lncRNA MNX1-AS1在非小细胞肺癌中的表达及调控PI3K/AKT通路对癌细胞生物学行为的影响
2023-02-01刘桂霞邓科兰厉银平
刘桂霞, 邓科兰, 厉银平
(湖北省孝感市中心医院呼吸与危重症医学科, 湖北 孝感 432099)
肺癌是发病率与死亡率较高的肿瘤之一,非小细胞肺癌(NSCLC)是肺癌的主要类型,约占所有肺癌的80%。目前,NSCLC治疗手段包括手术治疗、化疗、靶向治疗、免疫治疗等,多数患者确诊时已至晚期或发生转移,5年生存率较低。因此,研究NSCLC的发病机制,探索新的治疗靶点,对于改善预后具有重要意义[1]。长链非编码RNA(long non-coding RNAs,lncRNAs)在肿瘤发生、细胞生长和转录调控等多种生理活性中发挥重要作用,lncRNAs的异常表达与肿瘤、心血管疾病、神经系统疾病等多种疾病密切相关[2]。lncRNA MNX1-AS1是位于第7号染色体上的lncRNA,据报道显示,lncRNA MNX1-AS1在卵巢癌、宫颈癌等多种肿瘤中表达水平升高,通过调节肿瘤细胞的增殖、迁移、侵袭及上皮间质转化(epithelial mesenchymal transition,EMT)等过程,促进肿瘤进展[3]。研究显示[4],lncRNA MNX1-AS1在NSCLC组织中表达水平升高,与肿瘤分化程度、TNM分期及淋巴结转移及预后相关,但lncRNA MNX1-AS1在NSCLC中的生物学功能尚不清楚。本研究分析lncRNA MNX1-AS1在NSCLC组织中的表达,探讨lncRNA MNX1-AS1在NSCLC细胞中的生物学功能及可能的作用机制,以期为NSCLC的诊治提供思路。
1 材料与方法
1.1材料:选取2017年6月至2019年3月期间在本院进行手术治疗的75例NSCLC患者的癌组织及癌旁正常组织,-80℃保存,该研究得到本院伦理委员会的批准。人支气管上皮细胞(BEAS-2B)及NSCLC细胞系(H1299、H2170、A549、PC-9)购于中国科学院细胞库;胎牛血清、RPMI 1640购自美国Invitrogen公司;携带干扰lncRNA MNX1-AS1表达质粒(si-MNX1-AS1)、其阴性对照质粒(si-NC)及引物购自上海吉玛制药技术有限公司;MTT试剂盒购自北京索莱宝公司;Omniscript RT Kit及miScript SYBR Green PCR Kit购自德国Qiagen;ECL试剂、TRIzol试剂、Lipo6000转染试剂(C0526)、兔抗人p-PI3K、PI3K、p-AKT、AKT、p-mTOR、mTOR)抗体购于碧云天生物技术有限公司。
1.2方 法
1.2.1细胞培养及分组:将BEAS-2B、H1299、H2170、A549、PC-9细胞接种于RPMI 1640培养基中(含有10%胎牛血清及双抗)进行传代培养,待细胞融合至70%左右时,胰酶消化收集细胞,用于后续实验。按照随机数字表法将PC-9细胞分为对照组(Control)、si-MNX1-AS1组、si-NC组,使用Lipo6000转染试剂对PC-9细胞进行转染,对照组不做转染处理,转染48h后qRT-PCR检测转染效率。
1.2.2RT-qPCR检测lncRNA MNX1-AS1:采用RT-qPCR检测NSCLC癌组织、癌旁正常组织及细胞中lncRNA MNX1-AS1表达,Trizol试剂提取总RNA,使用Omniscript RT Kit合成cDNA后,以GAPDH为内参,进行PCR扩增,lncRNA MNX1-AS1上游引物(5′-3′):CACCAACGGGGAGTGGATAC,下游引物(5′-3′):CTCCAGGGACCAACCAAGTC;GAPDH上游引物(5′-3′):AGTCCACTGGCGTCTTCA,下游引物(5′-3′):GAGTCCTTCCACGATACCAA,采用2-△△Ct法分别计算lncRNA MNX1-AS1表达量。
1.2.3MTT实验:转染后的各组PC-9细胞以2×103/孔接种于96孔板中,每组设置6个复孔,分别于24、48、72h时每孔加入5mg/mL的MTT液20μL,孵育4h后,加入150μL的DMSO溶液终止反应,检测吸光度值A490nm,绘制生长曲线。
1.2.4EdU实验:取对数生长期的各组PC-9细胞以4×104/孔接种于96孔板中,每孔加入100μL的EdU染色液(使用培养液稀释浓度为50μM)孵育2h,4%甲醛溶液室温固定30min,再加入0.5% TritonX-100透化10min,Hoechest复染细胞核,荧光显微镜下观察并拍照。
1.2.5Transwell小室检测细胞迁移与侵袭:用无血清培养液PC-9细胞悬液,调整浓度为4×105个/mL,上室加入200μL细胞悬液,下室加600μL完全培养基,培养箱孵育24h,多聚甲醇固定,结晶紫染色,显微镜观察细胞迁移数。侵袭实验使用Matrigel基质胶包被Transwell上室,其余同迁移实验。
1.2.6Western blot实验:收集各组细胞,加入适量RIPA裂解,BCA法检测蛋白浓度,经SDS-PAGE电泳后转至PVDF膜上,室温封闭2h,分别加入p-PI3K(1∶1500稀释)、PI3K(1∶1000稀释)、p-AKT(1∶1000稀释)、AKT(1∶1500稀释)、p-mTOR(1∶1000稀释)、mTOR(1∶1000稀释)和GAPDH(1∶1000稀释)抗体,4℃过夜后,加二抗(1∶1000)孵育2h,ECL试剂显影,分析条带蛋白相对表达。
1.3统计学分析:每组实验设置6个复孔,实验数据符合正态分布用平均数±标准差表示,SPSS25.0、Graph Pad 8.0软件进行统计分析,两组间比较采取独立样本t检验,计量资料用n(%)表示,组间比较采用卡方检验,当P<0.05时,差异有统计学意义。
2 结 果
2.1lncRNA MNX1-AS1在NSCLC中表达:与癌旁组织比较,NSCLC组织中lncRNA MNX1-AS1表达水平显著升高(P<0.05),见表1。
表1 lncRNA MNX1-AS1在NSCLC中表达
2.2lncRNA MNX1-AS1表达与NSCLC临床病理特征的关系:根据lncRNA MNX1-AS1在NSCLC组织中表达水平中位值,将NSCLC患者分为lncRNA MNX1-AS1高表达组(≥2.36)38例和lncRNA MNX1-AS1低表达组(<2.36)37例,分析发现lncRNA MNX1-AS1表达与TNM分期和淋巴转移有关(P<0.05),见表2。
表2 lncRNA MNX1-AS1表达与NSCLC临床病理特征的关系n(%)
2.3lncRNA MNX1-AS1与NSCLC患者预后相关性:Kaplan-Meier生存分析显示,lncRNA MNX1-AS1高表达组患者3年累积生存率为42.11%(16/38),显著低于低表达组的81.08%(30/37),差异有统计学意义(χ2=11.132,P=0.001),见图1。
图1 lncRNA MNX1-AS1表达水平与NSCLC患者预后关系
2.4lncRNA MNX1-AS1在NSCLC细胞系中表达:与BEAS-2B比较,lncRNA MNX1-AS1在H1299、H2170、A549、PC-9细胞中表达水平升高(P<0.05),见表3,在PC-9细胞中表达水平最高,选择PC-9细胞进行后续实验。
表3 lncRNA MNX1-AS1 在NSCLC细胞系中表达
2.5lncRNA MNX1-AS1对PC-9增殖的影响:与Control组和si-NC组比较,si-MNX1-AS1组PC-9细胞增殖活性显著降低(P<0.05),EdU染色结果显示,si-MNX1-AS1组EdU阳性细胞数较Control组和si-NC组减少,见图2、3,表明抑制lncRNA MNX1-AS1表达显著抑制PC-9细胞增殖。
图2 各组PC-9细胞生长曲线注:与Control组比较,#P<0.05;与si-NC比较,*P<0.05
图3 EdU实验检测细胞增殖(×40)
2.6lncRNA MNX1-AS1对PC-9细胞迁移与侵袭的影响:与Control组和si-NC组比较,si-MNX1-AS1组PC-9细胞迁移与侵袭数显著降低(P<0.05),表明抑制lncRNA MNX1-AS1表达可显著抑制PC-9细胞迁移与侵袭。见图4、表4。
图4 各组PC-9细胞迁与移侵袭图片(×100)
表4 各组细胞迁移与侵袭数比较
2.7lncRNA MNX1-AS1对PC-9细胞PI3K/AKT通路蛋白表达的影响:与Control组和si-NC组比较,si-MNX1-AS1组PC-9细胞p-PI3K、p-AKT、p-mTOR蛋白表达水平显著降低(P<0.05),表明抑制lncRNA MNX1-AS1表达可显著抑制PI3K/AKT通路的激活,见图5、表5。
图5 western blot检测各组PC-9细胞蛋白表达A:Control组;B:si-NC组;C:si-MNX1-AS1组
表5 各组细胞PI3K/AKT通路相关蛋白表达比较
3 讨 论
NSCLC是一种死亡率极高的恶性肿瘤,其早期诊断困难,晚期患者治愈率很低,恶性程度高且易转移与复发,患者生存率较低[5]。NSCLC的发生发展涉及多基因参与调控的过程,从基因水平研究NSCLC的发生发展机制越来越广泛,研究显示,多种lncRNA,如lncRNA ZEB2-AS1、LncRNA ANCR等在NSCLC中异常表达,与NSCLC发生发展密切相关[6]。
lncRNA MNX1-AS1基因位于7号染色体,可以转录产生992 bp的LncRNA,既往研究显示,lncRNA MNX1-AS1在结直肠癌、卵巢癌、胃癌、肝癌、三阴乳腺癌等多种肿瘤中表达异常,与肿瘤的发生发展密切相关,可能是肿瘤潜在治疗靶点[7,8]。本研究结果显示,lncRNA MNX1-AS1在NSCLC癌组织与细胞系中表达水平升高,提示lncRNA MNX1-AS1表达与NSCLC发生有关,通过分析临床病理特征显示lncRNA MNX1-AS1表达与TNM分期和淋巴结转移有关,提示lncRNA MNX1-AS1与NSCLC的发生发展相关。Kaplan-Meier生存分析显示,lncRNA MNX1-AS1表达水平越高,患者预后较差,总生存率显著降低,与报道结果类似[9]。淋巴结转移是肿瘤的一种恶性行为,研究显示,lncRNA MNX1-AS1参与调节肿瘤的侵袭与转移,如Wang等[10]研究表明,lncRNA MNX1-AS1通过miR-218-5p调节RAB1A的表达,促进膀胱癌细胞的增殖、迁移、侵袭和上皮间质转化,促进膀胱癌的生长和转移,体内实验表明,降低MNX1-AS1的表达可抑制肿瘤的生长和转移。Liu等[11]研究结果显示,lncRNA MNX1-AS1通过靶向抑制miR-527表达,上调BRAF表达促进肺癌细胞增殖、迁移与侵袭。本研结果显示,在PC-9细胞转染si-MNX1-AS1后,PC-9细胞增殖活性、迁移与侵袭能力显著下降,表明lncRNA MNX1-AS1参与NSCLC的发生与转移,与Liu等[11]人报道结果类似,提示lncRNA MNX1-AS1可能是治疗NSCLC的标志物。
PI3K/AKT通路在NSCLC的发生发展中发挥重要作用,AKT的活化可激活mTOR,使mTOR的磷酸化水平提高,从而介导细胞增殖、凋亡与能量代谢,PI3K/AKT/mTOR通路的激活与NSCLC细胞迁移、侵袭和耐药密切相关[12]。多项报道显示,lncRNA可通过影响PI3K/AKT/mTOR信号通路,影响NSCLC细胞的生长、转移和耐药,从而参与NSCLC的发生发展[13]。研究显示,在NSCLC中,敲低lncRNA ROR1-AS1表达可抑制PI3K/Akt/mTOR通路的激活,抑制NSCLC细胞的活力和侵袭能力,并抑制异种移植NSCLC肿瘤的生长[14]。在乳腺癌细胞中,lncRNA MNX1-AS1通过激活AKT/mTOR途径促进乳腺癌细胞的增殖、迁移和侵袭及上皮间质转化[15]。本实验结果显示,PC-9细胞中抑制lncRNA MNX1-AS1表达后,p-PI3K、p-AKT、p-mTOR蛋白表达水平显著降低,表明lncRNA MNX1-AS1可通过影响PI3K/AKT/mTOR途径而调控NSCLC细胞的增殖、迁移、侵袭,参与NSCLC的发生发展。
综上所述,lncRNA MNX1-AS1在NSCLC中表达水平升高,通过激活PI3K/AKT通路影响NSCLC细胞的增殖、迁移、侵袭,促进NSCLC的发生发展,但其具体作用机制尚仍需结合动物模型做进一步研究。