腺苷对肿瘤获得性免疫的抑制作用及干预策略

2023-11-04王龙胜张文欣郑铭铭潘孝汇郭弘洁

浙江大学学报（医学版） 2023年5期

王龙胜，张文欣，张洁，郑铭铭，潘孝汇，郭弘洁，丁玲

浙江大学药学院，浙江杭州 310058

以免疫检查点抑制剂为代表的免疫治疗在多种肿瘤的治疗中已取得了突破性进展，开启了肿瘤治疗的新时代。但仍有很大一部分肿瘤因为肿瘤微环境中没有或仅有少量免疫细胞而对免疫治疗响应性低，成为“冷肿瘤”，从而导致单独使用免疫治疗效果不佳［1-2］。深入探究“冷肿瘤”形成的原因进而采用对应的联合疗法重塑肿瘤微环境是提高免疫治疗效果的重要策略。近年研究表明，肿瘤微环境中极高浓度的腺苷不仅能抑制CTL 的浸润，而且对肿瘤获得性免疫有显著的抑制作用，从而促进了“冷肿瘤”的形成［3-4］。腺苷主要由胞外ATP 在两种腺苷生成酶CD39 和CD73 依次作用下降解生成［5-6］。正常生理条件下腺苷的浓度仅0.05～0.20 µmol/L，其作为ATP 与ADP 的组成部分，调控ATP 与ADP 的水平，在维持细胞的能量平衡和代谢中发挥关键作用［7-8］。而在实体瘤缺氧的肿瘤微环境中，一方面肿瘤细胞会释放出大量ATP，直接导致其降解产物腺苷增多；另一方面，HIF的分泌促进CD39和CD73的转录和表达，可增强ATP 的降解，进一步增加肿瘤微环境中的腺苷浓度，通过以上两个途径，腺苷浓度可升高至1～10 mmol/L［8-11］。

腺苷通过与腺苷受体结合触发信号级联进而发挥免疫抑制功能。目前已知的腺苷受体包括四种G 蛋白偶联受体:A1R、A2aR、A2bR 和A3R，其中A2aR 和A2bR 为免疫细胞主要表达的类型［12］。A2aR 广泛存在于多种免疫细胞中，而A2bR 则主要由巨噬细胞和树突状细胞表达［13］。腺苷与树突状细胞和巨噬细胞上的A2aR/A2bR结合抑制其抗原提呈功能；也与T 淋巴细胞上的A2aR 结合激活cAMP-PKA-CSK 信号通路并抑制趋化因子的分泌，从而抑制T 淋巴细胞的激活和浸润，促进“冷肿瘤”的形成；能够通过外在和内在调节机制诱导效应T细胞的功能耗竭。

基于腺苷对肿瘤获得性免疫的抑制作用，抑制腺苷的生成或阻断腺苷与受体的相互作用有可能改善肿瘤微环境，提高免疫治疗。目前，已有多种抑制腺苷生成或阻断腺苷受体的拮抗剂处于临床前或临床研发阶段。本文根据文献详细阐述了腺苷在调节肿瘤获得性免疫各个阶段的抑制作用及其作用机制，同时阐述了拮抗腺苷肿瘤获得性免疫抑制作用的干预策略。

1 腺苷抑制肿瘤获得性免疫的机制

在肿瘤免疫周期中，腺苷通过与参与肿瘤免疫循环的各种细胞包括肿瘤细胞上的腺苷受体结合，激活腺苷受体进行不同的信号传导，从而发挥免疫抑制作用（图1）。

图1 腺苷对肿瘤微环境中免疫细胞的抑制作用示意图（使用BioRender绘制）Figure 1 Inhibitory effect of adenosine on immune cells in the tumor microenvironment（generated using BioRender）

1.1 抑制肿瘤抗原提呈

树突状细胞捕获肿瘤相关抗原并和共刺激分子（如CD80 和CD86）与抗原形成同源肽-MHC复合物，然后提呈至T 淋巴细胞使其激活。目前很多研究明确了腺苷对树突状细胞的抑制作用，成熟树突状细胞主要表达A2aR 和A2bR，腺苷能激活树突状细胞上的A2aR 和A2bR，提高树突状细胞内cAMP 水平，cAMP 通过PKA-EPAC 信号传导抑制CD86 共刺激信号表达并下调MHC Ⅱ表达，同时EPAC可抑制NF-κB信号通路，导致IL-12和TNF-α等细胞因子分泌减少，IL-6、IL-10、TGF-β和VEGF 等促肿瘤因子产生增加，从而降低树突状细胞的抗原提呈能力［14-16］。同时，腺苷/cAMP信号传导可以靶向PKA-EPAC 途径，将活化的树突状细胞极化为促肿瘤的抑制表型，抑制促炎性细胞因子的产生，从而抑制T 淋巴细胞的活化［17］。腺苷也能抑制具有抗原提呈功能的巨噬细胞。腺苷结合巨噬细胞上的A2bR，抑制CD86共刺激信号和MCH Ⅱ表达，从而抑制巨噬细胞的抗原提呈能力［7］。在路易斯肺癌小鼠模型中，阻断A2bR 能明显增强巨噬细胞的抗原提呈并增加CD8+T细胞反应，进而抑制肿瘤生长［18］。

1.2 抑制T淋巴细胞激活

TCR 识别同源肽-MHC 复合物后，TCR-CD3复合物发生聚集，其胞内区域被酪氨激酶LCK 磷酸化，然后通过基于免疫受体酪氨酸的激活基序磷酸化启动信号传导，导致ZAP-70 与CD3ζ 相互作用，进而激活T 淋巴细胞［19-20］。腺苷可以下调树突状细胞上MHC Ⅱ的表达，从而抑制CD4 T细胞的激活。同时，T 淋巴细胞中A2aR 表达丰富，腺苷结合A2aR 能触发cAMP-PKA-CSK 通路，然后CSK 磷酸化并使LCK 失活，减少T 淋巴细胞活化期间TCR/CD3ζ链的酪氨酸磷酸化，从而破坏T淋巴细胞的TCR 跨膜信号传导［21-23］。CSK激活会抑制T 淋巴细胞上IL-2R 信号传导，抑制共刺激分子CD28 的表达，从而抑制CD4 T 细胞的活化和增殖［24-25］。而CD4 T 细胞的激活也促进CD8 T细胞的激活及活化［26］。此外，激活A2aR 可以触发cAMP-PKA-CREB 信号传导，其中CREB 能抑制NF-κB和活化的T细胞核因子，导致IL-2、IL-4、IL-5、IL-6、IL-17、γ干扰素和TNF-α等抗肿瘤细胞因子分泌减少，从而抑制CD4+和CD8+T细胞的活化［27］。CD4+T 细胞表面的TCR 与肿瘤相关抗原结合后可促进γ干扰素的产生，γ干扰素促进T淋巴细胞的分化和活化，而腺苷激活T 淋巴细胞表面A2aR 会抑制TCR 触发的跨膜信号传导，导致TCR 介导的γ 干扰素减少98%，进而破坏CD8+T细胞的功能［28］。

1.3 抑制T淋巴细胞运输和浸润

将效应T细胞运输至肿瘤微环境并浸润肿瘤细胞是癌症免疫反应的关键步骤，其循环并进入肿瘤组织主要通过趋化因子及其受体相互作用实现［29］。CXCL9和CXCL10的表达和产生主要由γ 干扰素诱导［30-32］。在实体瘤肿瘤微环境中，腺苷不断累积并通过激活A2aR 来抑制肿瘤特异性T淋巴细胞的趋化反应和肿瘤浸润水平［33］。腺苷结合效应T 细胞上的A2aR，激活cAMP-PKA 信号通路，导致γ 干扰素的分泌显著减少，肿瘤细胞CXCL9 和CXCL10 等趋化因子表达量显著降低，从而抑制效应T 细胞向肿瘤部位募集和浸润，促进“冷肿瘤”的形成［34-35］。研究表明，在乳腺癌肿瘤小鼠模型中，阻断腺苷受体可导致γ 干扰素诱导的CXCL10产生增加，促进T淋巴细胞募集并抑制肿瘤生长［36］；在黑色素瘤肺转移小鼠模型中，肿瘤微环境中腺苷信号传导抑制了晚期转移性病变中CXCL9 和CXCL10 的产生，从而减少效应T 细胞的浸润；在A2aR 缺陷的B16F10 和SM1WT1 肿瘤小鼠模型中，CD8+T 细胞向肿瘤的浸润增强，从而显著抑制肿瘤生长［37］；在头颈部鳞状细胞癌小鼠模型中，小分子抑制剂SCH58261 阻断A2aR后可以增加肿瘤浸润CD8+T 细胞数，并且使CD8+T 细胞中γ 干扰素和TNF-α 表达增加，从而增强肿瘤杀伤作用［38］。但腺苷的存在会降低头颈部鳞状细胞癌CD8+T 细胞的趋化性，其对头颈部鳞状细胞癌CD8+T 细胞的影响大于健康供者CD8+T细胞［33］。

离子通道可调节T淋巴细胞的细胞因子产生和趋化能力等多种功能［39-41］。在T 淋巴细胞中，KCa3.1 通道能控制细胞的趋化性，并介导腺苷的抑制作用［39］。腺苷能通过A2aR 刺激cAMP 生成和PKA 激活，PKA 能抑制KCa3.1 通道，降低T 淋巴细胞的趋化性，从而抑制T 淋巴细胞的迁移［42-43］。在头颈部鳞状细胞癌CD8+T 细胞中，腺苷浓度升高导致KCa3.1 通道活性降低，使用1-EBIO 激活KCa3.1 通道可恢复头颈部鳞状细胞癌中CD8+T细胞的趋化能力［33，43］。

1.4 诱导T淋巴细胞功能耗竭

肿瘤微环境中CTL 会因为效应细胞因子的减少、抑制受体的增加和细胞毒性的减弱而耗尽，从而导致肿瘤免疫逃逸。肿瘤微环境中T 淋巴细胞的耗竭调控机制可分为外在途径和内在途径［44］。

1.4.1 通过外在途径促进T 淋巴细胞耗竭外在途径中，调节性T 细胞、肿瘤相关巨噬细胞、MDSC 和肿瘤细胞是介导T 淋巴细胞耗竭的主要外源细胞［44-46］，IL-10 和TGF-β 也是参与T 淋巴细胞耗尽过程的重要外在细胞因子［47-48］。调节性T细胞、MDSC 和肿瘤细胞通过释放TGF-β 抑制CTL的功能，M2型巨噬细胞通过表达STAT3促进CTL的耗竭［49-50］。并且肿瘤细胞也分泌吲哚胺2，3-双加氧酶1、PD-L1、环加氧酶2和STAT3等免疫抑制介质，抑制肿瘤相关巨噬细胞中CTL 的活性；调节性T细胞也表达免疫检查点受体蛋白，抑制CD8+T 细胞的活性［51-52］。而腺苷可以增强抑制性免疫细胞活性，进而达到抑制杀伤性T 细胞功能的效果［53］。腺苷可结合CD4 T 细胞上的A2aR，通过激活Foxp3 和LAG-3 促进其分化为调节性T细胞，同时增加免疫抑制细胞因子的分泌，而CD4+Foxp3+调节性T 细胞的增加抑制了CTL的肿瘤杀伤作用［54］。此外，调节性T 细胞能促进CD39 和CD73 的表达并增加肿瘤微环境中腺苷的积累，从而促进A2aR 和A2bR 信号通路的旁分泌或自分泌刺激，形成正向反馈，进一步促进调节性T 细胞的抑制功能［55-56］。在头颈部鳞状细胞癌小鼠模型中，表达A2aR 的调节性T 细胞数增加，使用拮抗剂SCH58261 阻断A2aR 后可抑制肿瘤生长，诱导CD4+Foxp3+调节性T 细胞减少，同时增强CTL 的抗肿瘤反应［38］。在慢性淋巴细胞白血病小鼠模型体内使用A2aR 抑制剂会重新激活T 淋巴细胞，同时限制了调节性T 细胞的扩增［57］。对荷瘤小鼠给予高氧呼吸，可以减少肿瘤缺氧，抑制肿瘤微环境中缺氧驱动的细胞外腺苷积累，削弱了调节性T细胞的免疫抑制作用［58］。

在肿瘤微环境中，巨噬细胞在TNF-α、γ 干扰素、IL-12、Toll 样受体等因素的刺激下可以极化为M1型巨噬细胞，发挥抗肿瘤作用；而在VEGF、IL-10、IL-13、TGF-β 和前列腺素E2 等细胞因子的刺激下极化为M2 型巨噬细胞，M2 型巨噬细胞可抑制T 淋巴细胞功能并促进T 淋巴细胞耗竭，从而促进肿瘤增殖和转移［59］。腺苷激活巨噬细胞上的A2aR，上调cAMP 水平，通过触发cAMP-PKA和PI3K-PKC-HIF1 信号通路促进VEGF 的分泌；同时腺苷也能激活巨噬细胞上A2bR，通过触发MAPK-AP-1 信号通路进而导致VEGF 分泌增加，微环境中VEGF 浓度增加有利于巨噬细胞发生M2 型极化［7，60］。且腺苷结合A2aR 后可通过cAMP-PKA 通路激活核受体家族4A 转录因子，同时也触发cAMP-EMAC-p38-CREB 信号通路，两条通路均抑制了NF-κB的活化，使IL-12和TNF-α表达减少，导致巨噬细胞向M2 型极化［61-64］。此外，cAMP 水平上调可以触发EPAC-p38-C/EBP 信号通路，促使IL-10 分泌增加，导致巨噬细胞极化为M2型巨噬细胞［65］。

MDSC 在肿瘤微环境中具有抑制CTL 的肿瘤杀伤能力，且腺苷可以激活MDSC 上的A2bR 以促进其进一步扩增［66］。在黑色素瘤小鼠模型中，阻断腺苷-A2bR 信号传导可减少MDSC 积累，恢复CTL的功能并减少MDSC介导的肿瘤生长和免疫抑制作用［67］。同时，在路易斯肺癌小鼠模型中，腺苷促进CD11b+Gr1+MDSC 的扩增，促进MDSC对T淋巴细胞的抑制作用［68］。

1.4.2 通过内在途径促进T 淋巴细胞耗竭腺苷可激活T 淋巴细胞上的A2aR，增加PD-1、CTLA4 和LAG-3 等免疫检查点蛋白的表达。选择性A2aR激动剂ATL313可促进腺苷-A2aR信号传导，增加T 淋巴细胞上PD-1 和CTLA-4 的表达，从而抑制T 淋巴细胞的功能，减弱免疫激活［69］。在MC38-OVA 荷瘤小鼠模型中，腺苷受体激动剂NECA 可显著增加抗原特异性CD8+肿瘤浸润淋巴细胞和CD4+Foxp3+肿瘤浸润淋巴细胞上PD-1的表达水平，而A2aR 拮抗剂SCH58261 处理荷瘤小鼠可抑制NECA 介导的肿瘤浸润淋巴细胞PD-1 上调［70］。同时，使用CPI-444 阻断A2aR 可降低CD8+T细胞和Foxp3+CD4+调节性T细胞上PD-1和LAG-3 等多个检查点通路的表达，降低荷瘤小鼠引流淋巴结中PD-1和LAG-3的表达［71］。此外，Notch1稳定表达可以增加CD8 T细胞对肿瘤诱导的免疫抑制的抵抗力，且与维持T 淋巴细胞功能和γ 干扰素产生增加相关［72］。在活化的CD8+T细胞中，激活A2aR 通过抑制上游TCR 中ZAP-70磷酸化进而降低Notch1 蛋白表达，抑制活性Notch1 细胞内结构域的生成，最终抑制CD8+T 细胞的功能［54］。综上，在内在途径中，腺苷与受体结合会增加免疫检查点受体的表达，而免疫检查点受体和同源配体的结合会抑制CTL 的肿瘤杀伤能力并耗尽T 淋巴细胞，导致肿瘤细胞逃脱宿主细胞的免疫监视。

2 针对抑制肿瘤获得性免疫的干预策略

在肿瘤微环境中，腺苷对肿瘤获得性免疫具有抑制作用，但其半衰期短于10 s，直接靶向腺苷并不现实，因此大量临床前和临床研究尝试通过靶向腺苷生成酶（CD39和CD73）抑制腺苷生成或阻断A2aR 来破坏免疫抑制，同时与免疫检查点抑制剂联用可以增强治疗效果（附表1）。

2.1 靶向腺苷生成酶和A2aR

在多种肿瘤模型中，靶向CD39/CD73 的单克隆抗体和抑制剂有显著的抗肿瘤作用。在黑色素瘤小鼠模型中，抗CD39单克隆抗体可促进γ干扰素释放来杀死癌细胞［73］。在乳腺癌荷瘤小鼠模型中，抗CD73单克隆抗体3F7显著抑制了肿瘤生长和转移［74］。在人上皮性卵巢癌小鼠异种移植模型中，CD73 抑制剂APCP 能阻断CD73，促进肿瘤消退，增强T 淋巴细胞的抗肿瘤反应并增加小鼠存活率［75-76］。越来越多的临床前研究表明，拮抗A2aR 可显著增强抗肿瘤免疫，在靶向腺苷信号的药物中，A2aR 阻断剂是目前研究最为广泛、证据最充分的药物，且A2aR 抑制剂可通过增强CTL 的效应功能和阻断肿瘤微环境中免疫抑制性免疫细胞的募集和极化来增加抗肿瘤作用［77-78］。

在临床试验阶段，靶向CD39 或CD73 的单克隆抗体和小分子抑制剂也有显著的治疗效果。CD39抑制剂ES002023通过稳定细胞外ATP和抑制肿瘤微环境内腺苷的合成来恢复抗肿瘤免疫（NCT05075564）。CD73 选择性抑制剂AB680 具有良好的药代动力学特性，已进入Ⅰ期临床试验。在一项Ⅰb/Ⅱ期临床试验（NCT03381274）中，抗CD73 单克隆抗体MEDI9447 联合酪氨酸激酶抑制剂奥希替尼在既往接受治疗的晚期EGFR突变NSCLC 患者中具有中等活性和可接受耐受性［79］。目前，进入临床试验的A2aR 抑制剂有CPI-444、NIR178、AZD4635等。一项Ⅰ/Ⅱ期临床试验（NCT02403193）显示，24 例晚期NSCLC 患者对NIR178 具有良好的耐受性，不良反应可控且无第四级药物相关不良事件［80］。

2.2 联合免疫检查点抑制剂

目前，免疫检查点抑制剂已被应用于越来越多肿瘤的治疗，其对重塑肿瘤微环境具有巨大的潜力［1］。然而，免疫检查点抑制剂治疗的低反应率、缺乏已知生物标志物、免疫相关毒性、先天性和获得性耐药性等多种问题仍有待解决，这也限制了其临床应用［81］。许多研究和临床试验尝试将抑制腺苷途径与免疫检查点抑制剂联合使用来破坏免疫抑制，增强抗肿瘤效果（附表1）。在多种荷瘤小鼠模型中，抗CD73 单克隆抗体可以增强PD-1 单抗的免疫治疗效果［70，82-84］。如A2aR拮抗剂CPI-444 可恢复体外腺苷抑制的T 淋巴细胞信号传导、IL-2 和γ 干扰素产生，将CPI-444 与抗PD-L1 或抗CTLA-4 治疗结合使用，消除90%治疗小鼠的肿瘤，且部分对抗PD-L1或抗CTLA-4单药治疗无反应的小鼠恢复了免疫反应［85］。

在Ⅰ/Ⅰb 期临床试验（NCT02655822）中，68例肾细胞癌患者（肿瘤主要为PD-L1 阴性且其中大多数对抗PD-1/PD-L1抗体耐药或难治性）接受了CPI-444 或CPI-444 联合阿替利珠单抗治疗，结果显示，单药治疗患者中位无进展生存期为4.1个月，而联合治疗效果更显著，中位无进展生存期为5.8 个月，6 个月的疾病控制率为39%，25 个月的总存活率达90%［86］。在CD73 抗体MEDI9447 联合durvalumab（抗PD-1）治疗结直肠癌和胰腺癌患者的早期试验中，联合治疗安全性可控，患者有临床应答；在NSCLC 患者Ⅲ期临床试验中进行的随机2 期COAST 试验（NCT03822351）结果显示，在使用抗CD73 单克隆抗体oleclumab 联合durvalumab 双重阻断CD73/PD-L1 组中，患者客观缓解率接近40%，与单独使用抗PD-L1 比较，10 个月无进展生存期有明显改善（分别为39.2%和64.8%）［见OVERMAN M J， LORUSSO P，STRICKLER J H， et al.2018 ASCO Annual Meeting Ⅰ“Safety， efficacy and pharmacodynamics （PD） of MEDI9447 （oleclumab） alone or in combination with durvalumab in advanced colorectal cancer （CRC） or pancreatic cancer （panc）”］。最近一项Ⅰ期临床试验（NCT02403193）表明，A2aR 抑制剂NIRI178 和抗PD-1 单抗spartalizumab 联合治疗的NSCLC 患者达到疾病稳定的比例（14/25）显著高于PD-1 单抗单独治疗（7/25）［87］。在其他许多临床试验中，A2aR 抑制剂免疫疗法联合免疫检查点抑制剂在许多类型的癌症患者中也均显示出良好的治疗效果［27，88-89］。在一项针对晚期转移性去势抵抗性前列腺癌患者的Ⅰa/b 期临床试验（NCT02740985）中，联合应用A2aR抑制剂AZD4635与durvalumab的患者客观缓解率为16.2%（6/37），其治疗效果优于durvalumab 单独治疗（2/33）［90］。以上数据说明，腺苷途径抑制剂可以增强免疫检查点抑制剂的抗肿瘤效果，两者联合使用对于临床抗肿瘤治疗将是一种有效的组合策略。

2.3 腺苷信号通路成员多重抑制

为更完全地抑制腺苷的产生和受体信号传导，许多研究尝试将联合使用拮抗腺苷途径中的不同成员来协同抑制肿瘤生长。在临床前模型中，A2aR 与CD73 双重阻断的抗肿瘤效果优于单药治疗［37，91］。小分子CD73 抑制剂聚氧钨酸钠和A2aR 抑制剂AZD4635 联合使用可阻断腺苷信号通路，激活免疫细胞、增加γ 干扰素的产生，并降低调节性T 细胞的丰度［92］。在体外骨髓瘤和基质细胞共培养系统中组合使用抗CD39 单克隆抗体IPH5201 和抗CD73 单克隆抗体IPH5301 能协同抑制腺苷生成，从而降低T 淋巴细胞的抑制作用［93］。此外，数项临床试验正在对A2aR 和CD73联合靶向治疗进行测试，包括在EGFR 突变NSCLC 患者（NCT03381274）和前列腺癌患者（NCT04089553）。一项Ⅰ期临床试验报告分别使用CPI-444 和CPI-006 联合抑制A2aR 和CD73 的治疗效果明显优于单独使用CPI-006，并且不良事件发生率未显著增加［94］。

3 结语

肿瘤微环境中腺苷浓度较正常生理水平显著升高，腺苷通过激活腺苷受体抑制肿瘤获得性免疫细胞，形成免疫抑制性肿瘤微环境；其对肿瘤抗原提呈、T 淋巴细胞激活和浸润及CTL 杀伤肿瘤细胞的过程均产生抑制作用，从而促进肿瘤免疫逃逸。

腺苷途径作为治疗靶点的研究仍处于早期阶段，根据临床前研究和临床试验数据，靶向该途径是一种可行的肿瘤治疗策略。但根据迄今的临床前和临床试验数据，仅阻断腺苷生成未能产生显著的治疗效果，因此最佳组合疗法和给药方案仍值得进一步研究。同时，在腺苷途径抑制剂的开发过程中，仍存在一些问题需要探究:①无法在类似肿瘤模型中同时对CD39、CD73 和A2aR 靶点的治疗潜力进行比较；②需要注意腺苷生成酶的非酶活性，CD73 不仅在肿瘤细胞和免疫细胞中表达，其在各种正常细胞上也有表达，因此全身给予CD73 抑制剂会产生不良反应，且人源CD73 基因突变会导致动脉和手足关节钙化，增加心血管疾病风险［95］；③在抑制CD73 和/或CD39 时，产生腺苷的其他途径是否会发生代偿作用进而导致肿瘤耐药；④目前是否需要同时抑制腺苷途径的多个成分来克服腺苷的免疫抑制和促肿瘤免疫逃逸作用等。

针对免疫检查点抑制剂临床耐药问题，免疫抑制性肿瘤微环境是癌症免疫治疗成功的主要障碍，肿瘤微环境中效应T 细胞的浸润程度低、CTL 杀伤功能抑制、免疫抑制细胞的积累均会导致肿瘤耐药，对免疫检查点抑制剂反应降低。由于腺苷广泛的免疫抑制作用，阻断腺苷途径则有利于消除免疫抑制性肿瘤微环境，同时有越来越多的腺苷抑制剂联合免疫检查点抑制剂的临床试验正在开展，相对于单药治疗具有更显著的疗效，且在肿瘤微环境中增加CTL 浸润水平，因此靶向腺苷途径对解决临床上癌症免疫治疗耐药问题具有巨大潜力。