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化学助剂对杨木酶水解及发酵制备枯草芽孢杆菌的影响∗

2022-03-05魏立婷贾丽丽张军华

林产工业 2022年2期
关键词:糖苷酶木质素枯草

魏立婷 贾丽丽 张军华

(西北农林科技大学林学院,陕西 杨凌 712100)

我国杨木资源丰富,分布广泛,多用于纸浆造纸、家具制造等行业。加工杨木时会产生大量废弃物,为避免资源浪费,将杨木加工废弃物作为生物质化学品的生产原料[1-3]。前期研究发现,杨木经乙酸和乙酸-过氧化氢两步预处理后,可脱除大量木质素,减少木质素对纤维素酶的吸附,有利于后续水解[4]。同时研究表明,添加适量酶水解助剂可提高水解性能[5-8],然而目前有关酶解助剂对后续发酵过程的影响缺少深入的研究。

枯草芽孢杆菌(Bacillus subtilis)生长速度快且易存活[9],将其引入动物体内可以改善肠道微生态平衡,抑制有害菌生长,提高动物生长性能,可作为替代抗生素的饲料添加剂[10-13]。Wolfenden等[14]发现,饲料中添加枯草芽孢杆菌PHL-NP123可使肉仔鸡体重增加,同时也使肠道中沙门氏菌减少了25%。Giang等[15]发现,多种复合微生物添加剂可提高仔猪采食量和回肠消化率,平均日增重增加5.9%。陈慧慧[16]以杨木木屑水解液为发酵基质,通过木醋杆菌发酵进行细菌纤维素的制备,最高产量可达3.14 g/L。因此若以农林废弃物转化制得的单糖作为微生物发酵碳源,可以进一步促进废弃物料的高值转化。

本试验以乙酸-双氧水预处理杨木残渣为底物,添加β-葡萄糖苷酶(BG)和表面活性剂吐温-80、PEG-6000、木质素磺酸钠为辅助剂进行酶水解,对比研究最优水解条件,并以纤维素酶水解液中单糖为碳源,添加适量表面活性剂进行枯草芽孢杆菌发酵培养,以提高活菌数,降低生产成本,为生物质的高效利用提供参考依据。

1 材料与方法

1.1 材料

杨木屑,购自江苏宿迁,经粉碎过60目筛(孔径<0.25 mm),冷藏于-20 ℃冰箱保存。枯草芽孢杆菌(Bacillus subtilis)YS01,由南京林业大学生物工程系生物化工研究所提供。

纤维素酶Cellic Ctec2(酶活为123 U/g,蛋白含量为176.2 mg/mL)和β-葡萄糖苷酶Novozyme 188(酶活为1 714 U/mL),购自丹麦诺维信(Novozymes)公司。标准品葡萄糖和木糖为色谱纯,购于Sigma-Aldrich公司。其他化学试剂均为分析纯。

1.2 设备

Agilent 1260 Infinity高效液相色谱仪,美国安捷伦科技有限公司;ZQTY-50S型振荡培养箱,上海知楚仪器有限公司;UV-1800 型紫外可见分光光度计,上海美谱达仪器有限公司。

1.3 培养基

琼脂平板培养基:蛋白胨0.5%,酵母膏0.25%,葡萄糖0.1%,琼脂1.5%,pH调至7.0±0.2。

种子培养基:葡萄糖1%,蛋白胨1%,酵母膏0.5%,氯化钠 1%,pH调至7.1±0.2。

发酵培养基:酶水解液中葡萄糖和木糖总和1%,蛋白胨1%,磷酸氢二钾0.15%,硫酸锰0.01%,硫酸镁0.05%,无水氯化钙0.06%,pH调至7.0±0.2。

1.4 试验方法

1.4.1 杨木预处理

预先用乙酸对杨木进行第一步预处理(5%浓度乙酸,常温处理1 h,170 ℃加热30 min),脱除半纤维素,制备低聚木糖[4,17],预处理残渣水洗至中性后用乙酸-双氧水进行第二步预处理,乙酸-双氧水浓度为80%,其中双氧水与乙酸体积比为1∶1,60 ℃加热2 h,第二步预处理残渣用蒸馏水洗至中性,备用。

1.4.2 杨木酶水解

称取6.0 g干物质的两步预处理杨木残渣,柠檬酸钠缓冲溶液(pH 5.0)补足体系,配成300 mL 2%底物浓度的水解液,在10 FPU/g DM的纤维素酶CTec2 基础上,分别添加β-葡萄糖苷酶和吐温-80、PEG-6000、木质素磺酸钠。在50 ℃、200 r/min条件下水解72 h,反应结束后将酶解混合物真空过滤,除去残渣得酶解液。每次试验做3 个平行,结果取平均值。

1.4.3 杨木酶水解液发酵

以未添加酶水解助剂时酶水解液中的单糖作为发酵培养基的碳源,并向培养基中添加不同浓度的吐温-80、PEG-6000、木质素磺酸钠,进行枯草芽孢杆菌发酵培养。本试验以吸光值(OD600)和活菌数作为评价饲用枯草芽孢杆菌发酵性能的主要指标,同时还可结合单糖消耗情况,判定菌株对培养基营养物质的吸收能力。

1.4.4 枯草芽孢杆菌培养方法

菌株活化:将保存的枯草芽孢杆菌YS01 接种到琼脂平板培养基中,37 ℃恒温培养箱培养18 h。

种子培养:挑取单菌落接种到种子培养基,在37 ℃、200 r/min条件下摇床培养24 h。

发酵培养:接入5%种子液于发酵培养基中,在37 ℃、200 r/min条件下摇床培养24 h。

1.4.5 糖含量测定

样品中葡萄糖、木糖含量用高效液相色谱进行分析。色谱柱为Bio-Rad Aminex HPX-87P(300 mm×7.8 mm)分析柱,检测器为示差折光检测器,采用5 mM的H2SO4作为流动相,流速为0.5 mL/min,样品稀释后过0.22 µm的水系滤膜。

1.4.6 吸光度测定以未接种的培养基作空白对照,取发酵液1 mL,无菌水稀释后测定吸光度(OD600)。

1.4.7 活菌数测定

按照GB/T 13093—2006《饲料中细菌总数的测定》对活菌数进行测定。取发酵液1 mL稀释至10-6~10-8,涂布平板计数,3 个平行,倒置培养24 h确定活菌数。每次试验重复3 次,取平均值。

2 结果与分析

2.1 预处理后的杨木化学组分和结构分析

按照文献[4]的方法进行乙酸、乙酸-过氧化氢两步预处理,预处理前后杨木主要成分和结构如表1。乙酸处理可脱除部分木聚糖,低木聚糖得率明显提高,可用于制备低聚木糖。但是疏水性高于未处理杨木,使得木质素更易吸附纤维素酶,影响酶水解得率。乙酸预处理残渣进行乙酸-过氧化氢两步预处理后,木质素大量脱除,纤维素相对含量增加,结晶度升高到64.2%,有利于酶水解。

表1 乙酸、乙酸-双氧水预处理对杨木化学组成和结构的影响Tab.1 Chemical compositons and structure of AC and HPAC pretreated poplar

2.2 辅助剂对杨木酶水解的影响

2.2.1β-葡萄糖苷酶对酶水解的影响

乙酸-双氧水二次预处理杨木在水解时产生较高浓度的纤维二糖,抑制纤维二糖水解酶的作用,导致酶解得率降低[18-19]。因此,向水解液中加入适量β-葡萄糖苷酶可降低纤维二糖浓度,缓解其对酶解的抑制。

图1 所示为β-葡萄糖苷酶的添加量对杨木酶解影响情况。结果表明,随着反应时间的延长,酶水解转化率稳步提升,且单糖得率随β-葡萄糖苷酶添加剂量的增加有不同幅度的增加,其中木糖得率增幅较大。加入500 nkat/g含量的β-葡萄糖苷酶水解72 h,葡萄糖和木糖得率分别从68.25%和85.85%提升到71.39%和90.57%。当β-葡萄糖苷酶含量增加到1 000 nkat/g,葡萄糖和木糖得率均为最高,分别为74.35%和95.43%,说明添加β-葡萄糖苷酶能有效促进纤维素酶解。

图1 β-葡萄糖苷酶对杨木酶水解的影响Fig.1 Effect of β-glucosidase on the hydrolysis of pretreated poplar

2.2.2 吐温-80 对酶水解的影响

随后考察吐温-80 对预处理杨木酶水解得率的影响,结果如图2 所示。添加0.5 g/L的吐温-80 酶水解72 h,葡萄糖得率由64.10%提升至73.01%,当添加量增加到1 g/L,葡萄糖得率进一步提升到78.85%,然而继续增加吐温-80 的浓度未能显著提高葡萄糖得率。

图2 吐温-80 对杨木酶水解的影响Fig.2 Effect of Tween-80 on the hydrolysis of pretreated poplar

酶水解木糖得率也得到相同结果,吐温-80 剂量为1 g/L时,酶水解72 h木糖得率最高为95.35%。另外,酶水解时间从48 h延长至72 h,半纤维素水解效率逐渐放缓,木糖得率难以提高。考虑到吐温-80 含量过多不利于酶的回收,且增加生产成本,因此,水解过程中表面活性剂吐温-80 的最适添加量1 g/L。

2.2.3 PEG-6000 对酶水解的影响

与添加吐温-80 的结果相似,随着底物中非离子表面活性剂PEG-6000 含量增加,单糖得率均较未添加PEG-6000 样品有所提高。由图3 可知,PEG-6000浓度从0.5 g/L增加到1 g/L,酶解72 h葡萄糖得率和木糖得率均相差不大,说明微量的PEG-6000 对酶水解促进效果不显著。但当PEG-6000 添加量增加到1.5 g/L,葡萄糖和木糖得率较未添加样相比,分别提高了25.64%和22.99%。主要原因是PEG-6000 中的亲水性基团可对纤维素酶产生诱导[20],释放活性,减少木质素与纤维素酶之间的静电吸引,同时PEG-6000 能够改善固液传质,加速底物与酶运动[21],从而增加底物与酶的吸附-解吸速率,提高预处理杨木酶水解效率。因此可选用1.5 g/L浓度PEG-6000 作为化学激活剂加入到酶水解试验中。

图3 PEG-6000 对杨木酶水解的影响Fig.3 Effect of PEG-6000 on the hydrolysis of pretreated poplar

2.2.4 木质素磺酸钠对酶水解的影响

考察1、5 g/L浓度木质素磺酸钠对杨木残渣酶水解效率的影响,结果如图4 所示。随着酶水解的进行,酶水解得率快速升高。在3 种酶水解反应中,酶水解效率均在反应72 h时达到最高值。另外,5 g/L浓度的木质素磺酸钠单糖得率最高,葡萄糖、木糖得率分别为70.18%、94.72%,说明添加木质素磺酸钠对酶解反应有促进作用,酶水解后得到更多的单糖,可为木质纤维原料的生物转化提供能源。木质素磺酸钠中磺酸基团的负电子与纤维素酶中带正电的氨基结合,形成“水包油”型胶束[22-23],从而使纤维素与纤维素酶连接更稳定,阻碍酶与底物接触,提高酶水解效率。因此,选择木质素磺酸钠的适宜浓度为5 g/L。

图4 木质素磺酸钠对杨木酶水解的影响Fig.4 Effect of sodium lignosulfonate on the hydrolysis of pretreated poplar

2.3 表面活性剂对枯草芽孢杆菌发酵的影响

培养基的碳源来自未添加酶助剂时酶水解液中的葡萄糖和木糖,若在发酵过程中加入β-葡萄糖苷酶,则会与水解液发生反应,进而影响培养基碳源含量。因此,试验仅探究吐温-80、PEG-6000、木质素磺酸钠对枯草芽孢杆菌发酵的影响。

2.3.1 吐温-80 对发酵的影响

向发酵培养基中添加0~5 g/L的吐温-80,菌株具体生长情况如表2所示。由表2可知,添加0.5 g/L吐温-80,OD600从5.74提高到6.05,活菌数达到1.12×109CFU/mL。但随着吐温-80浓度持续增加,OD600和活菌数均不同程度降低,菌株生长受到抑制。这可能是因为较高浓度的吐温-80产生大量起泡使锥形瓶中溶氧量不足,影响菌株生长[24]。值得注意的是,菌株对葡萄糖利用情况的影响不大,说明枯草芽孢杆菌优先以葡萄糖作为碳源营养物质。

2.3.2 PEG-6000 对发酵的影响

培养基中添加0~5 g/L PEG-6000,枯草芽孢杆菌生长情况如表2所示。由表2可知,添加PEG-6000对杨木酶解液发酵具有抑制作用,随着PEG-6000浓度增加,抑制作用越强,PEG-6000浓度为5 g/L时,OD600降低到3.89,木糖消耗率仅有41.88%,活菌数为3.10×107CFU/mL,远低于空白样(8.42×108CFU/mL)。添加PEG-6000的发酵液渗透压增加,细胞液外渗,同时水解过程中产生的乙酸、糠醛等物质与表面活性剂作用,抑制菌株的生长[25]。试验结果与罗鹏[26]的研究报道有所差异,主要原因在于原料的化学组成和结构不同。

2.3.3 木质素磺酸钠对发酵的影响

木质素磺酸钠属于阴离子表面活性剂,负电性极强。向培养基中添加1 g/L和5 g/L木质素磺酸钠,枯草芽孢杆菌生长情况如表2所示。如表2可知,与吐温-80、PEG-6000作用效果不同,木质素磺酸钠对水解液发酵起促进作用,添加1 g/L木质素磺酸钠,OD600增加到6.79,活菌数最高,可达2.10×109CFU/mL,随着木质素磺酸钠剂量增加到5 g/L,活菌数略有下降,为9.62×108CFU/mL,但仍高于空白样。水解液发酵过程中木糖消耗明显更多,最高消耗率可达90.93%。综合对比3种表面活性剂可知,最好的酶解助剂是木质素磺酸钠,既可以提升酶水解效率,还可以促进枯草芽孢杆菌的发酵生产。

表2 化学助剂添加量对水解液发酵影响试验结果Tab.2 Effect of chemical additives on hydrolysate fermentationtest results

3 结论

本研究主要得出以下结论:

1)水解过程中添加适量辅助剂对预处理杨木酶水解有不同程度的促进作用,且单糖得率随着酶水解时间延长而增加。β-葡萄糖苷酶对酶水解有明显促进作用。与吐温-80、木质素磺酸钠相比,PEG-6000 的促进效果更加显著;

2)表面活性剂对枯草芽孢菌发酵的影响效果不同。添加0.5 g/L吐温-80,在一定程度上有利于菌株生长,但随着浓度的增加,对酶水解液发酵产生抑制作用;添加PEG-6000 会抑制菌株生长,而木质素磺酸钠却对酶水解液发酵具有促进作用;

3)化学助剂对酶水解和枯草芽孢杆菌发酵的影响的综合分析结果表明,额外补充1.5 g/L 的PEG-6000酶水解得率提升最多,添加1 g/L木质素磺酸钠时菌株生长效果最好。本研究结果可为杨木酶水解液制备益生菌奠定基础。

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