基于GEO数据库分析水稻低温胁迫关键基因
2024-04-08阮先乐
阮先乐
摘要:为了筛选水稻在低温胁迫下的关键基因,从GEO数据库下载水稻4个数据集中的70个样本。利用在线分析程序GEO2R进行共同差异表达基因分析,并对这些差异表达基因进行GO、KEGG分析,构建蛋白质互作网络,对关键基因构建热图。结果表明,获得共同差异表达基因51个,其中上调表达基因1个,下调表达基因50个。上述基因的GO分析结果表明,其细胞组成主要集中在细胞、细胞要素和细胞器上;在分子功能上,上述基因的功能主要集中在结合、催化活性上;在生物过程中,上述基因的功能主要集中在细胞过程、代谢过程和生物调控上。KEGG信号通路分析结果表明,上述基因主要参与植物激素信号转导等通路。在构建的共同差异表达基因的蛋白质网络中,有29个节点。另外,得到10个关键基因、2个关键子网络。研究结果为进一步研究水稻低温胁迫关键基因奠定了基础,也有利于水稻低温育种。
关键词:水稻;GEO数据库;低温胁迫;共同差异表达基因;GO功能分析;KEGG信号通路分析
中图分类号:S511.01;S126 文献标志码:A
文章编号:1002-1302(2024)03-0061-06
水稻(Oryza sativa L.)起源于热带与亚热带,是低温敏感型作物。低温严重影响了水稻的产量和品质,也限制了水稻向高海拔、高纬度地区扩展[1]。从全球范围来看,目前有24个国家约1 500万hm2的水稻受到低温影响,在亚洲南部、东南部,约700万hm2的土地由于受到低温影响而无法种植水稻[2]。在我国的东北地区,由于纬度较高、温度偏低,每3~5年就会发生1次冷害[3]。因此,培育耐冷水稻品种具有十分重要的现实意义。
植物的耐冷性是多基因效应的,其机理复杂,而利用传统育种方式在改良植物耐冷性方面有限制。如果采用基因工程技术进行作物育种,是提高植物耐冷性比较有效的途径[4]。水稻與低温胁迫相关的基因可以分2类:第1类是功能基因,其编码产物在水稻受到低温胁迫时直接起到保护作用;第2类是调控基因表达的信号因子[5]。闫凌月等研究发现,OsMADS25通过提高水稻在低温胁迫下对活性氧的清除能力,进而提高其对低温的耐受性[6]。Hur等研究发现,水稻中合成脯氨酸的关键基因OsP5CS2对提高水稻的耐冷性十分重要[7]。Li等研究发现,OsTPS1基因的超表达能够提高转基因水稻对干旱、盐和低温胁迫的耐受性[8]。陈能刚等研究发现,在孕穗期、开花期,转异戊烯基转移酶基因(isopentenyl transferase ipt)水稻的相对电导率的变化量和叶绿体受低温的危害较小[9]。张明星构建的OsWRKY63水稻突变体具有较强的耐冷性,为水稻耐冷品种的选育提供了潜在基因资源和中间育种材料[10]。Wang等研究发现,含有OsDREB1F基因的转基因水稻对盐、干旱和低温的耐受性有所提高[11]。另有研究也发现,转录因子MYB、SNAC、TCP、PHD、bZIP与水稻的耐冷性有关[12-16]。
GEO数据库(https://www.ncbi.nlm.nih.gov/geo/)是一个公共功能基因组数据存储库,目前储存了100多个物种的约十亿个基因表达数据,科研人员借助基于WEB的工具,有效地探索、查询和下载这些海量数据,从而更好地分析和设计自己的试验。本研究采用生物信息学技术分析GEO数据库中与水稻低温胁迫相关的一些数据,筛选关键差异基因及其功能、信号通路,以期研究低温胁迫对水稻生长发育影响的分子机制,从而为今后水稻耐冷性育种奠定良好基础。
1 材料与方法
1.1 基因芯片数据的获取与筛选
水稻低温胁迫基因表达谱芯片数据来源于NCBI(https://www.ncbi.nlm.nih.gov/)的GEO数据库。基于对获得的初始数据的分析与试验要求,采用GSE6901、GSE31874、GSE37940和GSE71680共4个数据集,选择其中70个样本进行数据分析(表1)。试验分析时间是2022年10—12月,地点在周口师范学院。
1.2 方法
1.2.1 共同差异表达基因的筛选 首先利用GEO数据库中的在线分析程序GEO2R对不同数据集的处理组、对照组进行分析,并以P<0.05、|log2 FC|≥2作为差异表达基因筛选的标准。然后,利用Evenn(http://www. ehbio.com/test/venn/#/)获得4个数据集的共同差异表达基因。
1.2.2 共同差异表达基因的GO功能分析和KEGG信号通路分析 首先在UniProt数据库(https://www.uniprot.org)中查询各个共同差异表达基因的GO号,然后利用WEGO 2.0(https://wego.genomics.cn/)进行共同差异表达基因的GO功能分析。KEGG信号通路分析利用DAVID(https://david.ncifcrf.gov/home.jsp)、KOBAS (http://kobas.cbi.pku.edu.cn/)2个在线网站。
1.2.3 蛋白互作网络的构建 用STRING(https://cn.string-db.org/)和Cytoscape 3.9.1软件构建共同差异表达基因的蛋白质互作网络关系图,用Cytoscape 3.9.1 Cytohubba插件筛选关键基因,用Cytoscape 3.9.1 MCODE筛选关键子网络。
2 结果与分析
2.1 共同差异表达基因的筛选结果
利用4个数据集的70个样本进行研究分析,按照规定的筛选标准,从GSE6901中获得1 107个基因,从GSE31874中获得2 537个基因,从GSE71680中获得184个基因,从GSE37940中获得498个基因。之后,经Evenn在线分析,获得51个共同差异表达基因 (图1),其中上调表达基因1个,是AK108642,下调表达基因50个(表2)。
2.2 共同差异表达基因的GO功能分析和KEGG信号通路分析
对共同差异表达基因的GO分析结果(图2)表明,细胞组成主要集中在细胞、细胞要素、细胞器上,分别达到41.2%、41.2%、35.3%。在分子功能上,这些基因的功能主要集中在结合、催化活性上,分别达到62.7%、31.4%。在生物过程中,这些基因的功能主要集中在细胞过程、代谢过程、生物调控上,分别达到49.0%、41.2%、39.2%。KEGG信号通路分析结果(表3、图3)表明,这些差异表达基因主要参与植物激素信号转导、植物病原相互作用、类胡萝卜素生物合成、脂肪酸延伸、RNA降解和次生代谢产物的生物合成等通路中。
2.3 共同差异表达基因的蛋白质网络构建与关键基因的筛选
利用STRING数据库与Cytoscape软件对共同差异表达基因构建蛋白质网络,最终得到29个节点 (图4-a)。另外,得到10个关键基因(图4-b)、2个关键子网络(图4-c、图4-d)。这10个关键基因的热图见图5。
3 讨论和结论
本研究基于GPL2025、GPL7344等2个平台上的4个数据集的70个样本进行基因表达数据的分析。最终筛选出共同差异表达基因51个,其中上调表达的基因只有1个,下调表达的基因50个,并用Cytoscape 3.9.1 Cytohubba筛选出10个关键基因。
KEGG信号通路分析结果表明,植物激素信号转导过程是一个主要的信号通路过程。脱落酸(ABA)是植物体内一种多功能植物激素,植物在非生物胁迫下,其体内的ABA含量通常会升高,从而可以增强植物应对干旱、盐、低温等非生物胁迫的能力[17]。一些早期的研究结果表明,内源性ABA的积累是植物对低温胁迫的响应[18-20],另有研究证实,ABA处理能够增强黄瓜、苜蓿的抗寒性[21-22]。在本研究中,植物激素信號转导路径涉及AK107854、AK120087、AK070649等3个基因,这3个基因都与转录因子TIFY有关。几乎所有的OsTIFY基因对干旱、盐度和低温等有一种或多种非生物胁迫有反应[23]。徐佳宁的研究发现,几乎所有苹果MdUPL基因的表达都受到盐、干旱或者低温胁迫的诱导,尤其是MdUPL7、MdUPL9在低温胁迫下表达量显著上调[24]。Ca2+已经被证明是植物冷胁迫的第二信使,而编码CML的基因参与了冷胁迫诱导的Ca2+信号途径[25]。Hu等研究发现,KCS与小麦的耐冷性有关[26]。YLS9(YELLOW-LEAF-SPECIFIC GENE 9)对ABA有响应[27]。在拟南芥CBP60家族成员中,AtCBP60a、AtCBP60g、AtSARD1参与低温诱导的水杨酸的合成[1]。Peres等研究发现,EL2编码了一种新型植物CDK(cyclin-dependent protein kinase)抑制剂,将细胞周期进程与生物、非生物应激反应联系起来,而非生物胁迫如低温和干旱诱导了EL2 mRNA的表达[28]。
GO功能分析结果也表明,这些共同差异基因的功能主要集中在细胞过程、代谢过程和生物调控上。利用Cytoscape 3.9.1-MCODE筛选得到2个关键子网络,这2个关键子网络所涉及的7个基因都属于重点关注的10个关键基因。结合以上分析,在水稻的耐冷育种中,可以重点考虑上面提到的10个关键基因。本研究为水稻的耐冷育种提供了一定的理论依据,奠定了良好的基础。
参考文献:
[1]吉凌霄. OsTIL1和OsCBP60调控水稻苗期耐冷性信号转导机制的研究[D]. 武汉:华中农业大学,2022:1-2.
[2]Pradhan S K,Pandit E,Nayak D K,et al. Genes,pathways and transcription factors involved in seedling stage chilling stress tolerance in indica rice through RNA-Seq analysis[J]. BMC Plant Biology,2019,19(1):352.
[3]王海涛. CHS1调控水稻耐冷性的机制研究[D]. 长春:吉林大学,2022:1-5.
[4]段俊枝,李 莹,周 雷,等. 利用基因工程技术提高水稻耐冷性的研究进展[J]. 浙江农业学报,2015,27(4):705-712.
[5]徐青山,黄 晶,孙爱军,等. 低温影响水稻发育机理及调控途径研究进展[J]. 中国水稻科学,2022,36(2):118-130.
[6]闫凌月,张豪健,郑雨晴,等. 转录因子OsMADS25提高水稻对低温的耐受性[J]. 遗传,202 3(11):1078-1087.
[7]Hur J H,Jung K H,Lee C H,et al. Stress-inducible OsP5CS2 gene is essential for salt and cold tolerance in rice[J]. Plant Science,2004,167(3):417-426.
[8]Li H W,Zang B S,Deng X W,et al. Overexpression of the trehalose-6-phosphate synthase gene OsTPS1 enhances abiotic stress tolerance in rice[J]. Planta,2011,234(5):1007-1018.
[9]陈能刚,余显权,赵德刚,等. 转ipt基因水稻植株耐冷性研究[J]. 西南农业学报,2006,19(2):255-259.
[10]张明星. OsWRKY63调控水稻耐冷性的分子机制研究[D]. 长春:吉林大学,2022:21-48.
[11]Wang Q Y,Guan Y C,Wu Y R,et al. Overexpression of a rice OsDREB1F gene increases salt,drought,and low temperature tolerance in both Arabidopsis and rice[J]. Plant Mol Biol,2008,67(6):589-602.
[12]Yang A,Dai X Y,Zhang W H. A R2R3-type MYB gene,OsMYB2,is involved in salt,cold,and dehydration tolerance in rice[J]. Journal of Experimental Botany,2012,63(7):2541-2556.
[13]Hu H H,You J,Fang Y J,et al. Characterization of transcription factor gene SNAC2 conferring cold and salt tolerance in rice[J]. Plant Mol Biol,2008,67:169-181.
[14]王孙婷. 水稻OsPCF6与OsTCP21基因冷胁迫应答功能研究[D]. 哈尔滨:东北农业大学,2014:37-57.
[15]马 卉. 水稻PHD-finger家族低温诱导基因的鉴定与启动子功能分析[D]. 合肥:安徽农业大学,2014:30-34.
[16]关可兴. 水稻耐冷性相关转录因子OsbZIP32的功能分析[D]. 长春:吉林大学,2015:1-9.
[17]张明菊,朱 莉,夏启中. 植物激素对胁迫反应调控的研究进展[J]. 湖北大学学报(自然科学版),202 3(3):242-253.
[18]Daie J,Campbell W F. Response of tomato plants to stressful temperatures increase on abscisic acid concentrations[J]. Plant Physiol,1981,67(1):26-29.
[19]Eze J M O,Dumbroff E B,Thompson J E.Effects of temperature and moisture stress on the accumulation of abscisic acid in bean[J]. Physiologia Plantarum,1983,58(2):179-183.
[20]Lalk I,Drffling K. Hardening,abscisic acid,proline and freezing resistance in two winter wheat varieties[J]. Physiologia Plantarum,1985,63(3):287-292.
[21]Flores A,Grau A,Laurich F,et al. Effect of new terpenoid analogues of abscisic acid on chilling and freezing resistance[J]. Journal of Plant Physiology,1988,132(3):362-369.
[22]Mohapatra S S,Poole R J,Dhindsa R S.Abscisic acid-regulated gene expression in relation to freezing tolerance in alfalfa[J]. Plant Physiology,1988,87(2):468-473.
[23]Ye H Y,Du H,Tang N,et al. Identification and expression profiling analysis of TIFY family genes involved in stress and phytohormone responses in rice[J]. Plant Mol Biol,2009,71(3):291-305.
[24]徐佳寧. 苹果UPL基因家族及转录组和蛋白质组响应非生物胁迫的研究[D]. 泰安:山东农业大学,2017:42-94.
[25]陈文烨. 小麦钙调素/类钙调素基因的特征分析、克隆及功能研究[D]. 石家庄:河北科技大学,2019:1-2.
[26]Hu X J,Zhang Z B,Fu Z Y,et al. Significance of a β-ketoacyl-CoA synthase gene expression for wheat tolerance to adverse environments[J]. Biologia Plantarum,2010,54(3):575-578.
[27]Divi U K,El-Tahchy A,Vanhercke T,et al. Transcriptional and biochemical responses of monoacylglycerol acyltransferase-mediated oil synthesis and associated senescence-like responses in Nicotiana benthamiana[J]. Frontiers in Plant Science,2014,5:204-216.
[28]Peres A,Churchman M L,Hariharan S,et al. Novel plant-specific cyclin-dependent kinase inhibitors induced by biotic and abiotic stresses[J]. Journal of Biological Chemistry,2007,282(35):25588-25596.