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不同产地蒲公英药材中总黄酮和咖啡酸含量分析与评价△

2013-09-26冯倩穆丽郑伟苏瑞强惠建国赵志全

中国现代中药 2013年10期
关键词:临沂芦丁蒲公英

冯倩,穆丽,郑伟,苏瑞强,2,惠建国,2,赵志全,2

(1.鲁南制药集团股份有限公司,山东 临沂 276006;2.中药制药共性技术国家重点实验室,山东 临沂 276006;3.临沂市红十字会 中心血站,山东 临沂 276000)

不同产地蒲公英药材中总黄酮和咖啡酸含量分析与评价△

冯倩1,2*,穆丽3,郑伟1,苏瑞强1,2,惠建国1,2,赵志全1,2

(1.鲁南制药集团股份有限公司,山东 临沂 276006;
2.中药制药共性技术国家重点实验室,山东 临沂 276006;3.临沂市红十字会 中心血站,山东 临沂 276000)

目的:建立不同产地蒲公英药材综合质量评价方法。方法:采用紫外-可见分光光度法测定蒲公英总黄酮含量,采用HPLC测定其咖啡酸的含量。结果:不同产地蒲公英总黄酮和咖啡酸的含量均差异较大,总黄酮含量在28.63~51.79 mg·g-1,咖啡酸含量在0.007 6%~0.042 4%。结论:以总黄酮和咖啡酸作为质量评价指标,建立的方法简单、快捷、准确,结果表明山东临沂蒲公英的质量较好。

蒲公英;不同产地;总黄酮;咖啡酸

蒲公英为中医临床常用中药,为菊科植物蒲公英TaraxacummongolicumHand.Mazz、碱地蒲公英TaraxacumborealisinenseKitag.或同属数种植物的干燥全草。味苦、甘,性寒。归肝、胃经。具有清热解毒,消肿散结,利尿通淋的功能,用于疔疮肿毒,乳痈,瘰疬,目赤,咽痛,肺痈,肠痈,湿热黄疸,热淋涩痛[1]。我国药用蒲公英资源丰富但种类繁多,分布广泛[2],质量参差不齐。据报道,蒲公英的主要活性成分是黄酮类、有机酸和甾醇类物质[3]。因此,实验以总黄酮和咖啡酸为指标,分别采用紫外-可见分光光度法和HPLC测定了14个产地蒲公英的总黄酮和咖啡酸含量,为评价蒲公英药材的质量提供依据和参考。

1 仪器与试药

Agilent1100高效液相色谱仪;G1314A型紫外检测器;Agilent1100工作站;岛津UV-2401PC型紫外可见分光光度计;梅特勒AG285型电子分析天平;FA1004型电子分析天平;LD-400A型高速多功能摇摆粉碎机(浙江永康市红太阳机电有限公司);数显恒温水浴锅(上海阳光实验仪器有限公司);KQ5200DB型数控超声波清洗器(昆山市超声仪器有限公司);KDM型控温电热套(鄄城华鲁电热器有限公司)。

蒲公英药材系作者到各地自行采购,产于安徽、河南、山西、山东、河北、甘肃、陕西、黑龙江等地(均为秋季采收),经鲁南制药集团股份有限公司惠建国博士鉴定为碱地蒲公英TaraxacumborealisinenseKitag;咖啡酸、芦丁对照品(中国食品药品检定研究院,批号分别为:110885-200102,0080-9705);纯化水、蒸馏水自制;甲醇为色谱级,其余所用试剂为AR级。

2 方法与结果

2.1 总黄酮含量测定

2.1.1 对照品溶液配制[4]精密称取120 ℃减压干燥恒重的芦丁对照品19.749 mg,置100 mL量瓶中,精密加乙醇70 mL使之溶解,加蒸馏水至刻度,摇匀即得(含芦丁0.197 49 mg·mL-1)。

2.1.2 芦丁吸收曲线 精密量取芦丁对照品溶液、供试品溶液1.0 mL,置10 mL量瓶中,依次加5%亚硝酸钠溶液0.3 mL,摇匀,放置6 min;加10%硝酸铝溶液0.3 mL,摇匀,放置6 min;再加10%氢氧化钠溶液4 mL,加蒸馏水至刻度,摇匀。随行做空白对照,于200~800 nm波长范围内全波扫描,最大吸收波长为510 nm,因此选定510 nm作为检测波长。

2.1.3 标准曲线的制备 精密量取芦丁对照品溶液0.25,0.5,1.0,1.5,2.0,3.0 mL,按2.1.2项于510 nm波长处测定吸光度,随行做空白对照,以芦丁浓度为横坐标(X),以吸光度为纵坐标(Y)绘制标准曲线。其回归方程为Y=12.6X+0.016 7,r=0.999 6,线性范围0.005~0.059 mg·mL-1。

2.1.4 供试品溶液制备

2.1.4.1 提取溶剂的选择 精密称取安徽砀山样品7份,每份0.5 g,分别加50 mL水、甲醇、50%乙醇、60%乙醇、70%乙醇、80%乙醇和无水乙醇,称定重量,水浴回流提取1 h,放冷,称重,用相应溶剂补足减失的重量,过滤,各吸取0.5 mL,按2.1.2项于510 nm波长处测定吸光度,计算总黄酮含量,分别为42.10,24.61,35.42,36.84,40.43,35.22,18.64 mg·mL-1,结果表明以水和70%乙醇为提取溶剂效果最好,但用水提取时药材粉末漂浮在水面且极易粘附在瓶壁上,影响提取率,而用70%乙醇提取时药材粉末沉在溶剂底部,避免了这种问题,故选择70%乙醇作为提取溶剂。

2.1.4.2提取方法的选择 精密称取安徽砀山样品2份,每份0.5 g,加50 mL 70%乙醇,分别采用回流和超声方式提取1 h,按2.1.2项于510 nm波长处测定吸光度,计算总黄酮含量分别为38.01,28.13 mg·mL-1,结果表明回流法提取率较高。

2.1.4.3 溶剂用量的选择 精密称取河南鹿邑样品3份,每份0.5 g,分别加25,50,100 mL 70%乙醇,回流提取1 h,按2.1.2项于510 nm波长处测定吸光度,计算总黄酮含量分别为34.88,36.84,39.19 mg·mL-1。结果表明用100 mL(200倍)溶剂提取率较高。

2.1.4.4 提取时间的选择 精密称取山东临沂样品0.5 g,加100 mL 70%乙醇,回流提取,于0.5,1.0,1.5,2.0,2.5 h取样1 mL,按2.1.2项于510 nm波长处测定吸光度,计算总黄酮含量分别为39.63,41.29,41.57,41.84,41.29 mg·mL-1。结果表明,提取时间超过1 h时,总黄酮含量基本无变化,故选择提取时间为1 h。

通过上述试验,确定供试品溶液的制备方法为用200倍药材量的70%乙醇回流提取1 h。

2.1.5重复性试验 精密称取山东临沂样品5份,按2.1.4项制备供试液,按2.1.2项于510 nm波长处测定吸光度,计算总黄酮含量,结果RSD=0.57%,表明重复性良好。

2.1.6稳定性试验 精密称取山西太原样品0.25 g,按2.1.4项制备供试液,按2.1.2项于510 nm波长处在0,10,20,30,40,50 min时测定吸光度,结果RSD=0.44%,表明供试品溶液在50 min内稳定性良好。

2.1.7 加样回收率试验 精密称取已知含量的河北安国样品0.1 g,5份,分别加入芦丁对照品(0.197 49 mg·mL-1)15 mL,按2.1.4项制备供试液,按2.1.2项于510 nm波长处测定吸光度,测定含量并计算,结果总黄酮的平均回收率为104.6%,RSD=1.8%,结果见表1。

表1 总黄酮加样回收率测定

注:芦丁对照品加入量均为2.962 4 mg

2.1.8 样品总黄酮含量的测定 精密量取芦丁对照品溶液、不同产地供试品溶液1.0 mL,测定吸光度,计算蒲公英中总黄酮含量。结果见表2。

表2 蒲公英中总黄酮含量测定

2.2 咖啡酸含量的测定[1]

2.2.1色谱条件 色谱柱:Diamomil C18(200 mm×4.6 mm,5 μm,迪玛公司);流动相:甲醇-磷酸盐缓冲液(取磷酸二氢钠1.56 g,加水使溶解成1 000 mL,再加1%磷酸溶液调节pH值至3.8~4.0,即得)(23∶77);流速:1 mL·min-1;检测波长:323 nm;柱温:40 ℃;进样量:10 μL。

2.2.2 溶液制备

2.2.2.1 对照品溶液的制备 精密称取咖啡酸对照品9.72 mg,置 50 mL容量瓶中,加甲醇适量使溶解,并稀释至刻度,摇匀,即得 0.194 44 mg·mL-1对照品溶液。

2.2.2.2 供试品溶液的制备 取本品粗粉约1 g,精密称定,置50 mL具塞锥形瓶中,精密加5%甲酸的甲醇溶液10 mL,密塞,摇匀,称定重量,超声处理(功率250 W,频率40 kHz)30 min,取出,放冷,再称定重量,用5%甲酸的甲醇溶液补足减失的重量,摇匀,离心,取上清液,置棕色量瓶中,即得。

2.2.3 咖啡酸含量测定 不同产地的蒲公英药材按供试品溶液制备项下处理后,在上述色谱条件下进样分析,用外标法计算蒲公英中咖啡酸的含量,结果见表3。

表3 蒲公英中咖啡酸含量测定 /%

3 讨论

蒲公英药效成分复杂,2010年版《中国药典》只收录了咖啡酸含量测定标准[1]。据报道,总黄酮具有显著的抑菌、抗病毒作用[5],是蒲公英重要的药效成分,因此,作者建立了蒲公英中总黄酮的测定方法,经验证此法简单便捷,可行性好;同时对不同产地蒲公英的总黄酮和咖啡酸含量进行了测定,结果显示不同省份的药材含量有明显差异,安徽、山东、陕西蒲公英黄酮含量较高,安徽、山东、山西、黑龙江等地蒲公英咖啡酸含量较高;相同省份不同地区的药材,含量差异也较大;安徽亳州人工种植黄酮含量高于野生采收,但咖啡酸含量较低;山东临沂蒲公英黄酮含量和咖啡酸含量均较高。

[1] 国家药典委员会.中国药典[S].一部.北京:中国医药科技出版社,2010:331.

[2] 孟志云,徐绥绪,沈建平.蒲公英的研究进展[J].人民军医药学专刊,1997,13(2):83-87.

[3] 路保通,张鸯,胡新安,等.蒲公英有效成分提取及其抑菌活性作用[J].中国兽医杂志,2008,44(5):45-46.

[4] 李喜凤,杜云锋,郝哲.蒲公英中总黄酮的含量测定[J].中华中医药学刊,2009,27(6):1219-1220.

[5] 王晓梅,曹稳根.黄酮类化合物药理作用的研究进展[J].宿州学院学报,2007,22(1):105-107.

DeterminationofTotalFlavonoidandCaffeicAcidinTaraxacumofficinalefromDifferentHabitats

FENG Qian1,2*,MU Li3,ZHENG Wei1,SU Rui-qiang1,2,HUI Jian-guo1,2,ZHAO Zhi-quan1,2

(1.LunanPharmaceuticalGroupCo.,Ltd.,Linyi276005,China;2.StateKeyLaboratoryofGenericManufactureTechnologyofChineseTraditionalMedicine,Linyi276006,China;3.LinyiRedCrossBloodCenter,Linyi276000,China)

Objective:To establish a comprehensive quality evaluation method forTaraxacumofficinalefrom different habitats.Methods:Using ultraviolet-visible spetrophotometry determine total flavonoid and using HPLC determine caffeic acid content.Results:The total flavonoid content is 28.63-51.79 mg·g-1and the caffeic acid content is 0.007 6%-0.042 4%,which are remarkably different in different habitats.Conclusion:Shandong linyi medicinal materials quality is better according to total flavonoid and caffeic acid content.The method is convenient,rapid and accurate,which will be helpful for quality assessment ofTaraxacumofficinale.

Taraxacum;Different habitats;Total flavonoid;Caffeic acid

2013-03-23)

山东省科技发展计划项目(2011YD19015)

*

冯倩,工程师,主要研究方向:中药新药研究与开发,Tel:(0539)8336639,E-mail:fengqian1981p@126.com

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