在水凝胶中平面嵌入多个3D细胞模型可实现高通量的微观组织学

据Heub S 2022年6月15日[Sci Rep，2022，12（1）：9991-9991.]报道，瑞士CSEM SA 研究人员提出了一种高性价比、高效率的微组织组织学处理方法，促进了球状体和器官组织的组织学处理，使凝胶嵌入的三维（3D）细胞模型具有精确的共面排列，与切片平面平行，最大限度地减少了样品材料的损失。

类器官或类肿瘤（统称为微组织）是一种复杂的体外3D 细胞模型，越来越受到研究人员的重视。与二维（2D）培养物相比，3D细胞模型能更好地实现与生理有关的组织功能、结构和界面。有利于全息影像学和药物筛选分析。目前，研究人员已经为一些3D体外模型的生产和实验处理开发了标准化和高通量方法。然而，仍然缺少适应性分析工具，以充分利用类器官在临床前药物测试和精准医学中的潜力。组织学是用于结构和功能组织分析的成熟、经济高效和金标准方法。但标准组织学过程应用于3D 细胞模型具有挑战性且成本高昂，它们尺寸偏小，通常会导致样品对齐不良，从而降低分析通量。

瑞士研究人员使用琼脂糖基底物以标准阵列格式制备多个样品--HistoBrick。HistoBrick 旨在促进样品定位、凝胶包埋、脱水、石蜡包埋、切片和光学成像，同时通过将样品对准在单一平面上来减少需要分析的所需切片数量。可以评估HistoBrick 内标本的相对排列和切片机上块的定位。

研究发现，HistoBrick 功能与自动化标准兼容，可允许自动将样品从多孔板转移到凝胶设备。HistoBrick 适用于组织学处理步骤，包括脱水、石蜡包埋、切片机切片和染色。研究人员通过展示直径为150～200 μm 的HepG2 培养球状体的排列验证了Histo-Brick 技术。经过组织学处理后，它们在具有直径±80 μm 精度范围的平面上对齐。虽然孔、阵列和样品的尺寸受到脱水和石蜡包埋程序的影响，但由于其2D 排列是守恒的，因此可以清楚地跟踪样品。此外，HistoBrick 允许在最小切片中研究多达96 个样品，为微组织学的标准化和高通量自动化铺平了道路。总之，HistoBrick 方法有助于使用微观组织学进行标准化样品分析，有利于促进类器官模型在研究和分层医学中广泛实施。