、C组(见图1、图2)。统计学结果显示,D1组与TP组IL-4、IL-13的表达与正常组比较差异有统计学意义(P<0.01,P<0.05)。TP组与D1组比较,差异有统计学意义(P<0.05);D1组IL-13的表达与C组比较差异有统计学意义(P<0.01),TP组与C组和D1组比较,差异均有统计学意义(P<0.05)。

图1 大鼠结肠组织IL-4、IL-13的表达(RT-PCR检测)

图2 大鼠结肠组织中IL-4、IL-13的光密度值比较(RT-PCR法)

2.3 WB法检测结肠组织炎性因子IL-4、IL-13的表达 采用Western blot法检测各组大鼠结肠组织IL-4的表达,以β-actin为内参。C组大鼠结肠组织IL-4处于较高水平表达(IL-4/β-actin:0.72±0.06);D1组大鼠结肠组织IL-4表达明显低于C组(IL-4/β-action:0.25±0.03,P<0.01);TP组(IL-4/β-action:0.45±0.04)IL-4表达低于C组,高于D1组(P<0.05)。和IL-4表达类似,大鼠结肠组织IL-13在C组中也处于较高水平表达(IL-13/β-actin:0.97±0.06);D1组IL-13表达明显低于C组(IL-13/β-actin:0.41±0.03,P<0.01);TP组IL-13表达较C组明显减少(IL-13/β-actin:0.71±0.06,P<0.05);TP组IL-13表达高于D1组,与D1组比较差异有统计学意义(P<0.05)。见图3、图4。

图3 大鼠结肠组织IL-4、IL-13的表达(WB法)

图4 大鼠结肠组织中IL-4和IL-13的光密度值比较(WB法)

3 讨论

UC是肠道炎性疾病,肠道局部炎性损伤是其重要的病理改变,以大量的炎性细胞浸润肠壁和持续活化为主要特征。尽管其发病机制尚未明了,但在遗传、免疫、感染、环境等多种致病因素中,免疫机制是一个重要方面。有文献报道,T辅助细胞亚群多种炎性因子表达异常参与了UC的病理损伤过程,在黏膜免疫屏障中起重要的作用[7-8]。其中1型T辅助细胞(Th1)分泌的致炎因子可以调节肠上皮细胞表面受体与功能,导致细胞损伤。2型T辅助细胞(Th2)分泌的抑炎因子可以抑制Th1细胞的增殖与功能,同时抑制肠道炎症的发生。既往的研究指出,在炎症性肠病动物模型和患者的肠黏膜免疫反应中,Th1细胞致炎因子表达明显偏高[9-10],而Th2细胞抑炎因子表达很少或不表达[11-13]。在上述这些炎性因子中,IL-4和IL-13在炎性细胞浸润及肠道炎症形成过程中起着重要作用。

IL-4由Th2细胞产生,是促进Th0细胞发育分化为Th2细胞的最主要因素,对淋巴细胞和巨噬细胞有免疫调节作用。研究发现,UC患者结肠黏膜IL-4表达明显降低;体外细胞培养实验亦发现,UC患者的IL-4分泌细胞数显著降低,且随着IL-4水平的降低,其抑制炎症反应的作用减弱,导致体内自身的免疫平衡遭到破坏,从而促使疾病发展[14-17]。

雷公藤甲素是雷公藤的主要有效成分之一,药理和临床试验表明,其具有免疫抑制、抗炎等生物活性。作为一种新型的免疫抑制剂,雷公藤甲素广泛用于多种疾病的治疗。研究表明,雷公藤甲素对小鼠淋巴细胞体外活化[18-19]和细胞免疫[20]均有抑制作用。对细胞因子IL-10缺陷小鼠腹腔注射雷公藤甲素,发现其能够降低术后肠内炎症发生,减轻术后肠粘结,显著降低了IFN-α的表达。Wu等[21]研究了雷公藤甲素免疫抑制作用的分子机制,认为雷公藤甲素可上调细胞中抑制蛋白的表达水平,导致胞内IB增多,而抑制NF-κB活性[22]。雷公藤甲素治疗TNBS诱导的小鼠结肠炎IL-17、RORC表达显著降低[23]。这是由于雷公藤甲素上调Foxp3,促进Treg细胞形成,抑制Th17细胞引起的过度炎症反应,进而减轻肠道炎症。Tam等[24]研究发现,雷公藤甲素和雷帕霉素联用可上调小鼠脾脏细胞中IL-4和IL-10的表达,下调IL-12和IFN-γ的表达,并能增加血清中IL-4的浓度。

本研究发现,D1组大鼠结肠组织中IL-4表达水平较C组显著降低;TP组IL-4的表达明显高于D1组。说明雷公藤甲素可上调抑炎细胞因子的分泌,提高IL-4表达活性。通过其明显的抗炎作用阻抑由T细胞、单核细胞等分泌的炎性分子,降低免疫细胞对炎症的反应性,从而有利于消除炎症、修复损伤。这一实验结果与其他中药制剂对UC小鼠肠组织IL-4表达影响的研究结果一致[25-26]。

IL-13是另一个与Th2细胞介导的肠黏膜炎症密切相关的细胞因子。作为Th2介导的UC中关键性的效应因子,IL-13与肠上皮细胞的紧密连接、细胞凋亡和修复密切相关[27]。Vainer等[28]研究发现,随着炎症细胞浸润程度的加强,IL-13的浓度逐渐降低,提示UC病变黏膜中IL-13的降低程度与其炎症程度呈平行关系。周宇等[29]亦发现,重度UC患者较轻度UC患者,活动期较之静止期,血浆IL-13浓度均明显降低。范震等[30]在中药复方溃结灵对UC模型大鼠血清IL-13表达影响的研究中指出,与对照组比较,TNBS模型组血清IL-13表达降低(P<0.01);与TNBS模型组组比较,溃结灵组血清IL-13表达增高(P<0.05)。张涛等[31]研究了清肠栓对UC大鼠血清IL-1与IL-13的影响后指出,TNBS模型组血清IL-13含量低于正常组。而治疗7 d后,随着症状的改善,对照组及治疗组血清IL-13水平均呈上升趋势,与TNBS模型组比较差异有统计学意义。这进一步说明IL-13是具有抗炎作用的细胞因子,与组织损害程度呈负相关。有报道,中重度UC患者结肠组织IL-4和IL-13 mRNA的表达减少[15-17]。中重度UC患者血清中IL-4和IL-13的表达与对照组比较,差异有统计学意义(P<0.05)。本实验结果显示,在大鼠结肠炎组织中,IL-13在C组表达最高,D1组最低,而TP组中的表达介于两者之间。IL-13与IL-4表达相似,可能是因为IL-13与IL-4共用Ⅱ型受体,与IL-4在结构和功能上的相似性,是因为二者在氨基酸水平有部分同源性的缘故。

综上所述,抑炎性因子IL-4和IL-13与大鼠实验性结肠炎的发病关系密切,雷公藤甲素可以增大这两种抑炎因子的表达,减轻和改善结肠炎症状。但表达调控的具体过程等尚有待进一步研究。

[1] Bengmark S.Gut microbiota,immune development and function[J].Pharmacol Res,2013,69(1):87-113.

[2] 杨立,李艳,任秋华,等.益生菌VSL#3对实验性结肠炎大鼠结肠黏膜IFN-γ、IL-12表达的影响[J].胃肠病学和肝病学杂志,2014,23(5):406-410.

[3] 杨立,李艳,任秋华,等.实验性结肠炎大鼠结肠黏膜中炎性因子对Th1/Th2平衡的影响及VSL#3的调节作用[J].胃肠病学和肝病学杂志,2014,23(5):529-534.

[4] Morris GP,Beck PL,Herridge MS,et al.Hapten-induced model ofchronic inflammation and ulceration in the rat colon[J].Gastroenterology,1989,96(3):795-803.

[5] Hamamoto N,Maemura K,Hiram I,et al.Inhibition of dextran sulphate sodium (DSS)-induced colitis in mice by intracolonically administered antibodies against adhesion molecules (endothelial leucocyte adhesion molecule-1 (ELAM-1) or intercellular adhesion molecule-1 (ICAM-1))[J].Clin Exp lmmun,1999,117(3):462-468.

[6] Dieleman LA,Palmen MJ,Akol H,et al.Chronic experimental colitis induced by dextran sulphate sodium(DSS)is characterized by Th1 and Th2 cytokines[J].Clin Exp Immunol,1998,114(3):385-391.

[7] Brown KA,Back SJ,Ruchelli ED,et al.Lamina propria and circulating interleukin-6 in newly diagnosed pediatric inflammatory bowel disease patient [J].Am J Gastroenterol,2002,97(10):2603-2608.

[8] Vainer B,Nielsen OH.Changed colonic profile of P-selectin,platelet- endothelial cell adhesion molecule-1(PECAM-1),intercellular adhesionmolecule-1(ICAM-1),ICAM-2,and ICAM-3 in inflammatory bowel disease[J].Clin Exp Immunol,2000,121(2):242-247.

[9] Larousserie F,Pflanz S,Coulomb-L′Herminé A,et al.Expression of IL-27 in human Th1-associated granulomatous diseases[J].J Pathol,2004,202(2):164-171.

[10]Maerten P,Shen C,Colpaert S,et al.Involvement of interleukin 18 in Crohn′s disease:evidence from in vitro analysis of human gut inflammatory cells and from experimental colitis models[J].Clin Exp Immnunol,2004,135(2):310-317.

[11]Melgar S,Yeung MM,Bas A,et al.Over-expression of interleukin 10 in mucosal T cells of patients with active ulcerative colitis[J].Clin Exp Immunol,2003,134(1):127-137.

[12]Li MC,He SH.IL-10 and its related cytokines for treatment of inflammatory bowel disease[J].World J Gastroenter,2004,10(5):620-625.

[13]Hart AL,Kamm MA,Knight SC.Quantitative and functional characteristics of intestinal-homing memory T cells:analysis of Crohn′s disease patients and healthy controls[J].Clin Exp Immunol,2004,135(1):137-145.

[14]赵晓军,王志红,韩英.白细胞介素4、干扰素γ、肿瘤坏死因子α在溃疡性结肠炎患者结肠黏膜中的表达及意义[J].中国误诊学杂志,2008,8:3029-3031.

[15]庞艳华,郑长青,王轶淳,等.IL-4和IL-13在溃疡性结肠炎中的表达[J].胃肠病学和肝病学杂志,2005,14:410-412.

[16]Rogy MA,Beinhauer BG,Reinisch W,et al.Transfer of interleukin-4 and interleukin-10 in patients with severe inflammatory bowel disease of the rectum[J].Hum Gene Ther,2000,11:1731-1741.

[17]梁雄均,马泽粦,曾雅静.白介素4和17在溃疡性结肠炎发生发展中的作用[J].右江医学,2005,33:6-8.

[18]Yang Y,Liu Z,Tolosa E,et al.Triptolide induces apoptoticdeath of T lymphocyte[J].Immunopharmacology,1998,40(2):139-149.

[19]俞瑜,曾耀英,刘良,等.雷公藤甲素对小鼠淋巴细胞体外活化的抑制作用[J].中药材,2005,28(6):499-502.

[20]曹敏,孙荣奇,吴达俊,等.中药雷公藤的研究进展[J].中成药,1996,18(4):40-42.

[21]Wu R,Li Y,Guo Z,et al.Triptolide ameliorates ileocolonicanastomosis inflammation in IL-10 deficient mice by mechanisminvolving suppression of miR-155/SHIP-1 signaling pathway[J].Molecular Immunology,2013,56:340-346.

[22]刘浩,刘志红,陈朝红,等.雷公藤内酯醇对T淋巴细胞核因子-κB及其抑制分子的影响[J].南京大学学报(自然科学版),2000,36(5):603-609.

[23]张静,付妤,邹开芳,等.雷公藤甲素对小鼠实验性结肠炎Th17 /Treg的调节作用[J].胃肠病学和肝病学杂志,2011,20(12):1118-1121.

[24]Liu Y,Chen Y,Liu F Q,et al.Combined treatment with triptolide and rapamycin prolongs graft survival in a mouse model of cardiac transplantation[J].Transplant International,2008,21(5):483-494.

[25]朱世敏,郝微微,唐志鹏,等.靛玉红对溃疡性结肠炎小鼠肠黏膜细胞因子含量的影响[J].中国中西医结合消化杂志,2011,19(6):370-372.

[26]李建华,蔡北源.加味连理汤对溃疡性结肠炎小鼠肠粘膜细胞因子的影响[J].新中医,2012,44(5):142-144.

[27]Heller F,Florian P,Bojarski C,et al.Interleukin-13 is the key effect or Th2 cytokine in ulcerative colitis that affects epithelial tight junctions apotheosis and cell restitution[J].Gastroenterology,2005,129(2):550-564.

[28]Vainer B,Nielsen OH,Hendel I,et al.Colinic expression and synthesis of interleukin 13 and interleukin 15 in inflammatory bowel disease[J].Cytokine,2000,12:1531-1536.

[29]周宇,叶文桃,麦海妍,等.白介素13和一氧化氮在溃疡性结肠炎的作用及意义[J].胃肠病学和肝病学杂志,2004,13(3):319-323.

[30]范震,王伟明,张云凌,等.溃结灵对溃疡性结肠炎大鼠血清胰高血糖素样肽-2(GLP-2)、白细胞介素-13(IL-13)的影响[J].黑龙江中医药,2014,(2):48-49.

[31]张涛.清肠栓对大鼠溃疡性结肠炎结肠黏膜固有层淋巴细胞凋亡及血清IL-1β与IL-13的影响[J].上海中医药大学学报,2006,20(2):37-40.

Effects of triptolide on the expression of intestinal mucosa IL-4 and IL-13 in experimental colitis rats

YANG Li1*,XIAO Ming-ming1,SANG Li-xuan2,LI Yan3,XING Yu1,WANG Yan1,YAO Yuan1

(1.Department of Gastroenterology,People′s Hospital of Liaoning Province,Shenyang 110016,China;2.Department of Geriatrics,The First Affiliated Hospital of China Medical University,Shenyang 110001,China;3.Department of Gastroenterology,Shengjing Hospital of China Medical University,Shenyang 110004,China)

Objective To evaluate the curative effect of triptolide on TNBS induced colitis and the expression of intestinal mucosa IL-4 and IL-13 in experimental colitis rats and to investigate the underlying mechanisms.Methods 18 adult Sprague-Dawley rats were randomized into three groups:normal control group (group C),model group (group D1),tripotlide treatment group (group TP).The general status of the rats was observed,and the histopathologic changes in the colon were examined.Reverse transcription-polymerase chain reaction (PCR) and Western blot (WB) techniques were used to detect the expression of IL-4 and IL-13.Results PCR and WB methods showed that the expression levels of IL-4 and IL-13 in group C were higher than those of group D1 and group TP(P<0.05),and the expression levels in group D1 were lover than those of group TP (P<0.05).Conclusion Triptolide could effectively improve the TNBS-induced colitis in rats by promoting the expression of IL-4 and IL-13 and inhibiting the development of inflammation.

Experimental colitis;Triptolide;Interleukin-4;Interleukin-13

2015-07-15

1.辽宁省人民医院消化内一科,沈阳 110016;2.中国医科大学附属第一医院老年消化科,沈阳 110001;3.中国医科大学附属盛京医院消化科,沈阳 110004

辽宁省自然科学基金课题(201102106)

10.14053/j.cnki.ppcr.201511004

*通信作者

猜你喜欢

甲素雷公藤结肠炎
Effectiveness and safety of tripterygium glycosides tablet (雷公藤多苷片) for lupus nephritis: a systematic review and Meta-analysis
“结肠炎”背后的亲子关系问题
雷公藤多苷片联合甲氨蝶呤治疗类风湿性关节炎的疗效
灯盏甲素在大鼠脑缺血再灌注损伤模型的PK-PD结合模型研究
关于召开“第六届全国雷公藤学术会议”的征文通知
分析汉防己甲素治疗尘肺的疗效及对免疫功能的影响
雷公藤红素通过ROS/JNK途径诱导Saos-2细胞发生caspase依赖的凋亡
连续4周口服雷公藤甲素对大鼠血红素加氧酶的影响
中西医结合治疗溃疡性结肠炎40例
辨证论治慢性腹泻型结肠炎45例