APP下载

二硫苏糖醇提取纯化Cavl.2钙通道片段CT3蛋白

2015-02-07孙宇封瑞杨磊毛楠胡慧媛孙雪菲郝丽英

中国医科大学学报 2015年7期
关键词:钙通道高浓度蛋白酶

孙宇,封瑞,杨磊,毛楠,胡慧媛,孙雪菲,郝丽英

(1.中国医科大学药学院药物毒理学教研室,沈阳 110122;2.天津出入境检验检疫局工业品中心,天津 300300)

·论著·

二硫苏糖醇提取纯化Cavl.2钙通道片段CT3蛋白

孙宇1,封瑞1,杨磊2,毛楠1,胡慧媛1,孙雪菲1,郝丽英1

(1.中国医科大学药学院药物毒理学教研室,沈阳 110122;2.天津出入境检验检疫局工业品中心,天津 300300)

目的探讨二硫苏糖醇(DTT)有助于PreScission蛋白酶切除重组蛋白GST-CT3标签GST的方法。方法在大肠埃希菌BL21中转化入pGEX-6P-3/CT3重组质粒并诱导其表达,用B-PER提取纯化重组蛋白GST-CT3,在10 mmol/L DTT存在的情况下PreScission蛋白酶切除GST标签得到高浓度的CT3蛋白,进行SDS-PAGE电泳鉴定CT3蛋白。结果不含DTT情况下,PreScission蛋白酶很难切除重组蛋白GST-CT3的标签蛋白GST,而在10 mmol/L DTT存在的情况下,PreScission蛋白酶能够切除重组蛋白GST-CT3的标签蛋白GST,得到高浓度的CT3蛋白。结论10 mmol/L DTT有助于PreScission蛋白酶切除重组蛋白GST-CT3的标签蛋白GST,得到高浓度的CT3蛋白。

重组蛋白;心肌细胞;钙通道

L型钙离子通道是存在于心肌细胞上的主要钙通道。L型钙通道电流参与心肌动作电位平台期的形成与维持,钙离子(Ca2+)通过L型钙通道进入心肌细胞,从而触发钙,诱发钙释放引起兴奋收缩耦联,此过程对于心脏正常功能的发挥具有重要作用[1,2]。除此之外,L型钙离子通道还可参与可兴奋细胞神经递质的分泌、释放和自我调控转录[3,4]。心肌L型钙离子通道即Cav1.2钙通道的正常表达是心脏收缩的必要前提,Cav1.2钙通道的缺乏导致血管肌源性收缩无法正常进行,并且还可干扰激素对血压的正常调节[5]。目前研究表明心肌Cav1.2钙通道的表达与功能异常与多种疾病密切相关,例如已知的与Cav1.2钙通道相关的疾病,包括Timothy综合征、Brugada综合征、房颤、心律失常、心力衰竭等[6,7]。

心肌Cav1.2钙通道可直接或间接受磷酸化和氧化还原作用所调节[8,9],也可被细胞内激素、蛋白激酶、磷酸化蛋白酶、钙调蛋白(calmodulin,CaM)、钙调蛋白激酶Ⅱ(Ca2+/calmodulin-dependent kinaseⅡ,CaMKⅡ)等[8,10,11]多种细胞因子所调节,从而引起通道活性的变化,进而影响通道的功能改变。心肌Cav1.2钙通道具有较长的C末端片段,此部位是通道功能调节的重要部位,在或战或逃反应中发挥重要作用。而CT3(a.a.1942-2169)是位于Cav1.2钙通道C末端远端的片段远端羧基末端(distal carboxy terminus,DCT)的一段片段,DCT在或战或逃反应中作用关键,对Cav1.2通道的调节发挥着重要作用。有研究报道称DCT能够抑制通道活性[12~14],然而,详细的调节机制尚不完全清楚。因此,获得DCT上的钙通道片段CT3蛋白对于钙通道相关调节机制的研究具有重要的意义。目前,实验室提取钙通道片段CT3蛋白是通过GST标签再经大肠埃希菌诱导大量表达而形成重组蛋白GST-CT3。然而与其他GST标签的蛋白相互作用时,往往需要用酶切掉标签GST而得到纯化的CT3蛋白。由于GST-CT3蛋白的特性,常规实验条件下酶无法切掉GST-CT3蛋白的标签GST。针对这一难题,本研究采用高浓度的还原剂二硫苏糖醇(dithiothreitol,DTT)探寻酶切除GST-CT3蛋白的标签GST得到纯化的CT3蛋白的方法,为Cav1.2通道调节机制的相关研究奠定基础。

1 材料与方法

1.1 材料

原核表达载体pGEX-6P-3和BL21菌种,购自美国Amersham Pharmacia Biotech公司;DTT、异丙基硫代半乳糖苷、氨苄西林、溶菌酶,购自日本Wako公司。丝氨酸蛋白酶、GST融合蛋白纯化凝胶(Glutathione-4B beads)、DNA酶(Turbo nuclease),购自英国GE Healthcare公司。

1.2 方法

1.2.1 重组质粒pGEX-6P-3/CT3的诱导及表达:将重组质粒pGEX-6P-3/CT3化入BL21细菌中,在于含有0.1 mg/mL氨苄西林的LB培养液中培养,37℃水浴、100 r/min震荡过夜。将菌液用LB培养液稀释至OD 0.6~0.8范围内[15],加入终浓度为1 mmol/L的异丙基硫代半乳糖苷,37℃水浴、100 r/min震荡5 h,诱导表达重组蛋白GST-CT3。

1.2.2 DTT提取和纯化无标签的CT3蛋白:将菌液按照6 000 r/min离心15 min,弃掉上清收集沉淀。将沉淀重悬,每克沉淀加入4 mL B-PER[16,17]、0.2 mg/mL溶菌酶、1 μL DNA酶(Turbo nuclease)和蛋白酶抑制剂,室温震荡30 min以促进细菌破膜、DNA溶解及GST-CT3蛋白的释放。16 000 r/min离心20 min,取上清置于2个15 mL EP管中,分别与PBS buffer洗过的300 μL GS-4B beeds在4℃孵育摇晃过夜。800 r/min离心弃上清,beeds分别用5 mL PBS buffer和Tris buffer各洗2次,留取少量的beeds(为GST-CT3蛋白)记为P1,取其中一管加990 μL Tris buffer和10 μL PreScission蛋白酶,标记为Control;另一管加990 μL Tris buffer、10 μL PreScission蛋白酶和终浓度为10 mmol/L DTT标记为DTT,分别4℃孵育摇晃6 h。

1.2.3 DTT提取和纯化后CT3蛋白的鉴定:将上述PreScission蛋白酶酶切后的2管蛋白分别离心留取上清10 μL记为S,分别留取少许沉淀beeds记为P2,各留取的样品经1×loading缓冲液室温处理20 min后,80℃加热5 min,进行12.5%聚丙烯酰胺凝胶电泳,根据Marker位置检测CT3蛋白。

2 结果

2.1 单纯酶切方法无法提取和纯化CT3蛋白

将单纯PreScission蛋白酶酶切之前的GST-CT3蛋白,即P1、PreScission蛋白酶酶切之后的上清,即S、和沉淀,即P2,分别进行12.5%聚丙烯酰胺凝胶电泳,经考马斯亮蓝染色。如图1所示,经单纯Pre-Scission蛋白酶酶切之后,上清无任何蛋白的存在,而沉淀蛋白仍以GST-CT3蛋白形式存在。该结果证实了GST-CT3蛋白的标签GST无法被PreScission蛋白酶酶切掉。

图1 单纯酶切法无法提取出CT3蛋白Fig.1 CT3 protein could not be obtained by using enzyme alone

2.2 DTT能够提取纯化出高浓度的CT3蛋白

将PreScission蛋白酶酶切之前的GST-CT3蛋白,即P1、在10 mmol/L DTT存在的情况下经PreScission蛋白酶酶切之后的上清,即S、和沉淀,即P2,分别进行12.5%SDS-PAGE电泳,经考马斯亮蓝染色。如图2所示,在10 mmol/L DTT存在的情况下经PreScission蛋白酶酶切之后,上清存在较多的CT3蛋白,而沉淀则为较多的GST蛋白和极少量的CT3蛋白,几乎不存在GST-CT3蛋白。以上结果说明10 mmol/L DTT能够有助于PreScission蛋白酶酶切GST -CT3蛋白的标签GST,且酶切效率较高。

图2 高浓度DTT能够提取出高纯度、高浓度CT3Fig.2 The CT3 protein could be obtained with high concentration of DTT

3 讨论

越来越多的研究表明,Cav1.2钙通道的DCT在通道功能调节过程中起到重要作用。有研究报道,A激酶锚定蛋白能够通过一修饰的亮氨酸拉链结合于DCT,而参与β-肾上腺素对心肌细胞Cav1.2通道的调节,从而抑制通道的活性[13]。亦有研究报道称,DCT能够与Cav1.2通道C末端近端上的CB/IQ区域直接结合从而掩盖了CaM蛋白与通道的结合位点,抑制了CaM蛋白与通道的结合因此抑制通道的活性[14]。可见,DCT在Cav1.2通道的功能调节中具有关键的作用,因此获得DCT上的钙通道片段CT3蛋白对于钙通道的研究具有重要的意义。大肠埃希菌由于其操作简单、成本低、生长快、产量高等特性常常用于重组蛋白的表达。GST标签的CT3蛋白(GST-CT3)在经大肠埃希菌诱导及表达是实验室提取纯化重组蛋白的常用方法,但由于重组蛋白结构的差异,GST-CT3蛋白的标签GST很难被PreScission蛋白酶所切掉,然而由于实验的需求,常常需要不含标签GST的单纯CT3蛋白。目前针对这一难题,有研究者提出在PreScission蛋白酶酶切过程中加入高盐、甘油等方法有助于酶切,但是效果均不理想,因此需要单纯CT3蛋白的相关实验无法开展。DTT被报道有助于重组人神经营养因子3、重组牛乳铁蛋白等多种重组蛋白的提取[18,19],而是否能够有助于GST-CT3重组蛋白的提取目前尚无研究报道,因此本研究在重组蛋白GST-CT3应用高浓度DTT,探讨其是否能够有助于提取纯化单纯CT3蛋白。

本研究在PreScission蛋白酶酶切过程中加入高浓度DTT(10 mmol/L)。实验结果显示,与不加DTT相比,10 mmol/L DTT能够有助于PreScission蛋白酶酶切掉GST-CT3蛋白的标签GST,酶切效率很高,几乎不存在未经酶切的GST-CT3蛋白,并且提取纯化出的单纯CT3蛋白的纯度和产量均相对较高。GSTCT3重组蛋白结构的差异使其不易被PreScission蛋白酶切除标签GST,其原因可能由于在GST-CT3重组蛋白提取纯化的过程中,长期暴露于空气之中,使其被空气中的氧气氧化而引起蛋白结构的改变,掩盖或改变了PreScission蛋白酶在蛋白上的作用部位,因此PreScission蛋白酶无法发挥其正常功能。而DTT是一种可渗透过细胞膜的小分子还原剂,常常用于蛋白的提取,最近有研究报道称DTT作为还原试剂可以调控不同组织中Ca2+、Na+、KATP通道。而本实验中加入了高浓度的DTT,可以还原被空气氧化的GST-CT3重组蛋白,使其结构趋于正常,暴露出PreScission蛋白酶的作用部位。因此可以获得高浓度的单纯CT3蛋白。

综上所述,高浓度DTT方法能够提取纯化高产量、高纯度的Cav1.2钙通道片段CT3蛋白,可以广泛应用于实验研究中,为Cav1.2通道的研究奠定了基础。然而本实验仍存在不足,由于DTT(10 mmol/L)浓度较高,提取出的CT3蛋白含有较高含量的DTT,可能会对后续研究产生一定的影响,在有条件的情况下最好使用小分子渗透膜将小分子的DTT滤除,然后得到更为纯净的不含DTT的单纯CT3蛋白。

[1]Bodi I,Mikala G,Koch SE,et al.The L-type calcium channel in the heart:the beat goes on[J].J Clin Invest,2005,115(12):3306-3317.

[2]Oz S,Benmocha A,Sasson Y,et al.Competitive and non-competitive regulation of calcium-dependent inactivation in Cav1.2 L-typeCa2+channels by calcium and Ca2+-binding protein 1[J].J Biol Chem,2013,288(18):12680-12691.

[3]Jiang C,Poole-Wilson PA,Sarrel PM,et al.Effect of 17 beta-oestradiol on contraction,Ca2+current and intracellular free Ca2+in guineapig isolated cardiac myocytes[J].Br J Pharmacol,1992,106(3):739-745.

[4]Jarkko J,Ronkainen,Sandra L,et al.Ca2+-calmodulin-dependent protein kinaseⅡrepresses cardiac transcription of the L-type calcium channel α1C-subunit gene(Cacna1c)by DREAM translocation[J].J Physiol,2011,589(Pt 11):2669-2686.

[5]Monosmang S,Schulla V,Welling A,et al.Dominant role of smooth muscle L-type calcium channel Cav1.2 for blood pressure regulation[J].EMBO J,2003,22(22):6027-6034.

[6]Schenkel PC,Tavares AM,Fernandes RO,et al.Time course of hydrogen peroxide-thioredoxin balance and its influence on the intracellular signaling in myocardial infarction[J].Exp Physiol,2012,97(6):741-749.

[7]Burgoyne JR,Mongue-Din H,Eaton P,et al.Redox signaling in cardiac physiology and pathology[J].Cirs Res,2012,111(8):1091-1106.

[8]Wang WY,Hao LY,Minobe E,et al.CaMKⅡphosphorylates a threonine residue in the C-terminal tail of Cav1.2 Ca2+channel and modulates the interaction of the channel with calmodulin[J].J Physiol Sci,2009,59(4):283-290.

[9]Yang L,Xu J,Minobe E,et al.Mechanisms underlying the modulation of L-type Ca2+channel by hydrogen peroxide in guinea pig ventricular myocytes[J].J Physiol Sci,2013,63(6):419-426.

[10]Catterall WA.Structure and regulation of voltage-gated Ca2+channels[J].Annu Rev Cell Dev Biol,2000,16:521-555.

[11]Asmara H,Minobe E,Saud ZA,et al.Interactions of calmodulin with the multiple binding sites of Cav1.2 Ca2+channel[J].J Pharmacol Sci,2010,112(4):397-404.

[12]Fuller MD,Fu Y,Scheuer T,et al.Differential regulation of Cav1.2 channels by cAMP-dependent protein kinase bound to A-kinase anchoring proteins 15 and 79/150[J].J Gen Physiol,2014,143(3):315-324.

[13]Fu Y,Westenbroek RE,Yu FH,et al.Deletion of the distal C terminus of Cav1.2 channels leads to loss of β-adrenergic regulation and heart failure in vivo[J].J Biol Chem,2011,286(14):12617-12626.

[14]Crump SM,Andres DA,Sievert G,et al.The cardiac L-type calcium channel distal carboxy terminus autoinhibition is regulated by calcium[J].Am J Physiol Heart Circ Physiol,2012,304(3):H455-H464.

[15]何桂林,邵冬雪,印丹丹,等.体外重组Cav1.2不同蛋白片段纯化及其与CaM相互作用的研究[J].中国医科大学学报,2013,42(9):773-776.

[16]封瑞,胡慧媛,郭凤,等.Cav1.2钙通道片段CT1融合蛋白的制备及生物活性鉴定[J].中国医科大学学报,2013,42(11):970-973.

[17]孙宇,封瑞,孙威,等.变性再复性方法提取高纯度Cav1.2片段GST-CT1及其生物活性的鉴定[J].中国医科大学学报,2014,43(9):777-780.

[18]袁静明,李卓玉,王雅梅,等.利用内蛋白子剪切功能一步纯化重组人生很静营养因子-3[J].中国生物化学与分子生物学报,2000,16(3):335-339.

[19]林少华,罗红霞,郭慧媛,等.重组牛乳铁蛋白肽包含体的复性与纯化[J].中国乳品工业,2006,34(1):9-12.

(编辑 陈 姜)

Purification ofCT3 FragmentofCav1.2 with Dithiothreitol

SUN Yu1,FENG Rui1,YANG Lei2,MAO Nan1,HU Hui-yuan1,SUN Xue-fei1,HAO Li-ying1
(1.DepartmentofPharmaceuticalToxicology,SchoolofPharmacy,China MedicalUniversity,Shenyang 110122,China;2.IndustrialGoods Center,Entry-exitInspection and Quarantine Bureau,Tianjin 300300,China)

Objective To explore whetherdithiothreitol(DTT)is helpfulfor PreScission Protease to cutoffthe GST from GST-CT3 protein.MethodsThe pGEX-6P-3/CT3 recombinant plasmid was transfected into Escherichia coli BL21,and the GST-CT3 fusion protein was purified by BPER method.PreScission Protease was applied with 10 mmol/L DTT to cut off the GST,then the SDS-PAGE was performed for identification of the CT3 protein.ResultsWithout DTT,it was very difficult for PreScission Protease to cut off the GST from GST-CT3 protein.However,in the presence of10 mmol/L DTT,PreScission Protease could cutoffthe GSTeasily as identified by SDS-PAGE.Conclusion10 mmol/L DTT can help Pre-Scission Protease to cutGSTfrom GST-CT3 protein,so as to achieve high concentration ofCT3.

fusion protein;cardiac myocytes;calcium channel

R96

A

0258-4646(2015)07-0588-04

国家自然科学基金(31471091,31400981)

孙宇(1989-),女,硕士研究生.

郝丽英,E-mail:lyhao@mail.cmu.edu.cn

2015-01-13

网络出版时间:

猜你喜欢

钙通道高浓度蛋白酶
细粒级尾砂高浓度胶结充填试验研究与工业应用
酶法水解杏鲍菇谷蛋白制备抗氧化肽
关于麦芽中蛋白酶的分解研究
氧化槐果碱对离体大鼠胸主动脉环的舒张作用及其机制研究
系列嵌段聚醚在高浓度可分散油悬浮剂的应用
思乡与蛋白酶
高浓度农药废水的治理方法
纤维素酶及其与蛋白酶和脂肪酶的复配在洗涤剂中的应用研究
铁炭微电解预处理高浓度酵母废水
T型钙通道在心血管疾病领域的研究进展