仿刺参不同部位ACE 抑制活性分析及活性肽制备工艺优化

2024-05-12王扬铎苏永昌王晓燕施文正刘智禹

食品工业科技 2024年10期

王扬铎，苏永昌，王晓燕，施文正，刘智禹,*

（1.上海海洋大学食品学院，上海 202206；2.福建水产研究所，福建省海洋生物增养殖与高值化利用重点实验室，福建厦门 361013）

血管紧张素转换酶抑制剂（Angiotensin converting enzyme inhibitors，ACEI）通过抑制人体组织中血管紧张素转换酶（Angiotensin converting enzyme，ACE）的活性，从而阻碍血管收缩剂（血管紧张素Ⅱ，AngⅡ）的生成以及血管舒张剂（舒缓激肽，Bradykinin）的失活，起到调节人体血压，发挥心血管保护作用。目前制备食源性蛋白的ACE 抑制肽（Angiotensin converting enzyme inhibitors peptide，ACEIP）具有更高的安全性、专一性并且无副作用，更易被人体吸收，已成为当下预防和治疗高血压非药物策略的一种非常有效的手段[1]。其中蛋白资源丰富的海洋生物由于其生存环境的特殊性，在生物代谢过程中积累了具有特殊化学结构及功能活性的物质，相比陆生动植物蛋白具有更大的优势与特性，因此海洋源蛋白ACE 抑制肽成为该领域研究的热点之一[2]。

仿刺参（Apostichopus japonicus），属棘皮动物门（Echinodermata）海参纲的无脊椎海洋生物。作为消费市场上主要的食用海参之一，仿刺参的可食用部位除体壁外，还包括副产物肠与卵等，据此山东沿海也有“一花（精或卵）二肠三滚子（体壁）”的说法。而在我国多数区域被剔除的副产物大多被直接丢弃或用作饲料，造成环境污染和资源的浪费，副产物的有效合理利用将解决此类问题，提高仿刺参应用的附加值。仿刺参各部位营养成分丰富并表现出许多生物活性功能，包括抗氧化[3]、抗凝血、抗肿瘤[4]、抗衰老[5]等作用，并被用于制造功能性食品、药品、护肤品[6]。

目前关于仿刺参降压肽的来源主要集中在体壁，副产物性腺、内脏和水煮液等，只以初加工为主，随着副产物的高附加值逐渐被重视，也有研究表明这些副产物通过蛋白水解，同样能产生具有降压活性的多肽[7-9]。而且关于ACE 抑制肽研究均以其性腺、内脏整体作为主体，缺少精细化的分类和研究，并尚无报道对仿刺参不同部位降压活性进行比较分析，明确其具有较强的活性部位，国内对仿刺参卵降压活性肽的报道也相对较少。

基于仿刺参及其加工副产物的高值化利用，对可食用的仿刺参不同部位（体壁、肠、卵）采用蛋白酶解法进行水解。通过体外ACE 抑制率判断其降血压活性，以此为指标比较筛选出最适蛋白酶及最优抑制活性部位；经单因素实验与响应面试验优化确定活性肽最佳制备条件，测定活性肽分子量分布范围，通过超滤膜分离制备具有较高活性的低聚肽。旨在为仿刺参副产物产业制备ACE 抑制肽的创新研发和副产物资源再利用提供理论依据，为提升仿刺参产业的应用附加值，并为其综合利用开发提供新思路。

1 材料与方法

1.1 材料与仪器

仿刺参购自福建省宁德市霞浦县，均为性成熟的仿刺参原料，其体壁、肠和卵已被处理分拣并通过全程冷链运输至实验室，-20 ℃冷库以保证品质无损。原料进行真空冷冻干燥处理，冻干研磨粉碎后放置0～4 ℃冰箱储存备用；浓盐酸、乙腈、甲醇、硼酸、硼砂、三氟乙酸等均为分析纯，购于国药集团化学试剂有限公司；碱性蛋白酶、中性蛋白酶、胃蛋白酶 200 U/mg，南宁庞博生物工程有限公司；马脲酰组氨酰亮氨酸（Hippuryl-His-Leu，HHL）、血管紧张素转换酶（ACE）美国Sigma 公司；实验用水为超纯水。

BSA224S 分析天平德国赛多利斯；Alpha2-4LDplus 真空冷冻干燥机德国Christ 公司；Five Easy pH 计瑞士梅特勒-托利多公司；数显型恒温水浴锅上海力辰邦西器科技有限公司；Waters e2695 型高效液相色谱仪美国Alliance 公司；Sun Fire C18色谱柱德国Merck 公司；TSKgel G2000 SWXL（300 mm×7.8 mm）凝胶柱日本东曹株式会社；ST16R 型高速冷冻离心机美国Thermo Sorvall 公司；CeraMem-0100 陶瓷膜过滤设备（200 nm陶瓷膜）、RNF-0460 超滤膜浓缩设备（3000 Da 超滤膜）厦门福美科技有限公司。

1.2 实验方法

1.2.1 仿刺参不同部位蛋白酶解物制备分别称取一定质量的仿刺参体壁、肠、卵冻干粉，按照底物浓度2%添加超纯水振荡混匀，恒温水浴预热，调节pH 后加入相应蛋白酶。在适宜温度下水解一定时间，随后立刻置于95～100 ℃的水浴锅中进行钝化灭酶15 min，待自然冷却后4 ℃、4000 r/min 条件下离心15 min，上清液部分即为不同部位的蛋白酶解液，并取部分蛋白酶解液冷冻干燥成粉备用[10]。

1.2.2 水解蛋白酶的筛选分别选用碱性蛋白酶、中性蛋白酶、胃蛋白酶三种具有较大水解pH 差异的蛋白酶作为水解酶。按照底物浓度2%、加酶量3 U/mg、酶解时间5 h 对仿刺参体壁、肠及卵冻干粉在蛋白酶各自最适条件下密封振荡酶解（表1）。通过测定其充分酶解后不同部位稀释10 倍后蛋白酶解液的ACE 抑制率，比较分析以筛选出最适宜的酶源。

表1 不同蛋白酶最适水解条件Table 1 Optimum enzymolysis conditions of different proteases

1.2.3 最优降压活性部位比较筛选分别称取适量经冷冻干燥处理后的仿刺参体壁、肠、卵粉末蛋白酶解物，加入超纯水溶解，将其分别配制成质量浓度为0.1、0.5、1、2、4、8 mg/mL 的6 个梯度，进行3 组平行实验测定计算出各浓度样品的ACE 抑制率。使用GraphPad Prism 8 软件进行非线性曲线拟合分析，计算不同部位ACE 抑制率的半数抑制浓度值（IC50）。通过比较不同浓度下各部位ACE 抑制率大小并结合IC50值验证，筛选出具有较强ACE 抑制效果的仿刺参部位，用作降压组分活性肽的制备工艺优化。

1.2.4 ACE 抑制率测定通过反相高效液相色谱法对蛋白酶解物ACE 抑制活性进行测定，根据相关参考文献[11-12]对测定方法进行优化。

配制pH8.3，浓度为0.1 mol/L 硼酸-硼砂缓冲溶液（含0.3 mol/L NaCl）；将100 mg 粉末状马脲酰组氨酰亮氨酸（HHL）加入46.57 mL 的硼酸-硼砂缓冲溶液，充分溶解后为5 mmol/L HHL 溶液；粉末状0.25 unit 血管紧张素转换酶（ACE）加入5 mL 硼酸-硼砂缓冲溶液充分溶解，即50 mU/mL ACE 溶液。

在2 mL 离心管内加入100 μL HHL 溶液和100 μL 酶解液，置于37 ℃水浴锅中预热10 min，加入50 μL ACE 溶液后，37 ℃恒温水浴锅中反应1 h。待反应完成后，迅速加入200 μL 1 mol/L 盐酸溶液终止反应，通过0.22 μm 水系滤膜的样液注入进样瓶，上机测定各组样液中马尿酸峰面积（μV·s）从而计算马尿酸含量，以超纯水作为空白对照组。

式（1）中，α：空白对照组马尿酸峰面积（μV·s）；β：蛋白酶解液马尿酸峰面积（μV·s）；

检测条件：色谱柱：SunFireC18分析色谱柱（5 μm，4.6 mm×150 mm）；过柱流速：1 mL/min；单样进样体积：10 μL；紫外检测波长228 nm；流动相:乙腈:水（含0.1%三氟乙酸）=32:68（体积比）。

1.2.5 ACE 抑制肽制备工艺优化

1.2.5.1 单因素实验设计在蛋白酶及活性部位筛选的实验结果的基础上，以最适酶源碱性蛋白酶为提取酶，对具有较高降压活性的仿刺参卵进行单因素制备工艺设计。分别对酶解温度、酶解底物浓度、pH、酶解时间、加酶量这5 个因素不同水平进行调整，研究其对体外ACE 抑制率的影响。

1.2.5.2 酶解温度仿刺参卵冻干粉底物浓度为2%，加酶量为3.0 U/mg，pH 调为9.0，分别在40、45、50、55、60、65、70 ℃的酶解温度下进行恒温酶解5 h，以蛋白酶解液ACE 抑制率为指标，探讨温度对蛋白酶酶解效果的影响。

1.2.5.3 酶解pH 在酶解温度为50 ℃，仿刺参卵冻干粉底物浓度为2%，加酶量为3.0 U/mg，酶解时间5 h 前提下，对pH 为7.5、8.0、8.5、9.0、9.5、10.0、10.5 的7 组蛋白酶解液进行ACE 抑制率测定，探讨酶解pH 变化对其酶解效果的影响。

1.2.5.4 底物浓度在酶解温度为50 ℃，加酶量为3.0 U/mg，酶解pH 为9.0，酶解时间5 h 的条件下对5 组不同含量的底物浓度0.5%、1%、2%、3%、4%进行ACE 抑制率测定。

1.2.5.5 酶解时间在仿刺参卵冻干粉底物浓度2%，加酶量3.0 U/mg，pH 为9.0，温度50 ℃条件下，分别测定酶解时间在3、4、5、6、7 h 的ACE 抑制率以确定最适合的酶解时间，通过对其ACE 抑制率的测定分析酶解时间对酶解效果的影响。

1.2.5.6 加酶量仿刺参卵冻干粉底物浓度为2%，pH 为9.0，温度50 ℃，分别在2、2.5、3.0、3.5、4.0 U/mg 的酶添加量情况下酶解5 h，通过ACE 抑制率的变化趋势分析加酶量对酶解效果的影响。

1.2.6 响应面试验设计以单因素实验结果为基础，基于Box-Behnken 响应面设计方法，将时间与加酶量作为固定量。选取对ACE 抑制率有显著影响的3 个因素酶解温度（A）、pH（B）、底物浓度（C）为自变量，并将响应值设为蛋白酶解物ACE 抑制率，应用Design-Expert 8.06 软件进行三因素三水平的响应面优化试验设计。响应面试验因素水平设计见表2。

表2 Box-Behnken 试验因素水平设计Table 2 Factor coding of Box-Behnken experimental design

1.2.7 酶解产物分子量分布测定采用高效凝胶过滤色谱法结合Empower GPC 处理软件对经工艺优化后的仿刺参卵蛋白酶解物进行分子量分布测定[13]。将浓度为1 mg/mL 的5 种不同分子量标准品按一定比例进行混合；将酶解产物冻干粉溶解配制为10 mg/mL 溶液，经0.22 μm 有机相微孔滤膜过滤后上样，得到混合标品及仿刺参卵酶解产物色谱图。以混合标品的分子量对数（lgMw）对其保留时间作图得到标准拟合曲线及三阶回归方程，利用GPC 软件将酶解产物色谱图带入校正曲线方程分析计算得到分子量及多肽分布范围。

所用标准品：细胞色素C（Mw 12384 Da）、抑肽酶（Mw 6512 Da）、杆菌酶（Mw 1423 Da）、Gly-Gly-Tyr-Arg（Mw 451 Da）、Gly-Gly-Gly（Mw 189 Da）。色谱检测条件：色谱柱：TSKgel G2000 SWXL（300 mm×7.8 mm）凝胶柱；过柱流速：1 mL/min；单样进样体积：10 μL；紫外检测波长228 nm；流动相：乙腈:水（含0.1%三氟乙酸）=45:55（体积比）。

1.2.8 超滤膜分离将最佳酶解工艺所得仿刺参卵蛋白酶解液进行超滤分离。首先将经优化后的仿刺参卵酶解液过200 nm 的陶瓷膜对其大颗粒杂质及杂菌进行过滤，后利用相对分子质量孔径为3000 Da的超滤膜对其超滤分级，分为截留液和滤过液（低聚肽）两个组分。真空冷冻干燥得到活性肽粉，将经工艺优化后的酶解液冻干粉与截留液和低聚肽的3 组活性肽粉分别加入超纯水溶解配制成质量浓度为0.25、0.5、1、2、4 mg/mL 的5 个梯度计算出各浓度的ACE 抑制率，并结合IC50值验证分析。

1.3 数据处理

实验测定进行三次重复实验，最终数据以平均值±标准偏差表示；使用SPSS 22.0 软件对各组单因素实验结果进行显著性差异分析；使用Design Expert 8.06 软件对响应面优化试验进行回归性分析；使用Origin 2023 软件对数据进行作图。

2 结果与分析

2.1 不同部位酶解物ACE 抑制活性分析

2.1.1 水解蛋白酶的筛选酶解法由于其操作可控性强、酶切作用位点高效专一、完全蛋白酶解物生物活性较高、反应条件温和且有较少的副产物产生，成为当下蛋白降解最常用方法之一[14]。本研究中采用碱性、中性和胃蛋白酶分别在各自最适的蛋白酶解条件下对仿刺参不同部位进行充分水解，并测定各组ACE 抑制率，比较筛选出最适酶解蛋白酶。如图1 所示，在仿刺参体壁和卵的蛋白酶解物ACE 抑制率测定中，碱性蛋白酶酶解产物的ACE 抑制活性更强，其抑制率分别为79.90%±3.63%、84.32%±0.51%，而胃蛋白酶酶解产物的ACE 抑制活性在两个部位中均为最低。在仿刺参肠的ACE 抑制率测定中，胃蛋白酶酶解产物具有更强的ACE 抑制活性，抑制率最高为71.01%±1.22%，其次为碱性蛋白酶酶解产物，ACE 抑制率为54.21%±0.63%。在全部酶解产物ACE抑制率测定中，抑制率最高为使用碱性蛋白酶酶解的仿刺参卵酶解物，比胃蛋白酶酶解仿刺参肠产物高出约13.31%。有研究指出碱性蛋白酶作用于仿刺参原料的蛋白裂解产物具有较强的ACE 抑制活性，与其特异的酶切位点相关，例如其偏好在碱性氨基酸残基（如精氨酸或赖氨酸）旁边的肽键处进行作用[15]，这种特异性切割特定肽段会导致其肽段数量、氨基酸序列等差异影响其功能活性[16]。分析比较筛选出具有更强ACE 抑制活性的碱性蛋白酶为最适酶源，其有利于仿刺参蛋白的成分提取，更适合作为具有较高活性的降血压活性物质制备的工具酶，有开发利用的潜力。

图1 不同酶源制备仿刺参各部位酶解物的ACE 抑制率Fig.1 ACE inhibition rate of enzymolysis from various parts of A.japonicus by different enzyme sources

2.1.2 最优降压活性部位的比较筛选使用筛选出的碱性蛋白酶，在其最适的酶解条件下分别对不同浓度梯度下的仿刺参体壁、肠和卵进行充分酶解5 h后，测定ACE 抑制率，结果如图2 所示。由图2 可知，三种样品中，仿刺参卵酶解产物在不同浓度均呈现出最高的ACE 抑制率，其次为体壁，与2.1.1 结果一致，随着不同部位酶解产物质量浓度的升高，抑制率也随即升高，呈正相关。其中仿刺参卵酶解产物质量浓度在8 mg/mL 时，其ACE 抑制率达到最高为91.63%±0.21%。

图2 仿刺参不同部位酶解物的ACE 抑制率Fig.2 ACE inhibition rate of enzymolysis from different parts of A.japonicus

IC50值是通过对原始质量浓度数据转换为对数形式绘制曲线，并由此曲线进行拟合计算得出的[17]，常被用于评价药物诱导凋亡的能力，即抑制能力越强，其数值越低，因此常被用于药物作用的科学评价。图3 为仿刺参不同部位酶解物ACE 抑制率的IC50值测定结果，由图3 可知，仿刺参体壁、肠、卵酶解物ACE 抑制率的IC50值分别为1.11±0.04、4.02±0.09、0.65±0.02 mg/mL，数值较小的仿刺参卵蛋白酶解物具有最好的ACE 抑制效果，降压效果由高到低依次为卵＞体壁＞肠。比较证明仿刺参副产物卵相比于体壁与肠来说具有更好的降压活性，具有潜在蛋白及活性物质的开发价值，可用于降血压功能性食品或药品的开发。

图3 仿刺参不同部位ACE 抑制率的IC50 值测定Fig.3 Determination of IC50 values of ACE inhibition rates in different parts of A.japonicus

2.2 单因素实验结果

2.2.1 酶解温度对ACE 抑制率的影响由图4 可知，酶解温度对仿刺参卵酶解液的ACE 抑制率具有显著（P＜0.05）影响。测定7 组不同温度下酶解物的ACE 抑制率，结果表明，随着温度的上升，ACE 抑制率不断增加，其中50～55 ℃时ACE 抑制率上升速度减缓；随后随着温度上升，抑制率迅速增加并在65 ℃时达到最高值78.75%±1.10%，升高至70 ℃呈现下降趋势。在蛋白酶的适宜酶解温度范围内，温度的升高促使蛋白酶活力增强，加速酶解反应并让活性肽片段被更好地释放。但当酶解温度过高并超过其最适范围会导致酶逐渐失活，从而使酶解液抑制活性迅速降低[18]。综上，确定其最佳酶解温度为65 ℃，选取温度60、65、70 ℃进行响应面优化设计。

图4 温度对蛋白酶解液ACE 抑制率影响Fig.4 Effects of temperature on ACE inhibition rate of protease hydrolysate

2.2.2 pH 对ACE 抑制率的影响相对于蛋白酶最适作用范围下的pH，较高或较低都将对蛋白酶和样品底物的解离状态造成不同程度的负向影响，同时会对蛋白酶空间结构造成破坏，导致酶特异性切割位点改变，使ACE 抑制活性降低[10,19]。由图5 可知，蛋白酶解液pH 范围在7.5～9.0 时，抑制活性逐渐增强并在pH9 时达到最高值69.28%±0.28%，随后逐渐降低。因此，确定pH9 为蛋白酶较合适的酶解pH，选取pH8.5、9、9.5 作为后续响应面优化设计条件。

图5 pH 对蛋白酶解液ACE 抑制率影响Fig.5 Effects of pH on ACE inhibition rate of protease hydrolysate

2.2.3 底物浓度对ACE 抑制率的影响由图6 可知，底物浓度对ACE 抑制率具有显著影响并且不同浓度间均存在显著差异（P＜0.05）。蛋白酶解液ACE抑制率随着底物浓度的不断增加呈现先迅速升高后缓慢下降的趋势，在底物浓度为3%时具有最高的ACE 抑制率78.10%±0.32%。这可能与其水解度有关，当底物浓度较低，反应物含量少，即使完全水解酶解液中游离氨基酸及多肽的含量也相对较低，较低水解度导致ACE 抑制率也较低；随底物浓度增加，酶解过程中大量底物蛋白与蛋白酶可以充分接触，水解度升高提高了其反应效率使ACE 抑制率增高[7]；而过高的底物浓度对蛋白酶在样液的自由扩散产生阻碍作用，其流动性减弱导致相同酶解时间下水解度下降，酶解液中多肽含量降低，致使抑制率平稳或下降[20]，这与吴国宏[21]在以水解度为指标对海参卵底物浓度对酶解效果影响的实验结果相似。综上，确定底物浓度为3%为蛋白酶的最适浓度，选取2%、3%、4%三个浓度作为后续响应面优化设计条件。

图6 底物浓度对蛋白酶解液ACE 抑制率影响Fig.6 Effects of substrate concentration on ACE inhibition rate of protease hydrolysate

2.2.4 酶解时间对ACE 抑制率的影响如图7 所示，酶解时间的改变对抑制率的影响相比其他因素较弱。酶解液的ACE 抑制率随时间的增长先稳定升高随后缓慢下降，酶解5 h，抑制率达到最高值71.78%±0.18%，并逐渐下降，与第6 h 的抑制率（71.01%±0.10%）相比无显著性差异（P＞0.05）。推测是由于过长的酶解时间造成酶解程度达到极限，导致对多肽的过度降解，生成大量肽链过短的抑制肽或游离氨基酸，对其氨基酸组成及构象造成破坏，丢失了发挥相关作用的活性位点，使ACE 抑制率下降[22]。综上所述，将酶解时间作为响应面优化设计固定量，为了节约消耗、降低成本，选取5 h 为蛋白酶解的最适酶解时间。

图7 时间对蛋白酶解液ACE 抑制率影响Fig.7 Effects of time on ACE inhibition rate of protease hydrolysate

2.2.5 加酶量对ACE 抑制率的影响图8 为加酶量对蛋白酶解液ACE 抑制率的影响，加酶量在2.0～2.5 U/mg 时，ACE 抑制率并无显著变化，随加酶量的增加呈上升趋势，加酶量3.5 U/mg 时，达到最大值69.12%±0.27%，此时相对于其他加酶量都具有显著差异（P＜0.05），当加酶量超过3.5 U/mg，其抑制率开始下降。推测原因为加入蛋白酶的过量致使加大酶解液中活性肽水解程度，生成的高活性ACE 抑制肽被继续水解丧失其活性导致ACE 抑制率下降[23]。而不同加酶量之间对抑制率的影响程度较小，所以选择加酶量作为响应面优化设计固定量，选取3.5 U/mg 作为进一步优化酶解的条件。

图8 加酶量对蛋白酶解液ACE 抑制率影响Fig.8 Effects of enzyme addition on ACE inhibition rate of protease hydrolysate

2.3 蛋白酶解工艺响应面试验

2.3.1 Box-Behnken 实验设计及结果根据2.2 中单因素实验结果，以酶解时间（5 h）和加酶量（3.5 U/mg）为固定量，将酶解温度（A）、pH（B）、底物浓度（C）三个对ACE 抑制率具有显著影响的因素设定为自变量，ACE 抑制率设定为响应值，结合Box-Behnken 的中心复合设计原理进行3 因素3 水平响应面试验。优化试验设计17 组实验点，实验方案及结果如表3 所示。

表3 Box-Behnken 设计方案及ACE 抑制率的测定结果Table 3 Box Behnken design and determination of ACE inhibitory activity

2.3.2 模型建立及方差分析对数学模型进行建立，结合Design-Expert 8.06 软件对2.3.1 数据结果多元拟合分析后，得到回归方程：Y=79.74-0.18A+5.15B-0.11C+0.91AB-0.58AC+0.63BC-2.46A2-5.14B2-2.23C2。

对模型做方差分析，结果见表4。该模型F值=40.96，P值＜0.0001（极显著），失拟项P值=0.4657＞0.05（不显著），表明所建立模型达到极显著水平，拟合精度良好，数据可信度高，可用于此优化设计[24]。模型决定系数R2=0.9814，校正系数R2adj=0.9574，R2Pred=0.8530，表明该模型相关性好，预测结果可以用于解释95.74%的实验结果，R2adj和R2Pred（R2adj-R2Pred＜0.2）两数值均较高且差较小，因此能充分说明工艺过程。信噪比C.V.%=1.37＜10%，也说明数据拥有较高的可信度及精密度。底物浓度B 以及二次项A2、B2、C2对响应值的影响都为极显著（P＜0.001），根据F值的大小可判断各因素对实验结果影响程度大小，F值越大表明对结果的影响越大。因此，根据各因素对ACE 抑制率影响进行排序：底物浓度＞酶解温度＞pH。

表4 响应面回归模型方差分析Table 4 Analysis of variance for response surface regression model

2.3.3 交互作用分析根据所建立模型及拟合的回归方程，结合交互影响的3D 立体响应面图和等高线图，分析在固定单一因素同时中心值不变时，其他2 个因素之间的交互作用对仿刺参卵酶解液ACE 抑制率的影响。通过对3D 响应曲面的陡峭程度及等高线形状进行观察使两因素交互作用对响应值的影响程度做出更直观的反应，3D 反应曲面越陡峭，等高线越密集越接近椭圆[25]，表明影响越显著，两因素交互的作用就越强。

图9 为酶解温度（A）、底物浓度（B）、pH（C）三因素两两交互作用对响应值ACE 抑制率影响的3D响应面及等高线图。如图9A 所示，当处于最佳酶解时间，其底物浓度处于较低水平时，反应体系中温度的变化对ACE 抑制率的影响并不显著，当酶解底物浓度水平较高时，随温度的增加，响应值ACE 抑制率呈现先升高随后降低的趋势；固定温度，响应值随底物浓度的增加呈现先升高后缓慢降低或趋于平稳的趋势。底物浓度变化的反应曲面陡峭程度大于酶解温度，表明酶解底物浓度对响应值的影响更为明显。由图9B 可知，当处于最佳底物浓度，响应值随着pH 和酶解温度的同时增加呈现先升高后降低的趋势，反应曲面的陡峭程度相似。由图9C 可知，当处于最佳酶解温度，底物浓度的水平较低时反应体系的pH 对响应值的影响并不显著，底物浓度水平较高时呈现先升高后降低的趋势，固定pH，响应值随底物浓度的增加呈现先升高后缓慢减小或趋于平稳的趋势。根据图9 中各等高线图中椭圆程度的大小结合表4 中交互项AB、AC、BC 的F值大小，对比判断出酶解温度和底物浓度的交互作用相对其他两组对ACE 抑制率的影响更大。

图9 三因素交互作用对ACE 抑制率影响的3D 响应面及等高线图Fig.9 3D response surface and contour map of the effects of three factors interaction on ACE inhibition rate

2.3.4 工艺优化及模型验证通过Design-Expert 8.06 处理分析，仿刺参卵ACE 抑制肽的最佳制备工艺为：酶解温度65.26 ℃、底物浓度3.51%、酶解pH9.02，在此条件下，软件模型预测的ACE 抑制率为81.04%。考虑到实验操作的可控性，将最佳的酶解工艺调整为酶解温度65 ℃、底物浓度3.5%、pH9.0、加酶量3.5 U/mg、酶解时间5 h。在该条件基础上进行3 次重复实验验证，ACE 抑制率为80.65%±0.52%，与模型的预测值高度接近。对工艺优化后蛋白酶解产物的IC50值计算，由图10 所示，经工艺优化后的仿刺参卵酶解产物其IC50值（0.59±0.03 mg/mL）最小，且与未经优化的酶解产物IC50值（0.65±0.02 mg/mL）具有显著性差异（P＜0.05）。证明经工艺优化后其蛋白酶解物ACE 抑制活性具有显著性提升，该回归模型实用性较高并具有高拟合度，可用于对仿刺参卵ACE 抑制肽的制备。

图10 工艺优化前后酶解产物IC50 值Fig.10 IC50 values of enzymatic products before and after process optimization

2.4 工艺优化酶解产物相对分子质量分布测定

通过高效凝胶过滤色谱法测定分子量分布实验中，由于分子量不同的多肽在色谱图中的保留时间不同，因此利用洗脱体积与分子量对数（lgMw）做标准曲线，从而通过GPC 软件计算酶解液中多肽的分子量分布范围[26]。标准线性拟合曲线为Y=0.005X3-0.2364X2+3.4398X-11.758，R2为0.998，混合标准品随洗脱时间的分子量分布色谱图及线性拟合曲线如图11 所示。

图11 混合标准品色谱图及分子量校正曲线Fig.11 Chromatogram and molecular weight correction curve of mixed standard

通过对多肽分子量分布范围测定，不仅能反映出蛋白的水解程度，同时也可作为分离制备高活性多肽的参照条件之一[27]。工艺优化酶解产物采用与混合标品相同的检测条件，测定其分子量分布，色谱图及分子量分布表如图12 和表5 所示。由图可知，酶解产物的出峰时间大多都集中在14～22 min，利用GPC 软件处理数据并结合分子量标准曲线计算得出：酶解产物大部分多肽分子量分布范围为＜3000 Da，占总含量的98.37%，其中1000～3000 Da 占比9.50%，小于1000 Da 占比88.87%，小于200 Da 以下的寡肽、游离氨基酸以及酶解过度的氨基酸残基占比25.45%。结果表明，经过工艺优化后，酶解产物水解较充分，蛋白大分子大多被水解为1000 Da 以下易被肠道吸收的小分子肽，目前已知并被证明活性的ACE 抑制肽大部分为分子量较小的短肽[28]。该结果为超滤膜分离选择组分提供了数据支撑。

图12 酶解产物色谱图Fig.12 Chromatogram of enzymatic hydrolysis product

表5 酶解产物分子量分布Table 5 Molecular weight distribution

2.5 超滤膜分离

超滤技术是以相对分子质量大小为条件，通过采用不同孔径的超滤膜，依靠滤膜前后不同压力分离不同组分的膜分离技术[29]。为确定ACE 抑制肽的作用效果与其分子量相关性，制备较高活性的ACE 抑制肽，根据酶解产物分子量分布测定结果，采用截留量为3000 Da 超滤膜将仿刺参卵酶解液分为2 个组分，即截留液和滤过液组分，并在同一浓度梯度下与经优化工艺后制备的酶解产物进行比较分析。图13 为同一浓度梯度下工艺优化酶解产物及超滤组分的ACE 抑制率，由图13 可知，三个不同组分的ACE 抑制率与其浓度均呈现正相关，且低聚肽组分的ACE 抑制率在各浓度都高于其他两组分。图14 为各组分ACE 抑制率的IC50值，低聚肽组分ACE 抑制率的IC50值（0.30±0.03 mg/mL）最小，拥有较强的ACE 抑制活性，且显著（P＜0.05）强于截留液组分（IC50=1.17±0.03 mg/mL）及经工艺优化后的酶解产物组分（IC50=0.59±0.03 mg/mL）。目前已知被证明活性的ACE 抑制肽中大部分为分子量较小的短肽[30]。李文欣等[7]发现，海参性腺酶解物超滤后分子量较低的组分ACE 抑制活性（IC50=1.37 mg/mL）同样显著强于其他组分。因此，具有ACE 抑制活性的蛋白多肽多数集中于低聚肽组分中，并且超滤技术有助于对低分子量多肽的富集并提高酶解物的ACE 抑制活性，可用作分离纯化制备较高活性单体肽。

图13 不同浓度酶解物及超滤组分的ACE 抑制率Fig.13 ACE inhibitory activities of enzymatic hydrolysates and ultrafiltration components at different concentrations

图14 酶解物及超滤组分ACE 抑制活性的IC50 值Fig.14 IC50 values of ACE inhibitory activities of enzymatic hydrolysates and ultrafiltration components

3 结论

碱性蛋白酶水解仿刺参不同部位所得蛋白酶解物中，仿刺参卵具有更好的ACE 抑制活性（IC50=0.65±0.02 mg/mL）。以ACE 抑制率为评价指标，通过单因素实验和响应面优化试验，确定最佳的酶解制备工艺为：酶解时间5 h，加酶量3.5 U/mg，酶解温度65.26 ℃，底物浓度3.51%，酶解pH9.02，在该条件下仿刺参卵的ACE 抑制率可达80.65%±0.52%，与预测值接近。酶解产物的分子量分布主要集中在3000 Da 以下，占比98.37%，超滤膜分离所得低聚肽组分拥有较强的ACE 抑制活性（IC50=0.30±0.03 mg/mL），对于经工艺优化后的酶解产物有了显著提升（P＜0.05）。以上研究结果说明了仿刺参卵制备功能活性肽的可行性，对仿刺参副产物的高质化利用与功能活性肽的开发提供理论依据，未来可进一步开展仿刺参卵蛋白高活性单肽的分离制备及作用机制研究等方面的工作。