APP下载

糖尿病ED大鼠阴茎海绵体中血红素加氧酶的表达变化及意义

2012-05-23

山东医药 2012年18期
关键词:海绵体阴茎平滑肌

(辽宁医学院附属第一医院,辽宁锦州121001)

勃起功能障碍(ED)是男性糖尿病(DM)患者常见的并发症之一,也是男性DM患者生活质量降低的重要因素。据估计男性DM患者的发病率为35% ~75%,是非DM患者的3倍。目前研究认为,糖尿病性ED(DM-ED)的形成是多因素造成的,其中NO-GC-cGMP信号通路受损和氧化应激失衡在DM-ED的病理机制中具有重要作用。近年来,血红素加氧酶(HO)在勃起功能中的作用备受关注[1]。一氧化碳(CO)是HO催化降解血红素的产物之一,与一氧化氮(NO)有类似的生物学活性,具有浓度依赖性舒张阴茎海绵体平滑肌的作用[2];并且,HO表达与机体的氧化应激水平有密切关系[3],但关于HO与DM-ED的相关研究少见。2010年9月~2011年10月,我们建立DM-ED大鼠模型,观察该模型大鼠阴茎海绵组织中HO的表达变化,探讨其与DM-ED的关系。

1 材料与方法

1.1 主要试剂及仪器 链脲佐菌素(STZ)、阿扑吗啡(APO),均为 Sigma公司产品;兔抗大鼠 HO-1、HO-2多克隆抗体和免疫组化染色试剂盒,购自北京博奥森生物技术有限公司;三诺安稳型血糖仪及配套试纸;GENE GENIUS凝胶图像分析系统。

1.2 动物模型制备及分组 雄性SD大鼠40只(购自辽宁医学院实验动物中心),体质量260~300 g,为同一批繁殖并与发情雌鼠交配试验证实具有正常的性功能。随机取30只经腹腔注射STZ(65 mg/kg)制作DM模型,余10只作为正常对照组(NC组)。72 h后采用断尾取血法测定血糖,血糖 >16.7 mmol/L为造模成功。每周测定大鼠血糖1次,血糖<16.7 mmol/L者剔除。大鼠自由饮食水,昼夜交替饲养。造模8周后,采用APO诱导试验(大鼠颈部皮下注射 APO 80μg/kg)[4]评价 DM 大鼠的勃起功能,15只发生ED者为DM-ED组,12只(3只死亡)未发生ED者为单纯DM组。

1.3 HO-1、HO-2的检测方法 两组大鼠麻醉后取阴茎海绵体组织,4%甲醛固定,常规石蜡包埋并切片,予以免疫组化SP法染色,观察HO-1、HO-2表达部位,阳性细胞表达呈棕黄色。按试剂说明书操作,用胰酶抗原修复,室温修复20 min,封片后光镜下观察并摄片。采用Western blot法检测HO-1和HO-2表达水平:取冻存大鼠阴茎海绵体组织进行蛋白样品制备,采用BCA法测定蛋白浓度,以β-actin为内参,12%SDS-聚丙烯酰胺凝胶电泳,偏二氟乙烯膜转移。常规显影、定影,用GENE GENIUS凝胶成像系统分析其灰度值,以相应内参灰度值进行标准化。以目的蛋白与内参灰度值比值×100作为蛋白相对表达量。

1.4 统计学方法 采用SPSS16.0统计软件。数据以±s表示,两组比较采用t检验。P≤0.05为差异有统计学意义。

2 结果

各组中均有HO-1、HO-2表达,主要表达于海绵体平滑肌细胞和血管内皮细胞胞质中。各组阴茎海绵体组织中HO-1、HO-2相对表达量比较,见表1。

3 讨论

表1 各组阴茎海绵体组织中HO-1、HO-2相对表达量比较(±s)

表1 各组阴茎海绵体组织中HO-1、HO-2相对表达量比较(±s)

注:与NC 组比较,*P <0.01;与单纯 DM组比较,#P <0.05,△P<0.01

HO-1 HO-2 NC组组别11.38 ±1.77 27.69 ±5.07单纯 DM 组 28.49 ±4.74* 16.41 ±2.75*DM-ED 组 18.02 ±3.19*# 7.04 ±2.94*△

HO在体内有丰富的生物学作用,且与氧化应激关系密切,多见于DM相关并发症的研究中[5],其与DM-ED关系的研究少见。Hedlund等[6]研究发现,阴茎海绵体中含有HO-1神经纤维,阴茎血管内皮中存在HO-1和HO-2的表达,认为HO/CO系统与NOS/NO系统在阴茎勃起机制中一定的互补作用。

氧化应激被认为是DM-ED的发病机制之一[7]。高血糖状态使阴茎海绵体局部晚期糖基化终末产物增加,诱导细胞内氧化应激反应,活性氧(ROS)生成增多;ROS随着DM病程的延长而增加,抗氧化物的表达及活性下降,且与DM-ED的严重程度相关[8]。氧化应激损伤DM大鼠血管内皮和海绵体结构;大量的ROS与NO反应,生成高毒性的过氧亚硝酸盐(ONOO-),降低NO的生物利用度,对组织的结构和功能造成进一步损害,且反馈生成更多的ROS,恶性循环最终诱导ED的发生。ROS还可通过其他途径参与ED的病理机制,ROS使eNOS磷酸化受阻,降低eNOS的活性;活化Rho/Rho激酶通路,增强海绵体平滑肌收缩敏感性等[9]。有研究结果证明,抗氧化物还原性谷胱甘肽[10]和过氧化物歧化酶类似物[11]可改善DM大鼠的勃起功能,也间接验证了氧化应激在DM-ED发病机制中的重要性。

高血糖诱导氧化应激损害可适应性上调HO-1的表达,减弱氧化应激造成的损伤;HO-1的表达增加常与应激刺激有关,且对机体常起到保护作用[12]。实验[13]证明,上调 HO-1 表达能诱导抗氧化基因的表达,比如细胞外超氧化物歧化酶(ECSOD)和胞质内过氧化氢酶等,提高细胞抗氧化活性,降低氧自由基的生成;提高血管对乙酰胆碱的舒张反应,改善DM导致的血管内皮功能损害。有学者[14]发现,HO-1的表达能抑制烟酰胺腺嘌呤二核苷酸基磷酸盐(NADPH)氧化酶的活性,减少过氧化物的形成,减轻氧化应激损伤。有研究[15]证实,姜黄素通过提高阴茎海绵体内HO-1的活性、增加cGMP的含量和阴茎海绵体内压,调节大鼠的勃起功能。

HO-2与HO-1具有共同的生物学作用,为结构型酶,其表达基本不被诱导。内源性的CO主要由HO-2催化生成。NO/GC/cGMP信号通路在勃起功能中的作用已被公认。CO是与NO类似的气体分子,在体内有和NO相似的生物学活性,CO可通过活化鸟苷酸环化酶(GC)刺激cGMP的生成,起到舒张阴茎海绵体平滑肌的作用,在勃起功能中有重要作用[8,9]。HO-2基因缺陷的动物,DM 相关氧化应激水平增加,对局部组织或器官结构和功能造成损害[16]。HO-2的表达下降,使胆绿(红)素等有抗氧化活性的内源性物质生成减少,氧化应激水平失衡;且CO生成减少,阴茎海绵体平滑肌结构受损及舒张功能受限,不利于阴茎的正常勃起。有研究[17]认为,慢性肾衰大鼠勃起功能受损可能与阴茎海绵体中HO-2的表达降低有关。

本研究发现,HO-1、HO-2主要表达于大鼠阴茎海绵体平滑肌细胞和血管内皮细胞胞质中。与正常对照大鼠,单纯DM大鼠和DM-ED大鼠阴茎海绵体组织中HO-1表达均增加,HO-2的表达均降低;而与单纯DM大鼠相比,DM-ED大鼠HO-1、HO-2的表达均降低。我们认为,DM大鼠在高血糖的应激状态下氧化应激水平增加,适应性诱导HO-1的表达增加,氧化应激对平滑肌和血管内皮的损伤使HO-2的表达降低;上调的HO-1可增强局部的抗氧化能力,对机体有保护作用,单纯DM大鼠HO-1代偿能力较强,且HO-2的表达下降不明显,能对抗氧化应激造成的损害,维持正常的勃起功能;与单纯DM大鼠相比,DM-ED大鼠HO-1的代偿增加不足,HO-2表达又进一步降低,局部抗氧化能力显著下降;且HO表达降低导致CO生成减少,进而cGMP的生成量也减少,阴茎海绵体平滑肌的结构受损和舒张功能受限,不利于勃起机制的发生,最终形成ED。

综上所述,DM-ED大鼠阴茎海绵体组织中HO-1表达代偿不足、HO-2表达明显下调;HO-1、HO-2可能参与DM-ED的发生发展,其具体机制仍待进一步研究。

[1]Abdel AMT,Mostafa T,Atta H,et al.Oral phosphodiesterase-5 inhibitors:effect of heme oxygenase inhibition on cGMP signalling in rat cavernous tissue[J].Andrologia,2007,39(2):66-70.

[2]郭玉刚,秦文波,宋文君,等.内源性一氧化碳对离体犬阴茎海绵体平滑肌的作用[J].中华男科学杂志,2006,12(8):685-688.

[3]Ryter SW,Otterbein LE,Morse D,etal.Heme oxygenase/carbon monoxide signaling pathways:regulation and functionalsignificance[J].Mol Cell Biochem,2002,234(1-2):249-263.

[4]Chen Y,Li SX,Yao LS,et al.Valsartan treatment reverses erectile dysfunction in diabetic rats[J].Int J Impot Res,2007,19(4):366-370.

[5]Ndisang JF.Role of heme oxygenase in inflammation,insulin-signalling,diabetes and obesity[J].Mediators Inflamm,2010,2010:359732.

[6]Hedlund P,Ny L,Alm P,etal.Cholinergic nerves in human corpus cavernosum and spongiosum contain nitric oxidesynthase and heme oxygenase[J].JUrol,2000,164(3 Pt1):868-875.

[7]Moore CR,Wang R.Pathophysiology and treatment of diabetic erectile dysfunction[J].Asian JAndrol,2006,8(6):675-684.

[8]Jin L,Burnett AL.NADPH oxidase:recentevidence for its role in erectile dysfunction[J].Asian JAndrol,2008,10(1):6-13.

[9]张琪,易婧雅,商学军.活性氧与勃起功能障碍[J].中华男科学杂志,2009,15(12):1124-1127.

[10]姚乐申,李燕,陈赟,等.还原型谷胱甘肽对糖尿病大鼠阴茎海绵体氧化损伤的影响[J].中国男科学杂志,2009,23(10):5-9,17.

[11]Kawakami T,Urakami S,Hirata H,et al.Superoxide dismutase analog(Tempol:4-hydroxy-2,2,6,6-tetramethylpiperidine1-oxyl)treatment restores erectile function in diabetes-induced impotence[J].Int J Impot Res,2009,21(6):348-355.

[12]Choi KM,Gibbons SJ,Nguyen TV,et al.Heme oxygenase-1 protects interstitial cells of Cajal from oxidative stress andreverses diabetic gastroparesis[J].Gastroenterology,2008,135(6):2055-2064.

[13]Turkseven S,Kruger A,Mingone CJ,et al.Antioxidantmechanism of heme oxygenase-1 involves an increase in superoxidedismutase and catalase in experimental diabetes[J].Am J Physiol Heart Circ Physiol,2005,289(2):701-707.

[14]Han Y,Platonov AG,Mia A,et al.Tissue-specific changes in heme oxygenase activity and level of nonprotein thiolsin C57Bl/6 mice afterwhole-body gamma-irradiation[J].Bull Exp Biol Med,2005,140(3):341-344.

[15]Abdel AMT,El AMF,Rezq A,et al.Novel water-soluble curcumin derivativemediating erectile signaling[J].JSex Med,2010,7(8):2714-2722.

[16]Abdel AMT,Mostafa T,Atta H,et al.Putative role of carbon monoxide signaling pathway in penile erectile function[J].J Sex Med,2009,6(1):49-60.

[17]Goodman AI,Chander PN,Rezzani R,et al.Heme oxygenase-2 deficiency contributes to diabetes-mediated increase insuperoxide anion and renal dysfunction[J].J Am Soc Nephrol,2006,17(4):1073-1081.

[18]王潇然,姜睿.血红素氧合酶2在慢性肾衰大鼠阴茎海绵体中的表达[J].中华男科学杂志,2008,14(5):401-405.

猜你喜欢

海绵体阴茎平滑肌
原发性肾上腺平滑肌肉瘤1例
喉血管平滑肌瘤一例
阴茎海绵体静脉漏的造影表现分析
尿道海绵体非离断尿道吻合术在骨盆骨折引起后尿道狭窄中的初步应用
枸杞多糖对糖尿病大鼠阴茎海绵体氧化应激损伤的保护作用
肠系膜巨大平滑肌瘤1例并文献回顾
高压电致胸壁洞穿性损伤伴阴茎伤救治1例
阴茎根部完全离断再植成功1例报告
阴茎不全离断再植1例
咽旁巨大平滑肌肉瘤一例MRI表现