抑制CK2增加Sorbitol引起的肺癌细胞凋亡
2014-09-13徐晓光蒋颖超
齐 昕 徐晓光 蒋颖超
(吉化集团公司总医院,吉林 吉林 132001)
许多研究显示,山梨醇(Sorbitol)作为一种糖醇可以诱导多种癌症细胞凋亡〔1,2〕。在肺癌细胞中Sorbitol可以诱导细胞死亡,然而,Sorbitol也可以增加酪蛋白激酶(CK)2的表达,因此被认为是Sorbitol应用的弊端。 CK2是一种致癌基因,在包括肺癌在内的多种人类肿瘤中普遍上调。研究发现CK2可以参与调控细胞生长、增殖和凋亡〔3〕,通过激活核转录因子(NF)-κB促进癌症细胞存活〔4,5〕,保护癌症细胞免受药物诱导的凋亡〔6〕。研究显示,通过siRNA技术或抑制剂抑制CK2的活性可以引起癌症细胞凋亡〔7~11〕。因此靶向CK2可能会为癌症治疗或者联合治疗提供一种可能性。本文分析CK2抑制剂(TBB)与Sorbitol联合应用在肿瘤抑制中的效应及其根本机制。
1 材料与方法
1.1主要试剂与仪器 山梨醇(Sorbitol),TBB,四甲基偶氮唑蓝(MTT)购自Sigma公司(美国),胎牛血清和DMEM培养基购自Gibco公司(美国)。
1.2细胞株与细胞培养 人肺癌A549细胞购自美国ATCC公司,细胞于含10%胎牛血清DMEM培养基中,当A549细胞生长至对数生长期时进行细胞传代和实验。
1.3MTT法检测细胞活性 A549细胞以1×104/ml密度接种于96孔细胞培养板中,每孔加100 μl,待细胞隔夜培养完全贴壁后给予不同的药物,继续培养24 h后,加入MTT溶液后继续培养4 h,分为对照组(Control),Sorbitol 1 h组,Sorbitol 2 h组,Sorbitol 3 h组。结束后用加样器弃除上清,每孔加入150 μl二甲基亚砜(DMSO),振荡器上混匀10 min,用酶标仪于490 nm波长处测定吸光度(A)值。按下面公式计算细胞存活率。细胞存活率 (%) =〔A实验孔-A空白孔/(A对照孔-A空白孔)〕×100%
1.4Western印迹检测细胞蛋白表达 将各组药物处理过的A549细胞,加入细胞裂解液(RIPA),用细胞刮将贴壁细胞刮下,收集到1.5 ml离心管中,裂解20 min后,离心收集上清,测蛋白浓度,加入上样缓冲液煮沸变性后进行丙烯酰胺凝胶电泳。分离胶浓度10%,电泳结束后将胶上的蛋白转移至聚偏氟乙烯(PVDF)膜上,100 V,转膜2 h,转膜结束后5%脱脂奶粉封闭1 h。封闭结束后,加入相应的一抗(Cell Signaling公司1∶1 000) 4℃孵育过夜,第二天加入对应的二抗 (Cell Signaling公司1∶5 000)室温孵育2 h,Tris盐酸缓冲液(TBST)洗3次膜,每次15 min,化学荧光法(ECL)显影,扫描。
2 结 果
2.1Sorbitol抑制肺癌A549细胞生长 对照组细胞存活率为1。Sorbitol可以引起细胞活性降低,并呈时间依赖性。Sorbitol作用1,2,3 h后细胞存活率分别为(79±4.37)%、(64.4±3.74)%、(50.4±2.65)%。不同浓度Sorbitol(0.5、1、1.5 mol/L)可以显著降低细胞活性,各组细胞存活率分别为(77.5±2.03)%、(62.7±1.74)%、(49.9±2.2)%,并呈剂量依赖性。
2.2Sorbitol介导A549细胞凋亡 分别用0.5、1、1.5 mol/L Sorbitol处理A549细胞,Western印迹检测发现不同浓度的Sorbitol可以明显引起细胞色素C释放,诱导caspase3和RARP的活化。见图1,表1。
图1 Sorbitol对A549细胞Cytochrome C、Cleaved caspase-3和Cleaved PARP表达水平的影响
表1 Sorbitol对A549细胞Cytochrome C, Cleaved caspase-3和Cleaved PARP表达水平的影响±s)
2.3联合应用TBB增加Sorbitol对A549细胞的生长抑制 结果显示,单独应用TBB对细胞活性没有影响,联合应用TBB增加了Sorbitol在A549细胞中的生长抑制效应。同时,联合应用TBB可以显著增加细胞色素C的释放、caspas-3的活化以及RARP的剪切,结果显示,联合应用TBB可以增加Sorbitol诱导的细胞凋亡。见图2,表2。
2.4TBB可能通过恢复Sorbitol诱导的早幼粒细胞性白血病(PML)降低促进了凋亡 在0.5、1、1.5 mol/L浓度下Sorbitol可以显著降低细胞内PML蛋白表达水平(0.277±0.064、0.186±0.075、0.112±0.057,对照组为0.326±0.073);而联合应用TBB,细胞内PML蛋白表达水平回升,对照组为0.156±0.054,TBB组为0.163±0.042,Sorbitol组为0.075±0.033,Sorbitol+TBB组为0.149±0.042。见图3,图4。
图2 TBB对Sorbitol引起A549细胞Cytochrome C、Cleaved caspase-3和Cleaved PARP水平改变的影响
表2 CK2抑制剂TBB对Sorbitol引起A549细胞活性的影响±s)
图3 不同浓度Sorbitol对A549细胞PML蛋白表达水平的影响
图4 TBB对Sorbitol引起A549细胞PML水平改变的影响
3 讨 论
有报道称,Sorbitol作为一种己糖可以引起Hep-2细胞凋亡,并且可以在胃癌细胞系中诱导细胞核和DNA断裂〔1〕。同样有研究表明,在人类白血病K562细胞中,Sorbitol可以上调bax、下调bcl-2,最终导致细胞色素C的释放〔2〕。本文的结果显示Sorbitol可以显著抑制肺癌A549细胞的生长,增加细胞色素C的释放以及caspase3的活化和RARP的剪切。然而数据也显示,Sorbitol可以增加CK2的水平,从而发挥一定的促活功能。
CK2的促瘤效应与其可以下调PML蛋白的功能息息相关〔12〕。PML最初是在急性早幼粒细胞性白血病(APL)t(15;17)染色体异位的断点处被确认的〔13,14〕。并且PML蛋白属于一个庞大的蛋白家族,这一家族蛋白普遍存在一个非结构化的C末端区域以及位于N末端的RBCC结构域,包括一个环指结构(R)、两个附属锌指结构(B盒;B)和一个α-螺旋卷曲(α-helical coiled-coil)结构域(CC)。RBCC结构域调控蛋白质-蛋白质相互作用和PLM蛋白的多聚化〔15〕。在细胞中,PML蛋白在调控细胞生长,转化抑制和衰老中起到关键作用。而且小鼠内PML蛋白的失活导致了癌症敏感性〔16,17〕。PML参与了复杂的肿瘤抑制信号网络,包括激活p53和抑制PI3K/AKT〔15〕。已有研究证明,PML在许多癌症中是下调的,包括肺癌、结肠癌、胃癌、乳腺癌和中枢神经系统肿瘤〔18〕。
然而,PML几乎不发生突变,而其下调主要是由其他分子对它的翻译后修饰引起的〔19〕。CK2是PML重要的调控者之一。CK2通过直接磷酸化PML第517位丝氨酸促进泛素介导的降解途径从而调控PML蛋白水平,并且在体内试验中,抑制CK2可以增加PML蛋白的肿瘤抑制功能〔12〕。在本研究中,应用蛋白激酶CK2选择性细胞渗透性抑制剂4,5,6,7-四溴-1H-苯并三唑(TBB)〔20〕抑制在人类肺癌细胞系A549细胞中的CK2,结果发现联合应用TBB可以明显恢复PML蛋白水平。
联合化疗是抑制细胞内不同存活通路的有效的癌症治疗策略。在这项研究中,将TBB与Sorbitol联合应用来诱导肺癌A549细胞凋亡。除外其凋亡效应,发现Sorbitol可以降低PML蛋白水平,而这可能是单一Sorbitol治疗的缺陷。因此联合应用CK2抑制剂TBB处理细胞。在肺癌A549细胞中可见,与单一应用Sorbitol相比,联合应用TBB可以通过抑制CK2明显恢复PML蛋白水平,并且抑制细胞生长。同时发现,联合用药可以增加Cleaved caspase-3和Cleaved PARP的水平,这些结果提示Sorbitol联合应用TBB可能是肺癌治疗的一种可行性策略。
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