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干燥方式对香菇酚类物质抗氧化活性的影响

2015-02-16王丽威金佳慧崔国强郭笑妍

食品工业科技 2015年9期
关键词:冷冻干燥酚类热风

王丽威,金佳慧,于 锦,崔国强,郭笑妍

(辽宁工程技术大学理学院,辽宁阜新 123000)



干燥方式对香菇酚类物质抗氧化活性的影响

王丽威,金佳慧,于 锦,崔国强,郭笑妍

(辽宁工程技术大学理学院,辽宁阜新 123000)

食用菌,香菇,酚类,自由基清除,干燥方式

香菇(Lentinusedodes(Berk.)sing.),在分类学上属于担子菌纲、伞菌目、口蘑科、香菇属,又名香蕈、香菌、花菇等,是世界第二大食用菌。商品香菇主要有鲜品和干品两种形式。鲜香菇质地细嫩,贮运期间极其容易发生菇体萎缩、菌盖破裂和菌褶褐变的现象,严重影响了产品的营养、风味和商品价值。干品香菇水分含量少,呼吸作用和微生物生长活动受到抑制,不易腐烂变质,便于运输和贮藏。目前,香菇干燥的方式主要有自然晒干、热风干燥、真空干燥和真空冷冻干燥等。研究香菇干燥方法,最大限度地保存香菇的营养成分和功能活性,提高香菇的食用价值和商品价值,有利于香菇产业的健康发展。Giri等人[1]研究了真空干燥和热风干燥对香菇组织结构的影响。徐晓飞等[2]研究发现,热风干燥、微波干燥、真空干燥、冷冻干燥和远红外干燥对香菇营养成分和物理性质具有显著的影响。

研究发现,植物多酚具有抗肿瘤、抗氧化、抗菌消炎等多种生理活性作用[3],已成为生物活性物质的研究热点。目前,对酚类物质抗氧化活性的研究很多,尤其是水果中酚类物质抗氧化能力的研究,但对食用菌酚类物质抗氧化能力的研究较少。据研究报道,食用菌中酚类物质主要有咖啡酸、阿魏酸、香豆酸、尿黑酸、槲皮素等[4-10]。这些成分为食用菌抗氧化活性的发挥提供了物质基础。李利华[11]采用75%乙醇提取剂对香菇的不同部位进行了提取,并对提取物的抗氧化活性进行了比较研究,结果表明,不同部位醇提物都具有较强的抗氧化性。并通过化学鉴定法证明了香菇不同部位醇提物中含有酚类及鞣质、多糖类、黄酮类化合物、植物甾醇等活性成分。但有关干燥方式对食用菌酚类物质抗氧化活性的研究还未见报道。而干燥方式对其它植物酚类物质含量及抗氧化活性的影响显著,且对不同来源的酚类物质的影响不同[12-13]。实验研究以新鲜香菇为原料,采用不同干燥方法对香菇进行干燥处理,提取酚类物质并进行纯化,测定不同干燥方法香菇酚类物质的抗氧化活性,为深入挖掘香菇营养保健价值、促进香菇深加工产业的发展提供理论基础。

1 材料与方法

1.1 材料与仪器

市售新鲜香菇,去除表面杂质,切成4~5mm左右的碎块,分别进行日晒干燥、真空干燥(50℃,48h)、冷冻干燥(24h)和热风干燥(50℃,24h)处理,将干燥后的香菇粉碎,过60目筛,密封,4℃保存,备用。

1,1-二苯基-2-三硝基苯肼(DPPH)、Folin-Ciocalteu 试剂、没食子酸 购自Sigma 公司;乙醇、碳酸钠、盐酸、VC、双氧水、邻苯三酚、硫酸亚铁、水杨酸等 均为国产分析纯。

UV1810PC紫外可见分光光度计 上海欣茂仪器有限公司;RE-52A型旋转蒸发仪 上海亚荣生化仪器厂;SCIENTZ-12N型冷冻干燥机 宁波新芝生物科技股份有限公司。RE-201C数显恒温水浴锅 巩义市予华仪器有限公司;QZX-9140电热恒温鼓风干燥箱、DZF-6050真空干燥箱 上海博迅实业有限公司医疗设备厂。

1.2 实验方法

1.2.1 香菇酚类物质的制备

1.2.1.1 香菇酚类物质提取 称取香菇干粉5.00g置于250mL三角瓶中,加入100mL 70%乙醇,置于50℃水浴中提取1.5h,6000r/min离心15min,取上清,沉淀用70%乙醇水溶液洗涤2次,合并三次离心得到的上清,得酚类物质提取液。定容后测定酚类物质的含量。

1.2.1.2 香菇酚类物质纯化 按文献[14]采用AB-8大孔树脂对酚类物质进行纯化。将预处理好的AB-8大孔树脂装入玻璃层析柱中(1.0cm×60cm)中,将香菇酚类提取液以2mL/min的流速上样,用60%(v/v)乙醇水溶液洗脱,流速1mL/min,收集洗脱液。

1.2.1.3 香菇酚类物质浓缩和干燥 纯化后得到的酚类物质洗脱液于50℃下旋转蒸发浓缩,得到酚类物质浓缩液。浓缩液经真空冷冻干燥,得酚类物质精制样品。

1.2.2 香菇酚类物质含量测定 采用Folin-Ciocalteu比色法[15]:以没食子酸为标准品,得到标准曲线回归方程为:y=0.054x-0.0185(R2=0.9965)。根据标准曲线和公式(1)计算出香菇酚类物质含量,其结果表示为没食子酸的当量毫克数(gallic acid equivalent,GAE),即mg GAE。

式(1)

式中,C为香菇干粉中酚类物质含量(mg·g-1),c为标准曲线计算得到的酚类物质含量(μg·mL-1),V为提取液定容后的总体积(mL),D为测定时提取液稀释的倍数,m为香菇干粉质量(g)。

1.2.3 抗氧化能力测定

式(2)

式中:V0为邻苯三酚的自氧化速率;V为加入样品后邻苯三酚的氧化速率。

1.2.3.2 清除羟基自由基(·OH)能力测定 Fronton反应法[17]:取6mmol·L-1的FeSO41mL、6mmol·L-1的水杨酸2mL于6只比色管中,分别加入0、0.5、1.0、2.0、5.0、10.0mg·mL-1香菇酚类物质溶液各2mL,混匀后加入6mmol·L-1H2O21mL,摇匀后37℃水浴保温60min,在510nm下测定其吸光度,记为A1;用70%乙醇代替香菇酚类样品,测定吸光度,记为A0;用70%乙醇代替样品组中的H2O2,用70%乙醇溶液作参比,测定吸光度,记为A2,根据公式(3)计算·OH清除率。以同样的方法测定VC的·OH清除能力,作为对照。

·OH清除率(%)=[1-(A1-A2)/A0]×100

式(3)

1.2.3.3 清除DPPH自由基能力测定 此法是根据DPPH自由基有单电子,在517nm处有一强吸收,其醇溶液呈紫色的特性[18]。取0.2mmol·L-1DPPH乙醇溶液2mL和70%乙醇溶液2mL于比色管中,分别加入0、0.5、1.0、2.0、5.0、10.0mg·mL-1香菇酚类物质溶液各1mL,混匀,室温避光反应30min,以乙醇溶剂作参比于517nm下测定吸光度,记为A1;为消除样品本身的颜色影响,将上述样品组中的DPPH用70%乙醇溶液代替,测定吸光度,记为A2;将样品组中的1mL香菇酚类样品用70%乙醇溶液代替,测定吸光度,记为A0。根据公式(4)计算每种提取液对DPPH自由基的清除率。同时,测定相同质量浓度梯度的VC水溶液的清除率,作为阳性对照。

表1 不同干燥方式下香菇酚类物质含量Table1 Phenolic compounds content in Lentinus edodes(Berk.)sing. processed by different drying method

注:以干基计,标有不同字母表示数据差异显著p<0.05。

DPPH·清除率(%)=[1-(A1-A2)/A0]×100

式(4)

1.2.4 数据处理 每个处理重复3次,取平均值,采用Excel进行数据统计分析。多重比较采用SSR法。

2 结果与讨论

2.1 干燥方式对香菇酚类物质含量的影响

经测定,不同干燥方式下香菇酚类物质含量如表1,由表1可以看出,干燥方式对香菇酚类物质的含量影响显著(p<0.05)。冷冻干燥的香菇酚类物质含量最高,其次为热风干燥和真空干燥,晒干香菇酚类物质含量最低。这可能是由于不同干燥方式对香菇组织结构、多酚氧化酶的活性造成影响,从而影响酚类物质的溶出和酚类物质的含量。

2.2 干燥方式对香菇酚类物质抗氧化活性的影响

图1 样品清除超氧阴离子自由基能力Fig.1 Superoxide anion radicals scavenging capacity of test sample

2.2.2 干燥方式对香菇酚类物质清除羟基自由基(·OH)能力的影响 由图2可知,不同干燥方法对香菇酚类清除羟基自由基能力具有显著影响(p<0.05)。在0~5.0mg·mL-1浓度范围内,不同干燥方式下香菇酚类物质对羟基自由基的清除能力随着浓度的增加而增大。经计算,VC和不同干燥方法得到的香菇酚类物质清除羟基自由基的EC50分别为:0.05mg·mL-1(VC)、0.35mg·mL-1(冷冻干燥)、1.17mg·mL-1(热风干燥)、3.99mg·mL-1(真空干燥)、10.8mg·mL-1(晒干)。说明四种干燥方法处理的香菇酚类物质对羟基自由基的清除能力大小为:冷冻干燥>热风干燥>真空干燥>晒干。但与VC相比,各种干燥方法的香菇酚类物质对羟基自由基的清除能力都比VC弱。

图2 样品清除羟基自由基能力Fig.2 Hydroxyl radicals scavenging capacity of test sample

2.2.3 干燥方式对香菇酚类物质清除DPPH自由基能力的影响 由图3可知,不同干燥方法对香菇酚类清除DPPH自由基能力具有显著影响(p<0.05)。在0~10.0mg·mL-1浓度范围内,不同干燥方式下香菇酚类物质对DPPH自由基的清除能力随着浓度的增加而增大。经计算,VC和不同干燥方法得到的香菇酚类物质清除DPPH自由基的EC50分别为:0.03μg·mL-1(VC)、2.89mg·mL-1(冷冻干燥)、3.61mg·mL-1(热风干燥)、4.51mg·mL-1(真空干燥)、5.35mg·mL-1(晒干)。说明四种干燥方法处理的香菇酚类物质对DPPH自由基的清除能力大小为:冷冻干燥>热风干燥>真空干燥>晒干。但与VC相比,均弱于VC。

图3 样品清除DPPH自由基能力Fig.3 DPPH radicals scavenging capacity of test sample

3 结论

3.1 干燥方式对香菇酚类物质的含量影响显著(p<0.05)。冷冻干燥的香菇酚类物质含量最高,达(32.35±0.24)mg GAE/g;其次为热风干燥和真空干燥,晒干香菇酚类物质含量最低。

3.2 不同干燥方式下香菇酚类物质抗氧化能力差异显著。香菇酚类物质对超氧阴离子自由基、羟基自由基和DPPH自由基清除能力具有一定的清除能力。在0~10.00mg·mL-1范围内,其清除能力随浓度的增加而增强。根据计算得出的EC50数值可知,对三种自由基的清除能力由大到小依次为冷冻干燥>热风干燥>真空干燥>晒干。说明四种干燥方式中真空冷冻干燥后的香菇酚类物质含量较高,对多酚抗氧化活性破坏最小。因此,真空冷冻干燥为保持香菇较高抗氧化活性的方式。

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Effect of drying method on antioxidant activity of phenolic compounds fromLentinusedodes(Berk.)sing.

WANG Li-wei,JIN Jia-hui,YU Jin,CUI Guo-qiang,GUO Xiao-yan

(College of Science Liaoning Technology University,Fuxin 123000,China)

The contents of phenolic compounds fromLentinusedodes(Berk.)sing.under four drying methods were determined by Folin-Ciocalteu method. The superoxide anion radicals,hydroxyl radicals and DPPH radicals scavenging capacities of phenolic compounds fromLentinusedodes(Berk.)sing.were determined and compared. It was found that drying method had significant effect on the content of phenolic compounds fromLentinusedodes(Berk.)sing.(p<0.05). The contents of phenolic compounds inLentinusedodes(Berk.)sing. dried by freeze drying,hot-air drying,vacuum drying and air drying were 32.35±0.24,23.21±0.12,22.80±0.25,(14.72±0.11)mg GAE/g,respectively. Phenolic compounds ofLentinusedodes(Berk.)sing. had certain scavenging capacity for superoxide anion radicals,hydroxyl radicals and DPPH radicals. In 0~10.00mg/mL concentration range,scavenging capacity was correlated with concentration. Antioxidant activities of phenolic compounds fromLentinusedodes(Berk.)sing. processed by different drying method were significantly different. The three radicals scavenging capacities of total phenolic compounds followed the decreasing order:freeze drying,hot-air drying,vacuum drying and air drying.

edible mushroom;Lentinusedodes(Berk.)sing.;phenolic compounds;free radicals scavenging capacity;drying method

2014-06-30

王丽威(1977-),女,在读博士,副教授,研究方向:食品生物技术。

TS201.2

A

:1002-0306(2015)09-0132-04

10.13386/j.issn1002-0306.2015.09.020

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