肿瘤酸性pH分子显像研究进展
2014-06-13唐刚华胡孔珍
胡 鸿, 唐刚华,胡孔珍
(1.人民医院 放射科,湖南 东安 425900;2.中山大学附属第一医院 核医学科PET-CT中心,广州 510080)
人体体液保持着严格的酸碱平衡[1]。体液中含量最多的碳酸氢盐/二氧化碳(HCO3-/CO2)缓冲体系在维持体液酸碱动态平衡中起着重要的作用。细胞外液主要缓冲物质为HCO3-(NaHCO3),在碳酸酐酶作用下,体内HCO3-和CO2发生相互转化,能够调节缓冲体液微弱酸碱变化,从而维持体内酸碱动态平衡[2-3]。
许多疾病状态诸如炎症、缺血、癌症和肾脏疾病等都涉及pH变化(酸碱失衡)。研究表明,几乎所有肿瘤细胞内液pHi(7.0~7.2)和肿瘤细胞外液pHe(6.2~6.9)都低于正常组织(pH 7.3~7.4)[1,4-6],组织细胞pH变化是代谢过程、质子转运和缓冲作用的综合结果[1],测定体液pH可为酸碱失衡引起的疾病提供参考,肿瘤pH显像是分子显像重要研究领域。近年来,磁共振显像(MRI)、磁共振波谱分析(MRS)、核医学显像和光学成像已用于临床前pH显像研究,在涉及酸碱失衡的诊断和疗效监测方面具有较好应用前景,为进一步将无创伤性显像技术转化为临床肿瘤pH分子显像奠定了基础。本文对肿瘤酸性pH分子显像最新研究进展进行综述。
1 pH分子探针
理想的pH分子探针应符合以下条件[7]:(1)能够部分电离,即以离子化形式和非电离形式存在,离子化形式浓度和非电离形式浓度比值([离子化形式]/[非电离形式])与pH成比例,满足Henderson-Hasselbalch方程:pH=pKa+lg([离子化形式]/[非电离形式]),其中pKa为酸电离常数Ka的负对数;(2) 分子探针不会改变组织pH变化;(3) pH分子探针组织区室化分布已知;(4) 分子探针为无毒;(5)不依赖分子探针浓度;(6)快速检测pH变化。pH分子探针主要包括磁共振分子显像(MRMI)探针、核医学分子显像探针和光学分子显像探针,其他方面的影像分子探针应用较少。
1.1 pH磁共振分子显像探针
用于检测pH的磁共振分子显像(MRMI) 探针较多,包括磁共振波谱(MRS)分子探针和磁共振显像(MRI)造影剂。检测pH的MRS分子探针一般是基于依赖和非依赖pH共振间化学位移变化的原理而设计,分为MRS探针和MRS显像(MRSI)探针。近年来报道较多的MRS探针有:3-[N-(4-氟-2-三氟甲基-苯基)-磺酰基]-丙酸(ZK-150471),用于19F-MRS检测细胞外pH (pHe)[8];无机磷酸盐(Pi),用于31P-MRS检测细胞内pH(pHi)[8];3-氨基磷酸丙酯(3-APP),用于31P-MRS检测pHe[7-8]。1H MRSI探针 (±)2-(咪唑-1-基)-丁二酸 (ISUCA)和(±)2-咪唑-1-基-3-乙氧羰基丙酸(IEPA)的应用,可提高31P和19F检测pHe的灵敏性,但其空间和时间分辨率仍有限[1,8]。
目前,MRMI探针主要发展为三大类:动态核极化(DNP) MRS/MRSI探针、驰豫MRI探针和化学交换饱和转移(CEST) MRI探针,常用MRMI探针列于表1。 DNP能显著提高MRS的灵敏度,该技术是基于微波轰击样品,将不成对电子极性转化为邻近核极性,以提高MRS信号强度[1]。目前,主要的DNP 探针有:89Y-1,4,7,10-四氮杂环十二烷基- N,N′,N″,N‴-四(甲叉磷酸)(89Y-DOTP),用于DNP89Y-MRS检测pHe[7];超极化13C-标记碳酸氢盐,用于DNP13C-MRS/MRSI检测pHe和pHi[2,7-8];1-13C-丙酮酸盐(Pyruvate),用于DNP MRSI检测心肌细胞内pHi[7,9]。驰豫MRI是通过pH依赖性驰豫剂扰动水的弛豫,实现对pH显像。驰豫MRI探针报道较少,如157Gd-1,4,7,10-四氮杂环十二烷基-1,4,7,10-四乙酰胺基-四磷酸酯(Gd-DOTA-4AmP5-)和163Dy-1,4,7,10-四氮杂环十二烷基-N,N′,N″,N‴-四(甲叉磷酸,Dy-DOTP)联合应用,可检测pHe[7-8]。CEST MRI与传统造影剂不同,可通过转移饱和质子达到减低水分子信号(T1和T2*)而产生阴性对比,主要分为以下三类。 早期使用的小分子如糖类、氨基酸类、铵离子、杂环化合物等探针,属于反磁性CEST (diaCEST) 探针,如碘帕醇(Iopamidol)[10]和碘普胺(Iopromide)[11];而使用镧系元素合成的173Yb-1,4,7,10-四氮杂环十二烷基-1,4,7,10-四乙酸, 10-邻氨基苯胺(Yb-DO3A-oAA)[1]等,为顺磁性CEST (paraCEST)探针;对体内微量的蛋白质、多肽CEST 成像,这些内源性可变蛋白质和多肽则成为酰胺质子转移(APT)[12]MRI探针。
表1 检测pH的MRMI 探针
续表
1.2 pH核医学分子探针
用于检测pH的核医学分子探针,包括正电子发射断层(PET)显像分子探针和单光子发射断层(SPECT)显像分子探针。吸入11CO2[13]或注射[2-11C]5,5-二甲基噁唑烷-2,4-二酮(DMO)[14]已初步用于临床PET检测pH。两种pH分子探针检测pH的原理是基于探针离子化形式浓度和非电离形式浓度比值([离子化形式]/[非电离形式])与pH成比例。但由于吸入11CO2操作较麻烦,DMO合成较困难,且其灵敏度有限,因而限制了临床[7]。最近,国外研究者研制了一种可选择性靶向体内酸性组织的低pH插入肽(pHLIP),并用64Cu标记pHLIP (64Cu-pHLIP,图1)。在酸性的细胞外环境而不是正常生理pH下,pHLIP主要以单聚α-螺旋形式插入在脂质双分子层中,因而,64Cu-pHLIP PET可用于检测肿瘤pH[1,7,15]。最近,99Tcm标记pHLIP和18F-D-WT-pHLIP(图1),也已分别用于SPECT 和PET检测肿瘤pH[16]。
1.3 pH光学分子显像探针
检测pH的光学分子探针是光学分子显像重要研究领域,许多光学分子探针已用于肿瘤pH检测。pH光学分子探针的作用机理主要包括:(1)基于光诱导电子转移(PeT)效应[5],如酸性和碱性媒介中小分子氨基苯基BODIPY探针 (Aminophenyl BODIPY,结构示于图2a)[17]与酸性和碱性媒介中环状小分子精氨酸-甘氨酸-天冬氨酸肽-染料探针(Dye-cRGD,结构示于图2b)[18]。质子化的Aminophenyl BODIPY和Dye-cRGD荧光增强,去质子化的Aminophenyl BODIPY和Dye-cRGD几乎无荧光。(2)基于荧光共振能量转移(FRET)效应[5],如量子点(QD)装配多巴胺和多肽探针(QD-Dopamine-Peptide,结构示于图2c)[19]。在低pH时,主要以氢醌形式存在的QD-Dopamine-Peptide作为差的电子接受体,导致低光致发光淬灭(QD PL)现象。随着pH增加,缓冲液周边氧气氧化多巴胺,生成H2O2和苯醌。以苯醌形式存在的QD-Dopamine-Peptide作为好的电子接受体,引起较高效率的光致发光淬灭现象。(3) 基于自聚集相关能量转移(SAET)效应[5],如右旋糖苷纳米探针(Dextran-NP,结构示于图2d)[20]。在生理酸性环境中,腙键断裂导致荧光恢复。(4) 基于选择性靶向体内酸性组织脂质双分子层[21],如荧光基(Cy5.5和Alexa750)标记pHLIP,用于光学显像pH[6,21-23]。近年来,荧光比率显像探针和荧光寿命显像探针已发展成为两类重要的pH光学分子探针,前者基于检测发射光谱,后者基于检测探针寿命[1]。荧光寿命显像探针又分为时域荧光探针和频域荧光探针[1]。荧光比率显像探针的发展是pH光学分子显像的重要选择,如基于无机材料QD的比率纳米探针、基于合成聚合物的比率纳米探针和基于噬菌体的比率纳米探针[5],但pH荧光寿命显像探针报道相对较少,如QD和绿色荧光蛋白纳米荧光寿命探针。
图1 64Cu-pHLIP 、99Tcm-AH114567和18F-D-WT-pHLIP的结构Fig.1 Structure of 64Cu-pHLIP, 99Tcm-AH114567, and 18F-D-WT-pHLIP
图2 典型pH光学分子探针的结构。a— Aminophenyl BODIPY;b—Dye-cRGD;c—QD-Dopamine-Peptide;d—Dextran-NPFig.2 Typical structure of fluorescent pH probesa—Aminophenyl BODIPY;b—Dye-cRGD;c— QD-Dopamine-Peptide;d—Dextran-NP
2 pH分子显像的应用
2.1 pH磁共振分子显像
检测pH的 MRMI方法分为依赖pH化学位移技术、依赖磁化传递技术和依赖pH驰豫技术。早期使用的依赖pH化学位移技术主要包括1H、31P、19F和89Y MRS/MRSI。31P-MRS利用内源性Pi化学位移可检出pHi,同时利用外源性3-APP化学位移可检出pHe[1]。利用维生素B6氟化衍生物,19F-MRS可检出pHe和pHi[7]。由于这些探针具有低灵敏度,因而MRS很难获得高分辨率的pH图谱。为进一步提高其检测灵敏度,利用IEPA的pH敏感H2磁共振波谱分析共振可改善1H-MRS检测肿瘤(如乳腺癌和脑瘤)pH灵敏度[1,7,24]。尽管这些方法可检出肿瘤pHe,但其时间和空间分辨率仍有限。
动态核极化(DNP)是依赖pH化学位移技术,可显著提高MRI灵敏度[2,25]。利用超极化13C标记探针和89Y标记探针的化学位移变化,MRS/MRSI已用于肿瘤pH的检测。超极化1-13C-丙酮酸盐DNP技术已用于检测健康和疾病心脏的pHi[26],也可监测肿瘤组织代谢变化[27],但是否可用于肿瘤pH检测,尚无文献报道。Gallagher等[2]报道用超极化13C-标记碳酸氢盐检测肿瘤pH,显示很好应用前景,可望用于临床。荷瘤模型动物体内注射超极化13C-碳酸氢盐后,测定超极化H13CO3-和13CO2信号强度比值,采用Henderson-Hasselbalch方程估算肿瘤组织pH/pHe。结果表明,13C-标记碳酸氢盐DNP技术可望用于涉及肿瘤、缺血和炎症等组织内pH变化的临床病理过程显像。89Y-DOTP已用于DNP89Y-MRS检测pH,可显著提高灵敏度[28],但尚无活体pH显像研究报道。
化学交换饱和转移(CEST)属于依赖磁化传递技术,采用体相水和探针分子间的磁化传递MRI来评估检测肿瘤组织pH,包括反磁性CEST (diaCEST)、顺磁性CEST(paraCEST)和酰胺质子转移(APT) CEST[1,7]。用Yb-DO3A-oAA paraCEST检测MDA-MB-231乳腺肿瘤组织中pH,可获得乳腺肿瘤组织pH为6.82± 0.21,大腿肌肉pH为 7.26 ±0.14,并可获得MCF乳腺肿瘤pHe图谱[1,29]。Chen等[11]报道了用碘普胺(碘帕醇类似物) diaCEST检测乳腺肿瘤组织pHe,其检测pHe范围为6.2~7.2,经碳酸氢盐治疗后肿瘤pHe≥7.1,该方法为评估肿瘤酸性提供了无创伤性方法。酰胺质子转移(APT)是一种可用于检测组织中内源性可移动蛋白质和多肽酰胺质子的CEST-MRI技术,该法不需要注射造影剂,而是基于内源性物质(探针)。APT MRI在检测模型肿瘤pH方面具有较大潜力,近来Zhou等[12]已将该技术用于人脑肿瘤APT MRI研究,显示较好应用前景。
MR驰豫技术是基于用pH依赖驰豫造影剂扰动水的驰豫进行肿瘤组织pH检测,通常分为单注射法和双注射法。最常用的MR驰豫造影剂为Gd或Dy络合物造影剂,如Gd-DOTA-4AmP5-和Dy-DOTP。Garcia-Martin等[30]采用双注射法,即先后注射pH 敏感的Gd-DOTA-4AmP5-和pH非敏感的Dy-DOTP,对荷脑胶质瘤大鼠的脑瘤组织进行pH MRI显像。Martinez等[31]采用单注射法,共同注射pH 敏感的Gd-DOTA-4AmP5-和pH非敏感的Dy-DOTP,对脑胶质瘤模型进行pH MRI显像。单注射法具有较高空间分辨率,是较实用的临床检测肿瘤pH方法。
2.2 pH核医学分子显像
pH核医学分子显像,包括PET显像和SPECT显像。持续吸入11CO2用于脑瘤病人PET显像,检测脑瘤组织pH,结果显示脑瘤组织有一定程度放射性摄取[13]。但由于吸入11CO2操作较麻烦,且灵敏度不够理想,因而11CO2应用于临床PET显像有限[7]。注射DMO也已初步用于PET检测脑瘤病人脑瘤组织pH[14],但DMO合成较困难,且不能准确检测pH,因而未被广泛应用于临床PET显像[7]。唐刚华等[32]利用回旋加速器生产的11C-CO2,通过NaOH在柱吸附,用稀盐酸或NaH2PO4缓冲液中和后,即可得11C-碳酸氢盐缓冲液(11C-HCO3-/11C-CO2) 酸碱失衡显像剂,用于各种与酸碱失衡有关疾病(如肿瘤和炎症)的PET显像,可望迅速转化为临床应用。近年来,pHLIP是研究比较热门的多肽,可作为广范肿瘤标志物[6,23]。Vavere等[15]研制了64Cu-pHLIP,用于PET检测前列腺癌组织pHe,结果表明,低pHe前列腺癌组织可高度摄取64Cu-pHLIP,从而为酸性实体瘤的诊断提供了PET分子显像新方法。Daumar等[33]研制了18F-D-WT-pHLIP,用于PET检测前列腺癌组织pHe,获得了与64Cu-pHLIP 相类似的pH PET显像结果。Macholl 等[16]用99Tcm标记pHLIP制备了99Tcm-AH114567,用于SPECT 检测多种肿瘤pH,展现出较好的应用前景。但放射性核素标记pHLIP转化为临床应用仍需要进一步研究。
2.3 pH光学分子显像
pH光学分子显像主要集中基于PeT荧光探针、FRET荧光探针、SAET荧光探针和pHLIP荧光探针的应用。基于PeT的小分子荧光探针Aminophenyl BODIPY,在细胞内可通过溶酶体pH变化而被活化。体内外实验表明, BODIPY荧光探针与靶向肿瘤单克隆抗体的结合物,可特异性靶向结合活的癌细胞。这些结合物可用于肿瘤检测及实时治疗监测,也可为评估细胞内受体动力学、细胞活性和实时细胞死亡监测提供体外工具[17]。另外,靶向整合素小分子近红外pH活化荧光探针Dye-cRGD可用于活体显像来探测原发性和转移性乳腺癌,并具有较高的特异性和灵敏度[18]。基于FRET的QD-Dopamine-Peptide荧光纳米探针已用于检测细胞质中pH变化,但并未见活体肿瘤pH检测的研究报道[19]。基于SAET的荧光纳米探针Dextran-NP,体外光声显像表明,Dextran-NP探针能够区分癌症细胞和正常细胞。另外,活体双波长光声显像表明,Dextran-NP探针能够鉴别模型动物乳腺肿瘤组织和周围正常组织。结果表明,Dextran-NP探针可无创检测在正常生理和酸性环境中的早期肿瘤,并具有较高光学对比度[20]。标记pHLIP用于靶向肿瘤酸性光学显像是近年来研究的热点领域。Andreev等[21]用荧光基(Cy5.5或Alexa750)标记pHLIP,研究了靶向肿瘤酸性组织细胞膜肽的机理和用途,结果表明,荧光标记pHLIP可望用于肿瘤和炎症pH显像。Reshetnyak等[22]用荧光基(Cy5.5或Alexa750)标记pHLIP,对荷瘤模型酸性肿瘤pH行光学显像,结果表明,标记pHLIP可特异地结合转移性肿瘤和非转移性肿瘤组织,为原发性肿瘤、转移性肿瘤和坏死组织脂质体诊断提供新方法。最近,Weerakkody等[23]用荧光标记pHLIP研究了pHLIP靶向肿瘤作用,为进一步研制新型靶向酸性肿瘤pH的pHLIP分子探针提供了实验依据。
荧光比率显像和荧光寿命显像是两类重要的pH光学分子显像方法[1]。目前荧光比率显像应用于肿瘤pH检测报道较多,但主要局限于体外pH检测。由于荧光比率显像是基于荧光强度的测量方法,容易受激发光强度、 样品猝灭和荧光染料的浓度分布等因素的影响,难以做到准确定量测量。而荧光寿命显像一般来说是绝对的, 不受激发光强度、 荧光团浓度和光漂白等因素的影响, 仅与荧光团所处的微环境密切相关。因此,pH荧光寿命显像是pH光学分子显像的重要发展方向,但目前其应用有限。
3 小结
酸性pH是一种通用的肿瘤生物标志物,靶向酸性pH分子探针的研制是目前分子影像学热门研究领域。靶向酸性pH分子探针,已用于肿瘤磁共振分子显像、核医学显像和光学显像。用于靶向酸性pH磁共振分子显像探针研究较多,但用于临床肿瘤显像的研究报道很有限。近年来,pH核医学显像发展较快,但具有较好临床应用前景的pH探针很少。用于光学显像的pH分子探针也有较多报道,但主要集中在临床前研究阶段。用于超声显像的pH分子探针尚未发现文献报道。
参考文献:
[1] Zhang X, Lin Y, Gillies RJ. Tumor pH and its measurement[J]. J Nucl Med, 2010, 51:1 167-1 170.
[2] Gallagher FA, Kettunen MI, Day SE, et al. Magnetic resonance imaging of pH in vivo using hyperpolarized13C-labelled bicarbonate[J]. Nature, 2008, 453: 940-943.
[3] Casey JR. Why bicarbonate[J]. Biochem Cell Biol, 2006, 84: 930-939.
[4] Wu Y, Zhang W, Li J, et al. Optical imaging of tumor microenvironment[J]. Am J Nucl Med Mol Imaging, 2013, 3(1):1-15.
[5] Wang L, Li C. pH responsive fluorescence nanoprobe imaging of tumors by sensing the acidic microenvironment[J]. J Mater Chem, 2011, 21: 15 862-15 871.
[6] Fendos J, Engelman D. pHLIP and acidity as a universal biomarker for cancer[J]. Yale J Biol Med, 2012, 85: 29-35.
[7] Gallaghera FA, Kettunena MI, Brindle KM. Imaging pH with hyperpolarized13C[J]. NMR Biomed, 2011, 24: 1 006-1 015.
[8] Hashim AI, Zhang X, Wojtkowiak JW, et al. Imaging pH and metastasis[J]. NMR Biomed, 2011, 24(6):582-591.
[9] Schroeder MA, Swietach P, Atherton HJ,et al. Measuring intracellular pH in the heart using hyperpolarized carbon dioxide and bicarbonate: a13C and31P magnetic resonance spectroscopy study[J]. Cardiovascular Res, 2010, 86, 82-91.
[10] Aime S, Calabi L, Biondi L, et al. Iopamidol: exploring the potential use of a well established X-ray contrast agent for MRI[J]. Magn Reson Med, 2005, 53:830-834.
[11] Chen LQ, Howison CM, Jeffery JJ, et al. Evaluations of extracellular pH within in vivo tumors using acidoCEST MRI[J]. Magn Reson Med, 2013: 26. doi: 10.1002/mrm.25053.
[12] Zhou J, Blakeley JO, Hua J, et al. Practical data acquisition method for human brain tumor amide proton transfer (APT) imaging[J]. Magn Reson Med, 2008, 60:842-849.
[13] Brooks DJ, Beaney RP, Thomas DGT, et al. Studies on regional cerebral pH in patients with cerebral tumours using continuous inhalation of11CO2and positron emission tomography[J]. J Cerebral Blood Flow Metabolism, 1986, 6:529-535.
[14] Rottenberg DA, Ginos JZ, Kearfott KJ, et al. In vivo measurement of brain tumor pH using [11C]DMO and positron emission tomography[J]. Ann Neurol, 1985, 17(1): 70-79.
[15] Vavere AL, Biddlecombe GB, Spees WM, et al. A novel technology for the imaging of acidic prostate tumors by positron emission tomography[J]. Cancer Res, 2009, 69(10):4 510-4 516.
[16] Macholl S, Morrison MS, Iveson P, et al. In vivo pH imaging with99Tcm-pHLIP[J]. Mol Imaging Biol, 2012, 14:725-734.
[17] Urano Y, Asanuma D, Hama Y, et al. Selective molecular imaging of viable cancer cells with pH-activatable fluorescence probes[J]. Nat Med, 2009, 15: 104-109.
[18] Lee H, Akers W, Bhushan K, et al. Near-infrared pH-activatable fluorescent probes for imaging primary and metastatic breast tumors[J]. Bioconjug Chem, 2011; 22: 777-784.
[19] Medintz IL, Stewart MH, Trammell SA, et al. Quantum-dot/dopamine bioconjugates function as redox coupled assemblies for in vitro and intracellular pH sensing[J]. Nat Mater, 2010, 9: 676-684.
[20] Huang G, Si Z, Yang S, et al. Dextran based pH-sensitive near-infrared nanoprobe for in vivo differential-absorption dual-wavelength photoacoustic imaging of tumors[J]. J Mater Chem, 2012, 22: 22 575-22 581.
[21] Andreev OA, Dupuy AD, Segala M, et al. Mechanism and uses of a membrane peptide that targets tumors and other acidic tissues in vivo[J]. PNAS, 2007, 104(19): 7 893-7 898.
[22] Reshetnyak YK, Yao L, Zheng S, et al. Measuring tumor aggressiveness and targeting metastatic lesions with fluorescent pHLIP[J]. Mol Imaging Biol, 2011, 13:1 146-1 156.
[23] Weerakkody D, Moshnikova A, Thakur MS, et al. Family of pH (low) insertion peptides for tumor targeting[J]. PNAS, 2013, 110(15): 5 834-5 839.
[24] Bhujwalla ZM, Artemov D, Ballesteros P, et al. Combined vascular and extracellular pH imaging of solid tumors[J]. NMR Biomed, 2002, 15(2): 114-119.
[25] Jindal AK, Merritt ME, Suh EH, et al. Hyperpolarized89Y complexes as pH sensitive NMR probes[J]. J Am Chem Soc, 2010, 132(6): 1 784-1 785.
[26] Schroeder MA, Swietach P, Atherton HJ,et al. Measuring intracellular pH in the heart using hyperpolarized carbon dioxide and bicarbonate: a13C and31P magnetic resonance spectroscopy study[J]. Cardiovascular Res, 2010, 86: 82-91.
[27] Golman K, Zandt RI, Lerche M,et al, Ardenkjaer-Larsen JH. Metabolic imaging by hyperpolarized13C magnetic resonance imaging for in vivo tumor diagnosis[J]. Cancer Res, 2006, 66: 10 855-10 860.
[28] Jindal AK, Merritt ME, Suh EH, et al. Hyperpolarized89Y complexes as pH sensitive NMR probes[J]. J Am Chem Soc, 2010, 132(6): 1 784-1 785.
[29] Sheth VR, Li Y, Chen LQ, et al. Measuring in vivo tumor pHe with CEST-FISP MRI[J]. Magn Reson Med, 2012, 67:760-768.
[30] Garcia-Martin ML, Martinez GV, Raghunand N, et al. High resolution pH(e) imaging of rat glioma using pH-dependent relaxivity[J]. Magn Reson Med, 2006, 55:309-315.
[31] Martinez G, Zhang X, Garcia-Martin M, et al. Imaging the extracellular pH of tumors by MRI after injection of a single cocktail of T1 and T2 contrast agents[J]. NMR Biomed, 2011, 24(10): 1 380-1 391.
[32] Tang G, Wang H, Huang T,et al. Positron emission tomography imaging of acid-base imbalance in vivo using11C-labelled bicarbonate buffer[J]. J Nucl Med, 2012, 53 (Supplement 1):1 173.
[33] Daumar P, Wanger-Baumann CA, Pillarsetty NV,et al. Efficient18F labeling of large 37-amino-Acid pHLIP peptide analogues and their biological evaluation[J]. Bioconjugate Chem, 2012, 23:1 557-1 566.