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突变型Notch 3(R90C)蛋白调控自噬诱导VSMC细胞凋亡的分子机制

2013-10-11丁雪冰王雪晶马明明邵凤民

中国实用神经疾病杂志 2013年1期
关键词:空泡平滑肌孵育

丁雪冰 王雪晶 马明明 朱 清 邵凤民△

1)河南省人民医院肾病风湿科 郑州 450003 2)郑州大学第一附属医院神经内科 郑州 450052 3)河南省人民医院神经内科 郑州 450003

伴有皮质下梗死和白质脑病的常染色体显性遗传性脑动脉病(cerebral autosomal dominant arteriopathy with subcortical infarcts and leukoencephalopathy,CADASIL)是最常见的遗传性卒中疾病。本病病理改变是一种非动脉硬化性、非淀粉样变性,小动脉病,嗜锇颗粒(granular osmiophilicmateria,GOM)的沉积于血管平滑肌基底膜是它特征性病理改变[1]。其发病与Notch3基因突变导致小血管平滑肌细胞退行性改变相关[2]。

1993年Tournier-Lasserve等首次从两个法国CADASIL家系中,应用遗传连锁分析方法将CADASIL基因定位于19p12内D19S221至D19S222区间的14cM的区的Notch3基因[3]。Notch3基因在CADASIL的发病过程中的重要性已经得到公认,但是其表达的蛋白在发病中机制如何至今尚不能确定。2002年Utku教授首次在土耳其的一例CADASIL家系中发现了Notch3基因R90C突变[4]。R90C突变存在于Notch3基因的第三个外显子区域,编码细胞外区表皮样生长因子重复序列(EGF-like)的胞外段,免疫组织化学研究显示,携带此突变的患者,其小动脉血管平滑肌细胞Notch3胞外段清除障碍,在细胞膜大量堆积本病病理改变是一种非动脉硬化性、非淀粉样变性,小动脉病,嗜锇颗粒(granular osmiophilicmateria,GOM)的沉积于血管平滑肌基底膜是它特征性病理改变[5]。但Notch3(R90C)突变蛋白的具体致病机制,至今仍未明确。

1 材料与方法

1.1材料Flag-Notch3(WT)、Flag-Notch3(R90C)质粒由北 京 赛 诺 基 因 有 限 公 司 (www.sinogenomax.com/en/default.aspx)构建合成。大鼠主动脉血管平滑肌细胞A10由加拿大多伦多大学Jane McGlade博士惠赠。DMEM培养基、OPTI-MEM培养基、胎牛血清(FBS)购于美国GIBCO公司,转染试剂脂质体Lipofectamine TM 2000购于美国Invitrogen公司,抗Beclin 1抗体购于美国Abcam公司、LC 3抗体购于Eptimics公司、GAPDH抗体购于美国Santa Cruz Biotechnology公司;过氧化物酶标记山羊抗兔IgG购于美国Promega公司。MDC购于Sigma公司。

1.2细胞培养及转染A10细胞常规培养于10%FBS的DMEM完全培养液中。待细胞铺满培养瓶底30%~40%后,弃去DMEM,每孔加入1mL OPTI-MEM,将3%5μL的质粒及2.0μL lipofectamine TM 2000分别与100μL OPTIMEM混匀后,共同加入六孔板的每个孔中,混匀,在37℃,5%CO2的培养箱中孵育6h,改用含10%FBS的DMEM培养基继续孵育48h。

1.3 Western blot检测细胞Beclin 1蛋白及LC3Ⅱ/LC3Ⅰ比值SH-SY5Y 细胞分别转染 Flag-Notch3(WT)、Flag-Notch3(R90C)48h后,提取细胞总蛋白,做 SDS-PAGE电泳,将蛋白样本转移至硝酸纤维滤膜上。用5%脱脂奶粉封闭1h,TBST洗3次,加入抗Beclin 1(1∶800)、抗LC3(1∶300)抗体,4℃过夜。加人过氧化物酶标记山羊抗兔IgG(1∶5000),置于水平脱色摇床上孵育2h,TBST漂洗3次,ECL光化学法显色。凝胶成像分析系统分析扫描。

1.4 MDC检测细胞自噬空泡变化MDC是一种自噬空泡的标志物,可以通过MDC染色观察判断细胞自噬过程的发生。SH-SY5Y细胞分别转染 Flag-N1、Flag-Notch3(WT)、Flag-Notch 3(R90C)24h后,以4%多聚甲醛,4℃下固定10 min,PBS洗3遍,加入终浓度为50μmol/L的MDC染色液,37℃下孵育60min,PBS洗3遍,荧光显微镜下观察细胞自噬空泡的变化。

1.5流式细胞仪检测细胞凋亡A10细胞分别转染Flag-Notch3(WT)、Flag-Notch3(R90C)24h后,取100μL细胞悬液加入5μL Annexin-/FITC和20μg/mL PI溶液10μL,混匀后室温避光孵育15min,加入400μL PBS,以流式细胞仪PI/Annexin-V-FITC检测细胞凋亡情况。

1.6统计学分析Alpha Ease FC(FluorChem8900)软件分析图像,实验数据采用均值±标准差(s)表示,所得实验数据用SPSS 13.0统计软件行方差分析。P<0.05为差异有统计学意义。

2 结果

2.1 Western blot检测细胞内源性Beclin 1蛋白、LC3Ⅱ/LC3Ⅰ的表达在 A10细胞内过表达Flag、Flag-Notch3(WT)、Flag-Notch3(R90C),Western blot结果显示,与Flag相比,过表达Flag-Notch3(WT),使 A10细胞中Beclin 1表达上调且LC3Ⅱ/LC3Ⅰ的比值增高;与Flag-Notch3(WT)相比,过表达Flag-Notch3(R90C)使 A10细胞中Beclin1表达明显下调且LC3Ⅱ/LC3Ⅰ的比值降低。如图1所示。

图1 Western blot检测A10细胞内源性Becline 1蛋白及LC3Ⅱ、LC3Ⅰ蛋白的表达

2.2 MDC染色检测SH-SY5Y细胞中自噬空泡的变化在A10细胞内过表达Flag-Notch3(WT)、Flag-Notch3(R90C),MDC染色结果显示,与 Flag-Notch3(WT)相比,过表达Flag-Notch3(R90C)导致 MDC染色信号减弱,自噬空泡聚集减少。结果如图2所示。

图2 MDC染色检测SH-SY5Y细胞中自噬空泡的变化(免疫荧光 ×400)

2.3 PI/Annexin-V-FITC检测Notch3(R90C)对细胞凋亡率的影响PI/Annexin-V-FITC检测细胞凋亡率,结果显示,与Flag-Notch3(WT)相比,过表达Flag-Notch3(R90C)增加细胞凋亡率。如图3所示。

图3 PI/Annexin V-FITC检测细胞凋亡率的变化

3 讨论

Notch3基因是CADASIL的致病基因,编码含有2321个氨基酸的跨膜受体蛋白。Notch3基因在正常组织中主要表达于血管平滑肌细胞。Notch3基因致病性突变导致EGF序列半胱氨酸残基产生,破坏了原有的二硫键配对,导致血管平滑肌细胞功能异常而致病[6]。Joutel等人研究发现在CADASIL病人的组织中,Notch3蛋白胞膜外区域无法正常降解,在血管平滑肌表面积聚;并推测这可能是Notch3蛋白突变体的致病机制[7]。

自噬是细胞内的大分子营养物质和细胞器在溶酶体内降解的过程[8]。自噬过程可分为微自噬、巨自噬和分子伴侣介导的自噬。在巨自噬形成过程中,LC3Ⅱ/LC3Ⅰ比值明显增高。Beclin 1通过与Vps34结合激活P13K通过促进自噬体的形成,能够反映体内巨自噬的激活水平[9]。细胞内环境紊乱时,细胞自噬被抑制,导致蛋白降解障碍,在细胞内聚集而致病[10]。

本研究发现Notch3(R90C)通过下调A10细胞中Beclin 1蛋白及LC3Ⅱ/LC3Ⅰ比值,抑制自噬水平,促进细胞凋亡。由此我们认为,Notch3(R90C)通过抑制血管平滑肌细胞自噬诱导神经元细胞凋亡;调控自噬可能成为CADASIL治疗一个新的方向。

[1]Fukutake T.Carasil[J].Brain Nerve,2011,63(2):99-108.

[2]Uchino M,Rinsho Shinkeigaku.The pathomechanism and treatment of CADASIL[J].2011,51(11):945-948.

[3]Tournier Lasserve E,Joutel A,Melki J,et al.Cerebral autosomal dominant arteriopathy with subcortical infarcts and leukoencephalopathy maps to chromosome 19q12[J].Nat Genet,1993,3:256-259.

[4]Utku U,Celik Y,Uyguner O,et al.CADASIL syndrome in a large Turkish kindred caused by the R90Cmutation in the Notch3receptor[J].Eur J Neurol,2002,9(1):23-28.

[5]Tikka S,Mykknen K,Ruchoux MM,et al.Congruence between NOTCH3mutations and GOM in 131CADASIL patients[J].Brain,2009,132(4):933-939.

[6]Monet-LeprStre M,Bardot B,Lemaire B,et al.Distinct phenotypic and functional features of CADASlL mutations in the Notch3ligand binding domain[J].Brain,2009,132:1 601-1 612.

[7]Ishiko A,Shimizu A,Nagata E,et al.Notch3ectodomain is a major component of granular osmiophilic material(GOM)in CADASIL[J].Acta Neuropathol,2006,1(12):333-339.

[8]Ouyang L,Shi Z,Zhao S,et al.Programmed cell death pathways in cancer:a review of apoptosis,autophagy and programmed necrosis[J].Cell Prolif,2012,45(6):487-498.

[9]Kubli DA,Gustafsson B.Mitochondria and mitophagy:the yin and yang of cell death control[J].Circ Res,2012,111(9):1 208-1 221.

[10]Rubinsztein DC,Codogno P,Levine B.Autophagy modulation as a potential therapeutic target for diverse diseases[J].Nat Rev Drug Discov,2012,11(9):709-730.

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