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实验用雪貂的饲养管理探析*

2021-12-04何滋林姚敏桦赵博厚祁艺新纪庆超常雯雯刘晓东隋宏书

实验动物科学 2021年5期
关键词:麻醉剂麻醉消毒

何滋林 姚敏桦 韦 涛 赵博厚 祁艺新 纪庆超 常雯雯 刘晓东 隋宏书

(山东第一医科大学组织学与胚胎学教研室,泰安 271000)

雪貂(Mustelaputoriusfuro),哺乳纲食肉目鼬科貂属。成年雪貂平均体质量0.5~2.7 kg,平均体长33~41 cm,平均尾长7.6~10 cm,寿命为7~10岁。雪貂属夜食性动物,性情温和、行动敏捷且好奇心强。其消化系统短且缺乏盲肠,因此机体代谢快。

在普通条件下,雪貂生理状况易受多种因素影响,容易患病。因此,建立一套科学的、可行的且规范的饲养方法非常重要。结合实验动物管理规定和本实验室雪貂饲养管理的经验,总结出一套规范、实用及可行性高的操作程序。

1 生活环境

1.1 居住环境

根据王宁等[1]报道,动物生物安全实验室与生活区的距离应符合《生物安全实验室建筑技术规范》的要求,笼舍和设施的设计应充分考虑为动物提供舒适的环境和足够的空间。笼-盆结合笼舍,笼和盆采用不锈钢和聚乙烯材料,材料无毒、硬度大且耐磨性强;笼网格间距3 cm且网丝直径2 mm,防止小雪貂逃逸。笼舍较大的空间满足了雪貂爱群居和活泼好动的需要;塑料底盘内盛有由优质木屑和散砂按5∶1配成的垫料。垫料应该保证清洁、干燥、吸水、无虫以及毒害物质不能超标,不能含有杀虫剂和杀菌剂。分层饲养既能节约饲养面积,又利于通风。在分娩期,雪貂笼内放置内置产笼可以提高雪貂分娩成功率,同时也为幼崽提供安全舒适的环境。

1.2 外周环境

根据王宁等[1]报道,雪貂生活的适宜温度是22~24 ℃,相对湿度是40%~60%,雪貂缺少汗腺,当温度超过32 ℃,成年貂会焦躁、紧张不安,甚至出现热虚脱的症状。雪貂主要通过呼吸系统散热,所以要注意控制饲养间温度。雪貂的呼吸道对异物敏感,过多的灰尘会刺激雪貂气道,饲养间要定期进行除尘操作。空调处理比较简单,按一般舒适性的空调系统进行设计,包括进风和除尘装置、消毒设备以及处理室内温度和相对湿度的设备。

2 饲养方式

饮用水要求:(1)煮沸消毒灭菌,无需蒸馏、离子交换和反渗透,以满足动物对微量元素的需求;(2)温度保持30 ℃左右,防止水温过高或过低刺激雪貂消化道;(3)随时注意水质变化,定期对水壶进行消毒处理,防止细菌滋生,消毒周期一般为3 d[ 1 ]。饮水装置:动物专用滚珠水壶。

雪貂对营养要求比较高,饲喂市场上销售的雪貂颗粒料,会出现营养不良,生长缓慢,分娩后的母貂甚至出现食仔的应激反应。根据马建章等[2]报道,雪貂生长发育情况见表1所列,3月龄内的雪貂使用羊奶喂养;4月龄内雪貂生长旺盛,应该选用高蛋白质及高脂肪的饲料;4月龄后生长放缓,使用高蛋白质及高脂肪的饲料,雪貂会出现溢脂(貂毛变黄、脱毛,首先出现“老鼠尾”)。因此,改进饲料:将熟鸡肉和貂哺乳期膨化混合饲料(爱得利都牌,主要成分见表2所列)使用搅拌机充分混匀,制成不同生长阶段的肉粒状饲料,为充分符合雪貂的肉食特性,投喂时适当添加羊奶,同时以雪貂颗粒料作为辅食。饲料保证蛋白质不低于38%,脂肪不低于18%。

表1 雪貂生长发育情况[2]

表2 爱得利都貂哺乳期用膨化混合饲料产品主要成分(%)

表3 不同生长阶段雪貂饲料配方

3 雪貂的实验操作

3.1 抓取保定

雪貂牙齿锋利会带来危险,抓取时必须佩戴防护手套。单手抓住雪貂的颈背部,将其四肢悬空进行固定,大多数雪貂在这种姿势下比较放松和配合,可以进行皮下或腹腔药物注射(图1)。

图1 雪貂抓取

3.2 雪貂体温及体质量的测量

由于体温及体质量变化是构建流感病毒模型后,病程进展变化的重要指标,因此,除了需在生物安全柜内进行测量外,也需要在每天的同一时刻进行测量以排除动物体温和体质量在1 d内的波动。体温测量时,将甘油润滑后的电子体温计插入雪貂直肠,保持体温计读数5~10 s无变化后进行记录。雪貂的正常体温范围是37.8~40 ℃,平均体温是38.8 ℃,电子体温计检测操作简便快捷、数值稳定且记录准确,对雪貂无影响。测量体质量时,将雪貂从笼具内取出放于电子秤上保持读数静止3 s以上再进行记录,精确度0.01 kg。

3.3 雪貂麻醉

根据张涛等[3]报道,麻醉剂的配方和用量见表4所列,使用配制的麻醉剂为舒泰50和速眠新Ⅱ。将舒泰50和速眠新Ⅱ按照1∶5的体积比充分混合,每只雪貂使用剂量为0.05~0.08 mL/kg。按照上述方式抓取雪貂使其仰卧,使用75%乙醇棉球在雪貂大腿内侧消毒,将麻醉剂注入其大腿肌肉组织中。每只雪貂注射0.08 mL麻醉剂后,观察雪貂眼睛及四肢的松弛状态和程度来确定是否完全麻醉。研究统计显示,雪貂在该剂量下维持麻醉时间为45~90 min,该剂量能保证对雪貂有效的麻醉,同时不会过度麻醉导致雪貂长时间不能苏醒。浅麻醉用在流感病毒经鼻造模,因为雪貂本身的喷嚏反射会影响造模的成功率;雪貂采血或处死时,需要深层麻醉,采取注射麻醉方法,保证对雪貂操作有足够时间,同时严格控制麻醉剂的用量,降低过度麻醉给雪貂和实验造成的影响。另外,麻醉剂需要专人负责管理,提前配制好足量的麻醉剂。由于存在个体差异,同质量雪貂会出现耐受性情况,可适当补充注射麻醉剂。实验已通过山东省第一医科大学福利伦理审查,编号:山东省医动批:NO.2021-662。

表4 麻醉配方和用量[3]

3.4 雪貂心脏采血和分离血清

Matsuoka等[4]实际操作显示,雪貂前腔静脉血管较细,颈部皮肤较疏松,针头容易滑落,所以采用易操作且成功率较高的心脏采血,且一次采血不能超过10%的动物血液量。将雪貂按上述方式抓取和麻醉,仰卧平放在生物安全柜内的操作盘中,使用剃毛器将雪貂胸前的体毛剪掉,用手探明心脏搏动最强部位,通常在胸骨左缘的正中,位于倒数第2~3肋骨中间。采血部位用75%乙醇擦拭消毒,使用1 mL一次性注射器垂直缓慢刺入心脏,缓慢拔针抽血,直到血开始填充注射器,收集所需血量后,拔出针头,使用消毒脱脂棉轻压注射部位止血。将血液转移到血清分离管,室温静置25 min以上,12 000 r/min离心10 min,将分离血清转移至另一干净离心管中,-20 ℃保存。研究显示雪貂每周一次心脏采血0.5~0.6 mL,连续采血不超过两个月,对雪貂健康状况和体征指标无明显影响。

3.5 雪貂处死和组织取样

雪貂在组织取样及剖检前需要执行安乐死。使用0.4 mL麻醉药注射雪貂大腿肌肉,使其在1~2 min深度麻醉,可以通过心脏穿刺采集大量血液(50 mL左右),然后心脏穿刺注射安乐死 Euthanasia Ⅲ 溶液(每毫升包含50 mg苯妥英钠和390 mg戊巴比妥钠)[4]。正确收集雪貂的组织样本对于分析非常重要,需使用单独的器械收集不同组织样品,将要收集的组织所需要器具放在用75%乙醇消毒的烧杯中,每个组织单独放入一个烧杯。用无菌纱布轻拭擦净,将采集的组织放入预先称质量和标记清晰的收集管内尽快冻存。根据Matsuoka等[4]报道,理论上,雪貂组织应优先收集病毒含量低的组织,如脑、心、肝、脾及肾组织,使高病毒含量器官(如肺)造成的污染降低到最小。

3.6 实验结束废弃物和动物的处理

实验结束后,在不影响实验结果的情况下,应选择“仁慈终点”,避免动物延长承受痛苦的时间[1]。实验产生的固体废弃物主要包括实验过程中使用的仪器、一次性器具、动物尸体、组织等。对于价值较高可以重复使用的仪器(如剪刀、解剖刀等),使用高压蒸汽灭菌法或微波消毒法进行灭菌消毒,这两种方法具有稳定可靠的灭菌作用[5]。一次性器具用后必须毁型和无害化处理,严禁重复使用[6]。动物尸体和组织切片装入专用医疗垃圾袋中,仔细消毒后放入冷柜中贮存,转交专业公司进行无害化处理[5]。

4 小结与展望

建立一套科学、可行且规范的雪貂饲养管理方法,对从事实验雪貂相关的科研有重要的指导作用和现实意义。饲养实验雪貂时,应合理控制雪貂饲养间的温度、相对湿度、噪声、空气质量等环境因素,提供较大的饲养空间,科学控制饲料及饮水。下一步,将继续尝试研究一种科学管理孕期雪貂的方法,以降低雪貂流产率。

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