血管内皮生长因子与糖尿病肾病研究进展
2011-08-15魏晓燕浙江中医药大学杭州310053
魏晓燕 黄 平 浙江中医药大学 杭州 310053
目前认为,多种因素参与了糖尿病肾病(DN)的发生发展,血管内皮生长因子(VEGF)是近年来研究的一个热点。VEGF又称血管通透因子,是血管内皮细胞特异性的丝裂原,有促进内皮细胞增生迁移、增加内皮细胞通透性、改变细胞外基质、促进血管生成和维持等作用,与DN的发生发展密切相关。现就两者的研究进展综述如下。
1 VEGF及其受体概述
VEGF 家族包括 VEGF-A、VEGF-B、VEGF-C、VEGF-D、VEGF-E 和胎盘生长因子(PIGF),通常情况下VEGF即指VEGF-A。VEGF是一种与血管内皮细胞特异性结合的肝素结合型二聚体糖蛋白,分子量34~46KD。人基因位于染色体的 6p21.3,全长 28kb,其编码基因长14kb,由8个外显子和7个内含子构成。目前已知 6 种 VEGF 亚型:VEGF121、VEGF145、VEGF165、VEGF183、VEGF189及VEGF206。其生物学效应通过与相应受体(VEGFR)结合而实现。
VEGFR包括:VEGFR-1即fms-样酪氨酸激酶(Flt-1),VEGFR-2 即含激酶插入区受体(KDR)、VEGFR-3,以及神经纤毛蛋白-1(NRP-1)和神经纤毛蛋白-2(NRP-2)。另外,VEGFR-2 和 VEGFR-3 在鼠类中的同源产物分别是Flk-1和Flk-4。VEGFR-1是最早发现的受体,与VEGF结合可促进内皮细胞迁移,但对内皮增生无影响;VEGFR-2是主要功能受体,可诱导内皮细胞增生和血管生成,在结构上,VEGFR-1和VEGFR-2皆属于酪氨酸激酶型受体,由含7个免疫球蛋白样结构的细胞外区、跨膜区及胞内的酪氨酸激酶区组成;VEGFR-3位于5号染色体,编码1298个氨基酸。NRP-1与NRP-2属于非酪氨酸蛋白激酶家族,是VEGF165的特异性受体,表达于血管内皮细胞、神经元及某些肿瘤细胞。NRP-1单独存在时无生物学活性,但可促进VEGF165与VEGFR-2结合,且能增强VEGF165介导的趋化性;NRP-2还可增强VEGF145的作用,参与血管发育。
2 VEGF在正常肾脏中的表达及作用
在人类肾脏中,生理状态下VEGF的表达主要位于足细胞,集合管上皮细胞也可表达,而内皮细胞和系膜细胞则无表达。但在血管紧张素Ⅱ(AngⅡ)、胰岛素样生长因子(IGF-1)或其他生长因子刺激下系膜细胞也可以表达。另一方面,内皮细胞和系膜细胞上存在VEGFR。近年研究表明,足细胞也可表达VEGFR,其分泌的VEGF除了以旁分泌的方式作用于内皮细胞和基膜外,还以自分泌的方式作用于自身。
VEGF具有促进血管内皮细胞增殖、血管生成及维持的功能,在肾脏发育与血管生成尤其是肾小球形成中起着重要作用,是肾组织形成的基本因子,尤其是肾小球的形成。肾脏发育过程中,足细胞分泌的VEGF与内皮细胞表达的VEGFR-1结合,指导内皮细胞发育成肾小球。集合管上皮细胞分泌的VEGF与皮、髓质肾小管周毛细血管内皮细胞上的VEGFR结合,促使肾小管周毛细血管发生。
足细胞分泌的VEGF还可通过自分泌方式调节自身钙离子平衡,降低细胞毒性,提高存活率。足细胞附着于肾小球基底膜(GBM)外侧,与足突之间的裂孔隔膜共同构成肾小球滤过屏障的最外层。因此,VEGF对维持GBM的完整性及正常功能也有重要作用。另外,集合管上皮分泌的VEGF与肾小管周毛细血管的VEGFR结合,可能通过改变通透性,进而影响肾髓质的渗透压梯度。
3 VEGF与DN
阚春婷等[1]检测链脲佐菌素(STZ)诱导的DM大鼠,发现其肾皮质VEGF蛋白及mRNA表达均较正常组明显升高。Cha等[2]观察血肌酐低于176.8μmol/L的2型DM患者,发现血和尿中VEGF水平均随尿蛋白的增加而增加。而在DN晚期出现严重系膜硬化和弥漫性肾小球硬化时,VEGF表达明显下调或消失。因此,DN时肾脏VEGF的表达与其病情进展、蛋白尿程度及肾功能损害度等紧密关联。
3.1DN中VEGF的调控
3.1.1 缺氧与VEGF 缺氧是VEGF的最强刺激因子,周次利等[3]证明缺氧是引起VEGF表达上调的主要原因。高糖可直接致红细胞内血红蛋白糖化增加、2,3-二磷酸甘油酸(2,3-DPG)产生减少以及血红蛋白与氧的结合力增强,引起组织缺氧。王洁敏等[4]培养大鼠肾成纤维细胞(NRK细胞),发现缺氧条件下其VEGF蛋白含量明显升高,并呈剂量依赖性。但其具体作用机制目前尚不明确,可能是缺氧状态下VEGFmRNA自身稳定性的增加促进了VEGF的表达,也可能因为低氧诱导因子-1(HIF-1)的形成,它与VEGF基因5’上游区28个碱基对的促进子结合,促进VEGF转录增加。
3.1.2 高糖与VEGF 高糖可通过直接激活蛋白激酶C(PKC),使一定的转录因子磷酸化增加VEGF基因转录,从而增加肾小球系膜细胞VEGF的表达。实验发现,高糖培养介质中的大鼠系膜细胞可通过PKC依赖机制暂时增加VEGFmRNA表达和蛋白合成,且其表达程度跟血糖浓度呈正相关。而PKC抑制剂或下调剂则可阻断高糖引起的VEGF合成增加[2,5]。体外培养足突细胞也发现高糖可通过PKC、细胞外信号调节激酶(ERK)介导的PKC-ERK机制促进足突细胞VEGFmRNA及蛋白的表达[6]。Kim等[7]培养肾小管上皮细胞证实高糖可迅速上调VEGF表达,且对其可溶性受体Flt-1无任何影响。
3.1.3 晚期糖基化终末产物(AGEs)及其受体(RAGE)与VEGF DN中,高糖和氧化应激反应均可导致AGEs的蓄积,它在肾脏的沉积是DN病理改变的原因之一。在AGEs中培养系膜细胞,VEGFmRNA表达增加,VEGF蛋白产量也相应增多[6]。研究表明,AGEs促进VEGF表达依赖于ERK途径,AGEs通过ERK机制促进低氧诱导因子-1α(HIF-1α)的表达、积聚,进而激活HIF-1以促进VEGF的表达,同时AGEs与胰岛素对VEGFmRNA的表达有协同作用。
RAGE是AGEs的特异性受体,与其结合后,激活多种信号通路,诱导细胞功能紊乱。DN时AGEs增加,足细胞RAGE活力增强可引起VEGF表达增多。Wendt等[8]发现DM小鼠的足细胞RAGE表达增多时VEGF表达也增多;使用RAGE抑制剂阻断RAGE后,VEGF表达也降低。因此推测,RAGE可能促进了VEGF的表达增多。
3.1.4 AngⅡ与VEGF AngⅡ可通过激活AngⅠ和AngⅡ受体,增加二酰基甘油(DAG)水平,活化蛋白激酶β亚型促进VEGF基因表达,刺激肾小球系膜细胞合成和分泌VEGF。Kang等[9]发现AngⅡ能够刺激足细胞合成VEGF。另有1型DM大鼠的研究表明,实验第4周时VEGF、AngⅡ蛋白和mRNA表达均上调,第8周时其表达水平仍较正常组上调[10]。唐万欣等[11]将DN大鼠分为DN组、缬沙坦干预组和对照组,结果显示,缬沙坦干预组相对DN组而言,肾小球肥大较轻,尿白蛋白排泄也较少,同时,肾脏VEGF与Flk-1mRNA和蛋白表达虽有上调,但与DN组相比仍显著降低。说明AngⅡ受体拮抗剂缬沙坦能抑制VEGF及受体Flk-1的异常表达,减轻DN病变。AngⅡ能促进血管成熟与稳定,并维持血管的完整性,可增加毛细血管管径、重建基膜、促进内皮细胞增生与迁移,刺激新生血管出芽,可协同VEGF共同参与血管形成和维持。
总之,DN相关因素如高糖、缺氧、AGEs、RAGE、胰岛素、AngⅡ、机械牵拉等均可影响VEGF的表达。
3.2 DN与VEGF
3.2.1 VEGF与DN蛋白尿 蛋白尿是DN早期的主要症状之一。VEGF在蛋白尿形成中可能的作用机制:VEGF可直接引起血浆外渗,还可增强血管通透性,且其所致的通透性增加伴随着内皮细胞形态改变,如质膜囊泡和囊泡状小体的形成和聚集等;它们可能通过影响细胞信号转导、胞间转运(内吞或内饮作用)、组织因子的调节影响蛋白尿形成;VEGF还能诱导内皮细胞金属蛋白酶、间质胶原酶表达,增加纤溶酶原激活物、尿激酶型纤溶酶原激活物、组织型纤溶酶原激活物的表达和活性,使毛细血管基底膜蛋白分解,有利于蛋白滤过。
Hoshi等[12]研究高糖导致的足细胞损伤与蛋白尿、肾小球硬化的关系时,发现在DN最早期肾小球滤过率增加时就伴随着蛋白尿,而损伤的足细胞会大量释放胞内储存的VEGF,使肾小球滤过膜通透性增加,导致滤过率增高,最终导致蛋白尿的发生。叶仁群等[13]观察早期DN患者发现其血清VEGF及受体Flt-1的蛋白与24h尿蛋白水平呈正相关(P<0.05),提示VEGF及受体Flt-1参与了微血管的病变,其异常的表达可能加重了微血管的渗漏和尿蛋白的漏出,从而导致肾的损伤。
3.2.2 VEGF与肾脏肥大及硬化 DN的特征性病理变化是肾小球、肾小管肥大和GBM增厚、肾动脉硬化以及肾间质纤维化。DN中,VEGF与系膜细胞表面的VEGFR结合,活化细胞内丝裂原活化蛋白激酶信号传递系统,可促进系膜细胞合成胶原,导致肾脏肥大。同时,VEGF还可改善肾小球毛细血管内皮功能,增加血管通透性,血浆中的蛋白、单核细胞、细胞因子和生长因子,如转化生长因子(TGF-β)等可从血浆中滤出,沉积于肾小球系膜区,刺激肾脏肥大,产生毒性反应,最终导致肾小球硬化。此外,VEGF还可导致肾小球内的单核巨噬细胞迁移/活性增加,系膜细胞活化,转化生长因子-β1产生增加,促进肾小球硬化。Senthil等[14]发现STZ诱导的1型DM大鼠和db/db自发性2型DM大鼠肾脏皮质中,VEGF的表达显著高于正常对照组,且VEGF明显诱导其远端肾小管上皮细胞肥大,同时促进蛋白合成。从而表明,VEGF介导了DN早期肾小球和肾小管的肥大。3.2.3 VEGF与新生血管的生成与维持 就目前所知,VEGF是选择性最强的血管内皮细胞促有丝分裂剂。另外,VEGF还可刺激内皮细胞产生NO,并使其浓度呈剂量依赖性增加,起到血管维持作用。Min[15]等对DN患者用计算机三维图像进行分析,发现肾小球有新生血管形成。Ichinose等[16]也发现2型DM db/db小鼠肾脏中存在内皮细胞数目增加及肾小球毛细血管生长。
4 展望
综上所述,肾脏微血管变化对进行性肾脏疾病的进程有着很大的影响,而VEGF在调节肾脏微血管变化中起了重要的作用,极有可能参与了DN复杂病理过程的某一环节。因此及早控制DM的一些相关因素,如高糖、缺氧等,或者针对性地对高表达的VEGF进行拮抗性干预均有望降低DN患者的VEGF水平,保护应激下的内皮细胞,刺激血管生成,稳定肾功能,修复肾脏病理改变,减少DN发生,减缓DN进展。关于VEGF的研究较多,但VEGF阻断药何时真正应用于临床治疗DN还不确定,如何发挥其抗VEGF的治疗作用,避免其过度抑制血管自我修复,及阻断VEGF途径后机体的代偿机制等还有待研究。目前,治疗DN的理想方法还在研究中,抗VEGF能否引领DN的治疗迈入一个新时代值得期待。
[1]阚春婷,吴晨光,张明,等.吡格列酮对糖尿病大鼠肾皮质血管内皮生长因子表达的影响[J].江苏大学学报(医学版),2009,19(2):143-156.
[2]Cha DR,Kim NH,Yoon JW,et al.Role of vascular endothelial growth factor in diabetic nephropathy[J].Kidney Int,2000,58(77):104-112.
[3]周次利,陈邦国,毛庆菊,等.电针对局灶性脑缺血再灌注大鼠脑内血管内皮生长因子及内皮抑素的影响[J].湖北中医杂志,2007,29(5):8-9.
[4]王洁敏,李竞.缺氧对体外培养的大鼠肾成纤维细胞PEDF和 VEGF表达的影响[J].西北国防医学杂志,2009,30(1):14-17.
[5]Kim NH,Jung HH,Cha DR,et al.Expression of vascular endothelial growth factor in response to high glucose in rat mesangial cells[J].J Endocrinol,2000,165(3):617-624.
[6]Yamagishi S,Inagaki Y,Okamoto T,et al.Advanced glycation end product-induced apoptosis and overexpression of vascular endothelial growth factor and monocyte chemoattractant protein-1 in human-cultured mesangial cells[J].J Biol Chem,2002,277(23):20309-20315.
[7]Kim NH,Oh JH,Seo JA,et al.Vascular endothelial growth factor(VEGF) and soluble VEGF receptor Flt-1 in diabetic nephropathy[J].Kidney Int,2005,67(1):167-177.
[8]Wendt TM,Tanji N,Guo J,et al.RAGE drives the development of glomerulosclerosis and implicates podocyte activation in the pathogenesis of diabetic nephropathy[J].Am J Pathol,2003,162(4):1123-1137.
[9]Kang YS,Park YG,Kim BK,et al.AngiotensinⅡstimulates the synthesis ofvascular endothelialgrowth factor through the p38mitogen activated protein kinase pathway in cultured mouse podocytes[J].J Mol Endocrinol,2006,36(2):377-388.
[10]Rizkalla B,Forbes JM,Cao Z,et al.Temporal renal expression of angiogenic growth factors and their receptors in experi mental 1 diabetes:role of the rennin-angiotensin system[J].J Hypertens,2005,23(1):153-164.
[11]唐万欣,陈泽君,黄颂敏,等.缬沙坦对糖尿病鼠肾血管内皮生长因子及其受体Flk-1的影响[J].四川大学学报(医学版),2008,39(2):223-226.
[12]Hoshi S,Shu Y,Yoshida F,et al.Podocyte injury promotes progressive nephropathy in zucker diabetic fatty rats[J].Lab Invest,2002,82(1):25-35.
[13]叶仁群,谢嘉嘉,林国彬,等.补阳还五汤对早期糖尿病肾病患者血管内皮生长因子及其受体Flt-1的影响[J].中国中西医结合肾病杂志,2009,10(2):137-139.
[14]Senthil D,Choudhury GG,McLaurin C,et al.Vascular endothelial growth factor induces protein synthesis in renal epithelial cells:a poten-tial role in diabetic nephropathy[J].Kidney Int,2003,64(2):468-479.
[15]Min W,Yamanaka N.Three-dimensional analysis of increased vasculature around the glomerular vascular pole in diabetic nephropathy[J].Virchows Arch A Pathol Anat Histopathol,1993,423(3):201-207.
[16]Ichinose K,Maeshima,Yamamoto Y,et al.2-(8-hydroxy-6-methoxy-1-oxo-1h-2-benzopyran-3-yl)propionic acid,an inhibitor of angiogenesis,ameliorates renal alterations in obese type 2 diabetic mice[J].Diabetes,2006,55(5):1232-1242.