MAP3K1-3UTR基因表达载体的构建及双荧光素酶技术验证
2020-09-10张雪婷 莫荣纤 张涛杰
张雪婷 莫荣纤 张涛杰
摘要:目的 通过双荧光素酶技术验证MAP3K1-3UTR基因表达的作用,从而研究凋亡因子对绵羊卵泡闭锁和凋亡的分子机制。方法 根据NCBI在线设计引物获取目的基因,将双荧光素酶载体分别插入MAP3K1基因野生型(MAP3K1-3UTR-WT)和突变型(MAP3K1-3UTR-MU)片段,构建psicheck2-MAP3K1-3UTR-WT和psicheck2-MAP3K1-3UTR-MU双荧光素酶报告质粒,将重组之后的双荧光素酶报告质粒转染293T细胞,检测双荧光素酶的活性。结果 经过酶切和基因测序技术,成功构建MAP3K1-3UTR-WT和MAP3K1-3UTR-MU的双荧光素酶报告质粒。psicheck2-MAP3K1-3UTR野生型与psicheck2-MAP3K1-3UTR突变型相比,荧光素酶活性明显降低。结论 MAP3K1-3UTR基因可能与绵羊卵泡细胞的闭锁和凋亡有关。
关键词:MAP3K1;卵泡颗粒细胞;基因表达;双荧光素酶
引言
卵泡是雌性动物繁殖的重要物质基础,卵泡是由卵母细胞及其周围颗粒细胞(granulosa cells,GCs)组成。颗粒细胞是构成卵泡的最大细胞群,它们以自分泌和旁分泌的方式调节卵泡的生长、发育和成熟,颗粒细胞可被认为是卵泡的支持细胞。颗粒细胞可促进卵巢合成和分泌抑制素、雌激素以及孕激素,为卵母细胞的成熟提供微环境,并维持黄体功能[2,3]。有研究表明,当颗粒细胞能力减弱或凋亡时,激素和生长因子的分泌将减少,甚至发生卵泡闭锁 [4]。
丝裂原活化蛋白激酶(MAPK家族)调节细胞的生长、分化、凋亡等多种生理病理过程,所有真核细胞都能表达,由三类蛋白激酶MAP3K-MAP2K-MAPK组成。MAP3KS一共有24种(MAP3K1至MAP3K21加上RAF1,BRAF和ARAF) [1]。MAP3K1是其中一种分子量为196-kDa的丝氨酸/苏氨酸激酶,它可以被各种刺激和细胞应激(包括生长因子,细胞因子和微管破坏)激活,这是MAPK家族级联激活第一步[6]。其编码MEKK1蛋白是MAPK信号通路中的重要一员[5],调控JNK、ERK1/2、P38等信号通路[7,8]。细胞凋亡受到生殖激素、微小RNA(microRNA, miRNA)、细胞因子和凋亡相关因子等因素的影响,其生殖激素(如FSH、褪黑素、E2和LH等)对卵泡发育和凋亡起主要作用。然而,这些凋亡因子对绵羊卵泡闭锁和凋亡有何作用尚不清楚。因此本文通过构建MAP3K1-3UTR基因表达载体来研究其在细胞凋亡中的分子机制。
一、实验目的
构建MAP3K1-3UTR基因的psicheck2-MAP3K1-3UTR表达载体,来研究凋亡因子对绵羊卵泡闭锁和凋亡的分子机制。
二、实验材料与方法
(一)实验材料
靶基因名称:MAP3K1基因。
表达载体:psicheck2载体。
293T细胞株,E.coli DH5α Chemical Competent Cell(上海吉凯基因化学技术有限公司),高糖DMEM、小牛血清(美国Hyclone公司),限制性内切酶(美国NEB公司),ClonExpress TM Ⅱ One Step Cloning Kit(中国南京,Vazyme), T4 DNA Ligase、PrimeSTAR HS DNA polymerase(日本Takara 公司),POLO deliverer 3000(上海瑞赛生物技术有限公司),TRIzol Reagent(invitrogen),
(二)实验步骤
1.引物设计
针对MAP3K1-3UTR基因的CDS区序列NCBI在线设计并合成PCR 引物(见表1)。
2.目的基因获取化学(化学合成)
根据NCBI上获得的MAP3K1-3UTR基因的CDS区序列,设计并化学合成涵盖psicheck2载体结合位点的MAP3K1基因野生型(MAP3K1-3UTR-WT)和突变型(MAP3K1-3UTR-MU)片段。
3. 双荧光素酶报告基因载体构建
(1)目的基因及目的载体的酶切
将目的基因和目的载体用xhoI和NotI分别进行酶切,酶切体系如下:
37℃酶切4-5小时后,电泳分离酶切片段,可以看到在418bp位置处出现两个特异性条带与目的基因相符,切胶回收目的片段。如圖二
(2)目的片段的与目的载体的连接
使用T4 DNA ligase 连接上述酶切后的PCR产物及目的载体,连接体系如下:
22 ºC连接1小时。将10ul连接产物转化DH5α感受态细胞,并涂布于含抗性的LB平皿,在37ºC下培养过夜。次日,挑取单菌落进行菌落PCR,PCR扩增体系及循环程序如下:
将PCR鉴定呈阳性的克隆接到LB液体培养基中,摇菌过夜,次日抽提质粒。将菌落PCR呈阳性的克隆送测序,并进行序列比对。
4.双荧光素酶载体转染293T细胞
制备293T细胞悬液,接种于12孔培养板,在37℃、5%的CO2培养箱培养至细胞汇合度约为 80%,将psicheck2-MAP3K1-3UTR载体(野生型和突变型)质粒分别转染293T细胞。
三、实验结果
(一)psicheck2载体图谱如下:
(二)目的片段酶切
泳道1:目的片段MAP3K1-wt 酶切;
泳道2:目的片段MAP3K1-mu 酶切;
泳道3:Marker DL5000
(三)重组克隆的菌落PCR鉴定
泳道1:Marker DL2000
泳道2-8:基因全长引物对重组子PCR扩增(MAP3K1-WT);
泳道9-15:基因全长引物对重组子PCR扩增(MAP3K1-MU)
(四) psicheck2-MAP3K1-3UTR载体对293T细胞的转染效果
48小时后,荧光表达强度趋于稳定状态,在倒置荧光显微镜下观察。psicheck2-MAP3K1-3UTR野生型与psicheck2-MAP3K1-3UTR突变型相比,荧光素酶活性明显降低。
psicheck2-MAP3K1-3UTR载体(野生型)
psicheck2-MAP3K1-3UTR载体(突变型)
四、讨论
卵泡闭锁发生的原因之一是颗粒细胞的凋亡,这在许多动物身上已得到了证实。而卵泡闭锁会对卵巢的发育产生一定的影响,从而影响到动物的繁殖。MAP3K1-3UTR基因指导细胞的生长,分化,迁移,对颗粒细胞是否会发生凋亡产生重要影响。
MAP3K1-3UTR基因所编码的MEKK1蛋白具有重要的生物学功能,是MAPK家族几种传导信号的上游调节因子[9],几种研究表明MAP3K1-3UTR决定着细胞的命运,双荧光素酶报告数据显示抑制MAP3K1-3UTR基因的表达后,双荧光素酶的活性明显降低,说明该基因能够控制细胞的能力。为之后进一步研究细胞凋亡的分子机制奠定了基础。
参考文献:
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[3]Eppig J J. Oocyte control of ovarian follicular development and function in mammals.[J]. Reproduction,2001,122(6).
[4]Manabe Noboru,Goto Yasufumi,Matsuda-Minehata Fuko,Inoue Naoko,Maeda Akihisa,Sakamaki Kazuhiro,Miyano Takashi. Regulation mechanism of selective atresia in porcine follicles: regulation of granulosa cell apoptosis during atresia.[J]. Journal of Reproduction and Development,2004,50(5).
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[9]郑良凤,王胜洁,吴刘成,刘春,李瑶,邵义祥.MEKK1在B6-Co小鼠胚胎发育过程中的表达[J].黑龙江畜牧兽医,2015(01):1-4+211.
作者简介:
张雪婷(1999-06-01),河北省石家庄市,单位:西北民族大学,研究方向:动物生殖生理(自然科学类)。
莫荣纤(1999-03-),贵州省凱里市,单位:西北民族大学,研究方向:生殖生理。
通讯作者:张涛杰(1983-12-),甘肃临洮,临床兽医学,西北民族大学。
项目名称:miRNA-let-7b对卵巢癌细胞株SKOV3的增殖的影响以及作用机制
项目编号:XBMU-BYL19140.