重组家蚕素Ⅱ基因稳定转染HepG2细胞及鉴定
2012-11-21王玲玲杜珍武张玉成张桂珍吉林大学中日联谊医院中心研究室吉林长春30033
王玲玲 吴 雷 杜珍武 张玉成 张桂珍 (吉林大学中日联谊医院中心研究室,吉林 长春 30033)
重组家蚕素Ⅱ基因稳定转染HepG2细胞及鉴定
王玲玲1吴 雷2杜珍武 张玉成 张桂珍 (吉林大学中日联谊医院中心研究室,吉林 长春 130033)
目的 重组家蚕素Ⅱ基因(MBbxⅡ)稳定转染HepG2细胞,为研究MBbxⅡ在哺乳动物细胞中的生物学作用奠定基础。方法 含有MBbxⅡ质粒转化大肠杆菌DH-5α感受态菌,挑取单克隆摇菌,中量提取质粒,转染HepG2细胞45 d,G418筛查。挑细胞单克隆继续培养,待细胞融合80%提取RNA并进行逆转录,RT-PCR鉴定目的条带。结果 稳定转染MBbxⅡ于HepG2细胞中,转染后细胞可正常分裂增殖。结论 本研究成功稳定转染MBbxⅡ基因于HepG2细胞中。
家蚕素;稳定转染;HepG2
通过多年研究,家蚕全基因组精细图谱现已完成。通过家蚕核酸数据库、蛋白质数据库及EST数据库等各种二次数据库的构建和完善,为家蚕功能基因及其产物的研究提供了一个便利的技术平台〔1〕。与此同时研究也遇到一个问题——家蚕素(Bbx)蛋白提取及纯化困难。本研究小组为寻找可以大量提取Bbx蛋白的方法,对野生型家蚕素基因进行改造,将改造后家蚕素基因稳定转染于HepG2细胞中,为后续研究其在哺乳动物体内的生物学作用奠定基础。
1 材料与方法
1.1 材料
含有重组家蚕素基因的PcDNA3.0及PcDNA3.0空质粒由吉林大学第三临床医院中心研究室馈赠。质粒中量提取试剂盒、G418、高糖DMEM、Hyclone优质胎牛血清、胰酶、Lipotap脂质体转染试剂盒、UNIQ-10柱式Trizol总RNA抽提试剂盒、BioTeke super RT Kit及引物合成均购自上海生工。DNA Marker2000、2 ×Hostestart Taq PCR Master Mix均购自北京天根公司。
1.2 方法
(1)质粒pcDNA3.0-MBbxⅡ/His及空质粒pcDNA3.0转化入DH-5α感受态细胞。(2)在平皿中所见的白色菌落为成功转化的克隆。挑取单克隆摇菌。(3)根据质粒中量提取试剂盒说明书中量提取pcDNA3.0-MBbxⅡ/His及pcDNA3.0质粒。对所提取质粒进行琼脂糖凝胶电泳,检测质粒提取成功。(4)选择出在10~14 d内使HepG2细胞全部死亡的最低G418浓度进行下一步的筛选实验。(5)使用Naro-Drop ND-2000微量紫外分光光度计测定两种质粒含量。(6)应用Lipotap脂质体将质粒 pcDNA3.0-MBbxⅡ/His及空质粒pcDNA3.0稳定转染入HepG2细胞。(7)对稳定转染后HepG2细胞进行传代,当细胞稳定生长并传代(第10代左右)后提取RNA并逆转录为cDNA。(8)半定量RT-PCR检测MBbxⅡ基因在mRNA水平的表达:①PCR引物设计:根据GenBank中BbxⅡ基因的cDNA序列,利用Primer Primier 5.0软件设计特异性引物(见表1)。②半定量RT-PCR反应(以逆转录cDNA为模板)。PCR 反应体系:Template 1 μl、上游引物 1 μl、下游引物1 μl、2 × Master Mix12.5 μl、ddH2O 补至 25 μl;PCR 反应条件:94℃预变性 10 min,94℃ 变性 30 s、55℃ 退火 30 s、72℃延伸1 min共30个循环,72℃ 延伸10 min。(9)取PCR扩增产物5 μl,加10 × 电泳上样缓冲液2 μl,混匀,加样于2%的琼脂糖凝胶,电泳缓冲液为0.5×TBE,5 V/cm电压条件下电泳,于紫外灯下观察结果并照相。
表1RT-PCR引物
2 结果
2.1质粒转化及中量提取
平皿过夜培养后取出,肉眼下可见大量单个白色菌落。质粒中量提取后取5 μl提取的质粒进行电泳。以Marker2000作对照,紫外灯下拍照结果见图1。可见清晰的目的条带,表明成功提取质粒。
2.2 Lipotap脂质体稳定转染
经G418的浓度筛选确定稳定转染使用浓度为800 mg/L,后续实验中的维持浓度为400 mg/L。所提取质粒经Naro-Drop ND-2000微量紫外分光光度计测定 DNA 含量:pcDNA3.0-MBbxⅡ/His质粒246 ng/μl,OD260/OD280=1.829,pcDNA3.0 质 粒:37 ng/μl,OD260/OD280=1.721。在G418筛选45 d时,倒置显微镜下观察细胞,各组细胞已形成单克隆,且未转染组HepG2细胞已全部死亡(见图2)。表明质粒稳定转染成功。
2.3 细胞提取RNA及半定量RT-PCR检测MBbxⅡ基因在mRNA水平的
稳定转染细胞融合达90%进行细胞RNA提取并进行逆转录。实验分为转染pcDNA3.0-MBbxⅡ/His HepG2细胞组、转染空质粒pcDNA3.0 HepG2细胞组、未转染HepG2细胞组。半定量RT-PCR产物经凝胶电泳结果显示:三组细胞均可见到内参,且仅在转染pcDNA3.0-MBbxⅡ/His组细胞可见目的条带即MBbxⅡ(308 bp)条带(见图3),表明MBbxⅡ基因已成功稳定转染HepG2细胞。
图1 提取质粒的电泳图
图2 Lipotap脂质体稳定转染HepG2细胞(×100)
图3 稳定转染细胞RT-PCR电泳图
3 讨论
人类在深入研究哺乳动物存在胰岛素或胰岛素相关肽后,对无脊椎动物也进行了大量研〔2〕。现已证明胰岛素相关肽也广泛存在于昆虫体内,例如果蝇〔3〕、甘比亚疟蚊(Anopheles gambiae)〔4〕、灰翅夜蛾 (Spodoptera mauritia Boisduval)〔5〕等。1982年,在分离家蚕促前胸腺激素(prothoraci-cotropic hormone,PTTH)的过程中,从65万头家蚕的头部仅分离纯化出约50 μg大小为5 kD的多肽〔6〕;并且在后续的实验中发现,在生理剂量范围内,该多肽却不能活化家蚕的前胸腺〔7〕。研究中发现该多肽的氨基酸序列与高等动物的胰岛素高度同源,但功能却不尽相同〔8〕,倍受关注的研究热点是Bbx也具有与胰岛素相似的对糖代谢的调节作用。有研究显示家蚕的淋巴液中含有大量的海藻糖,Bbx表现出剂量依赖性的降低淋巴液中海藻糖含量的作用,同时Bbx在脂肪体中表现出降低糖原含量的作用〔9〕。
为实现家蚕素基因的高效表达,本研究小组在先期实验中制备了含有家蚕素N-端信号肽序列的真核表达载体,这有助于基因表达产物通过细胞膜实现转运过程,同时该载体还含有Kozak序列(GCCACCATGG),这在很大程度上可以提高家蚕素在哺乳动物细胞中的表达水平,借此可望实现在哺乳动物细胞获得分泌性的家蚕素。本研究通过基因重组技术对家蚕素Ⅱ基因进行改造,构建质粒 pcDNA3.0-MBbxⅡ/His,稳定转染HepG2细胞。G418筛选45 d时,倒置显微镜下观察细胞,稳定转染质粒pcDNA3.0-MBbxⅡ/His的HepG2细胞已经成功形成单克隆,后续提取细胞RNA并进行RT-PCR实验,证实308 bp处得到目的条带,为后续探讨MBbxⅡ在哺乳动物体内的生物学作用奠定基础。
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R34
A 〔
1005-9202(2012)04-0782-02;
10.3969/j.issn.1005-9202.2012.04.052
1 北华大学附属医院神经内科 2 吉林市中心医院心胸外科
张桂珍(1955-),女,教授,博士生导师,主要从事糖尿病分子发病机制研究。
王玲玲(1983-),女,主治医师,在读博士,主要从事糖尿病诊断与治疗研究。
〔2011-07-30收稿 2011-09-10修回〕
(编辑 徐 杰)