响应面法优化魔芋葡甘露聚糖制备工艺及其理化性质分析
2020-09-10王瑶宁杰宋庆贺张宪党丁文宇王志斌丁丽娜
王瑶,宁杰,宋庆贺,张宪党,丁文宇,王志斌,丁丽娜
(山东第一医科大学附属内分泌与代谢病医院(山东省内分泌与代谢病研究所),山东济南250062)
魔芋(Amorphophallus konjac)为天南星科魔芋属的多年生草本植物。魔芋在我国分布广泛,从陕西、甘肃、宁夏至江南各省区都有分布,其主要生于疏林下、林椽或溪谷两旁湿润地区。我国不同地区对其俗称不同,如江西称其为灰草,云南称其为花麻蛇,陕西称其为花杆莲、麻芋子等[1]。我国是最早栽培和食用魔芋的国家,早在宋代《开宝本草》就有魔芋的记载。现代研究表明,魔芋具降血脂、降血糖、减肥[2]、排毒通便[3]、免疫调节[4]等作用。
众所周知,膳食纤维与糖、蛋白质、脂肪、水、矿物质和维生素并称为第七大营养元素,而魔芋正是膳食纤维含量较高的植物之一。研究发现魔芋膳食纤维是目前发现的最优良的可溶性膳食纤维,其主要成分是葡甘露聚糖(konjac glucomannan,KGM),并且具有重要经济和保健价值[5]。KGM是由D-葡萄糖和D-甘露糖以β-1,4糖苷键链接的杂多糖,它具有强吸水性、高黏性、高膨胀性,以及良好的稳定性、增稠性、凝胶性等工艺特性,在食品工业、医药化工、纺织等领域有广泛的应用[6]。因此,开发出一种高品质、低成本且适合于工业生产的魔芋葡甘露聚糖制备工艺具有重要意义。
关于魔芋葡甘露聚糖的提取研究早在1922年就有报道,目前高纯度魔芋葡甘露聚糖的制备方法主要有乙醇洗脱法、生物酶法、酸水解法、超声辅助提取法等[7]。这些方法各式各样,也都取得了较好的效果,然而仍存在引入有机及化学试剂、难以工业化生产等问题,尤其是对KGM分子结构的破坏影响少有报道[8]。因此,本研究以新鲜魔芋为原料,采用响应面法对高纯度KGM制备工艺进行优化,并研究分析其持水力、膨胀力、持油力、阳离子交换能力功能性质,通过电子显微镜扫描、红外光谱分析和X-射线衍射分析测定其结构,为魔芋KGM的进一步合理开发与利用提供一定的理论依据。
1 材料与方法
1.1 材料与试剂
魔芋品种为白魔芋,采自重庆市;淀粉酶(40 000 U/g):索莱宝生物科技有限公司;无水乙醇、碘化钾、硫酸铜、盐酸、石油醚等(均为分析纯):国药集团化学试剂有限公司。
1.2 仪器与设备
全自动凯氏定氮仪(2300型)、样品消化炉(2006型):瑞典FOSS.TECATOR公司;紫外-可见分光光度计(UV-2550型):日本岛津公司;高速离心机(3K30):sigma公司;电子天平(SQP):赛多利斯科学仪器有限公司;傅里叶变换红外光谱仪(Nicolet710):美国尼高公司;热场发射扫描电子显微镜(SUPRATM55):德国蔡司公司;锐影X射线衍射仪(EMPYREAN):荷兰PANalytical公司。
1.3 试验方法
1.3.1 魔芋基本成分检测
取新鲜魔芋块茎,洗净、去皮,切片后参考食品安全国家标准对魔芋中各基本成分进行检测:水分测定采用直接干燥法[9];灰分检测通过灼烧后测定总灰分[10];淀粉检测采用酸水解法[11];蛋白质检测采用凯氏定氮法[12];脂肪检测采用索式提取法[13];膳食纤维采用酶-重量法[14]。
1.3.2 魔芋中葡甘露聚糖的提取流程
鲜魔芋→去皮、切片→50%乙醇打浆(重复3次)→离心(3000r/min,离心1min,弃上清液)→KGM粗品→70%酸性乙醇(pH 5.5)洗脱46 min→风干→KGM。
1.3.3 魔芋葡甘露聚糖含量及得率的测定
KGM含量测定方法参考国家标准GB/T 18104-2000《魔芋精粉》中方法,KGM得率计算公式如下:
1.3.4 单因素试验设计
通过预试验,选取洗脱时间、洗脱液pH值、乙醇浓度3个对KGM得率的影响比较明显的因素进行单因素试验,采用乙醇梯度洗脱法制备KGM,测定其含量并计算出得率,以确定响应面试验的水平范围。
1.3.5 响应面试验设计优化
在单因素试验的基础上,选择洗脱时间、pH值、乙醇浓度3个因素进行Box-Behnken试验设计,试验水平因素编码表见表1。
表1 响应面试验因素水平表Table 1 Response surface test factor level table
1.3.6 魔芋葡甘露聚糖的理化性质研究
1.3.6.1 KGM黏度的测定
参照GB/T 18104-2000《魔芋精粉》中方法,使用黏度计进行测定[15]。
1.3.6.2 KGM持水力性质分析
参照邓林等[16]方法,稍加改进。称取质量为m0的KGM加入到质量为m1的离心管中。加入10 mL蒸馏水后,将样品与其混匀。常温下密闭保存12 h,以5 000 r/min转速离心30 min,用滴管吸取上层水分,称量吸取水分后的离心管质量m2。每一样品平行测定3次,按公式(2)计算持水力:
1.3.6.3 持油力的测定
参考Yaich等[17]的方法并稍加修改,称取质量为m0的KGM加入到质量为m1的离心管中。加入食用油4.000 g,将样品与其混匀后于37℃水浴锅中密闭保存4 h,然后将离心管以5 000 r/min转速离心30 min,用滴管吸取上层油液,称量吸取水分后的离心管质量m2。每一样品平行测定3次,按公式(3)计算持油力:
1.3.6.4 膨胀力的测定
参照Benítez等[18]方法,稍加改动。称取质量为m的KGM置于10 mL带刻度的试管中并记录其体积V1。加入7 mL蒸馏水,混匀后置于4℃静置17 h,记录样品吸水后的体积数V2。膨胀力按公式(4)计算:
1.3.6.5 阳离子交换能力的测定
参照Chau等方法[19],将称取的质量为m的KGM加入干燥的50 mL离心管中,加入20 mL盐酸溶液(0.1 mol/L),密封后于25℃下静置12 h,以5 000 r/min转速离心30 min,弃去上清液后用蒸馏水洗涤滤渣至滤液中不含氯离子。将滤渣转移至干燥的150 mL锥形瓶中,加入100 mL氯化钠溶液(5%),用磁力搅拌器搅拌30 min后,以酚酞为指示剂,氢氧化钠溶液(0.1 mol/L)为滴定剂进行滴定,滴定至溶液变色且3 min不褪色为止,同时做空白试验。滴定样品消耗的氢氧化钠溶液体积为V1,滴定空白样所消耗氢氧化钠溶液体积为V0。阳离子交换能力按公式(5)计算:
1.3.7 扫描电子显微镜分析(scanning electron microscope,SEM)
将待测样品干燥后,取适量颗粒黏附在样品台上,在真空条件下镀金,之后用扫描电子显微镜在5 kV下扫描观察KGM表观形貌,并放大50、250、1 000、5 000倍对微观结构观察拍照[20]。
1.3.8 傅里叶红外光谱分析(Fourier transform-infrared spectrometer,FT-IR)
按照1∶50的质量比准确称取干燥的KGM样品与溴化钾粉末,在玛瑙研钵中充分混匀、研磨。用液压机压成透明薄片后在波长范围为4 000 cm-1~400 cm-1进行红外光谱扫描。扫描在25℃干燥条件下进行,同时在样品测定前扫描空气背景,并将结果扣除空气干扰[21]。
1.3.9 X-射线衍射分析(X-ray diffraction,XRD)
将KGM样品通过荷兰PANalytical公司的锐影X射线衍射仪进行检测,参照文献检测条件,并稍加修改为:靶型Cu,管压40 kV,管流 40 mA,扫描区域2θ角度为 5°~45°[22]。
1.3.10 数据分析
每个试验最少重复3次,结果以平均值±标准差的形式表示。采用软件ORIGIN2019b进行图表制作,Design Expert 10进行响应面试验设计及相应数据处理。
2 结果与分析
2.1 魔芋基本成分分析
新鲜魔芋基本成分的含量见表2。
表2 新鲜魔芋基本成分的含量Table 2 Contents of basic ingredients of fresh konjac %
由表2中检测结果可知,新鲜魔芋块茎中除去水分之外的主要成分为膳食纤维(12.05%)和淀粉(4.62%),脂肪含量较低。因此,魔芋富含膳食纤维,尤其是优质的水溶性膳食纤维,是制备膳食纤维的良好材料,这与文献报道一致[23]。
2.2 魔芋葡甘露聚糖制备单因素试验结果
2.2.1 乙醇洗脱浓度对KGM得率的影响
分别称取10 g KGM粗品于5个200 mL烧杯中,分别加入浓度40%、50%、60%、70%、80%pH5.5的酸性乙醇80mL,置于40℃水浴中磁力搅拌洗脱45min,抽滤,晾干后测KGM含量并计算得率。乙醇洗脱浓度对KGM得率的影响见图1。
图1 乙醇洗脱浓度对KGM得率的影响Fig.1 Effect of ethanol concentration on the extraction rate of KGM
由图1结果可知,在一定的乙醇浓度范围内,随着乙醇浓度的升高,KGM提取率逐渐升高,在70%乙醇浓度后继续提高乙醇浓度出现下降趋势。其原因可能为在乙醇浓度低时,部分KGM解于水中流失,而浓度高的乙醇抑制KGM结构展开不利于杂质的洗脱,因此选择洗脱乙醇浓度为70%。
2.2.2 洗脱时间对KGM得率的影响
分别称取10 g KGM粗品于4个200 mL烧杯中,加入浓度70%pH5.5的酸性乙醇80 mL,分别置于40 ℃水浴中磁力搅拌洗脱 15、30、45、60 min,抽滤,晾干后测KGM含量并计算得率。洗脱时间对KGM得率的影响见图2。
图2 洗脱时间对KGM得率的影响Fig.2 Effect of time on the extraction rate of KGM
由图2结果可知,在一定的洗脱时间内,随着洗脱时间的延长,KGM提取率逐渐升高,在45 min后继续延长洗脱时间得率出现下降趋势。洗脱时间过短,不利于杂质的洗出;洗脱时间过长,可能会引起部分KGM降解,因此,选取洗脱时间为45 min。
2.2.3 洗脱液pH值对KGM得率的影响
分别称取10 g KGM粗品于4个200 mL烧杯中,分别加入浓度 70%pH 3.5、4.5、5.5、6.5 的酸性乙醇 80 mL,置于40℃水浴中磁力搅拌洗脱45 min,抽滤,晾干后测KGM含量并计算得率。试验结果见图3。
图3 洗脱液pH值对KGM得率的影响Fig.5 Effect of eluent pH value on the extraction rate of KGM
由图3结果可知,在一定的pH值范围内,随着pH值的增大,KGM提取率逐渐升高,在pH 5.5后继续增加pH值得率出现下降趋势。pH值过大或过小都不利于KGM的提取,表明pH值对KGM得率影响显著,因此选择pH 5.5的酸性乙醇为洗脱液,与有关文献报道的在弱酸性条件下可以提高KGM的洗脱纯度结论相一致[24]。
2.3 魔芋葡甘露聚糖制备响应面试验结果与分析
2.3.1 响应面试验结果
KGM响应面试验结果见表3。
表3 KGM制备响应面试验结果Table 3 Box-Behnken experimental design arrangement and experimental results of KGM
由表3结果可知,利用Design Expert 10.0软件对数据进行分析,得出KGM得率对pH值、提取温度和提取时间的二次多项回归方程为:
R=-27.832 5+0.576 93A+14.618 25B+0.118 88C-0.001 25AB-0.000 45AC-0.006 33BC-0.003 87A2-1.254 5B2-0.000 55C2
2.3.2 方差分析结果
KGM制备试验方差分析结果见表4。
表4 方差分析Table 4 Analysis of variance
由表4方差分析结果可知,响应面模型的F=169.70、P<0.0001(极显著)、失拟项 P=0.5017>0.05(不显著),这表明该模型具有较高的显著水平,此试验方法具有较高可靠性,且其它非试验因素对KGM得率影响不大;模型的相关系数R2=0.995 4,校正相关系数R2adj=0.989 3,这表明此模型能较好地模拟各因素与KGM得率的关系且准确性较高;其中试验因素B、A2、B2达到极显著水平。总之,该模型方程可以很好的分析和预测不同条件下提取KGM得率的变化情况。
2.3.3 KGM制备各试验因素间相互作用的响应面和等高线结果
KGM制备各试验因素间相互作用的响应面和等高线结果见图4。
综合分析Box-Behnken试验结果可知,乙醇浓度、洗脱液pH值、洗脱时间对KGM得率的影响从大到小为:pH值>乙醇浓度>时间,其中pH值影响极显著(P<0.01),乙醇浓度影响显著(P<0.05)。交互项的影响从大到小排列依次为:pH值和时间>浓度和pH值>浓度和时间,其中pH值和时间交互作用显著(P<0.05),其余不显著(P>0.05)。
图4 各试验因素间相互作用的响应面和等高线图Fig.4 Response surface and contour plots of interaction among test factors
2.3.4 KGM制备工艺条件的确定和验证
根据Design Expert 10.0软件预测结果可知,当制备工艺为用70.9%的乙醇,在pH值为5.67的条件下,洗脱46.2 min时KGM得率最高,可达36.85%。考虑实际生产情况,最终将优化条件修正为:乙醇浓度70%,pH值为5.5和洗脱时间46 min,在此条件下重复3次平行试验,KGM得率分别36.39%、36.54%和36.81%,平均值为(36.58±0.21)%,与预测值较为接近,表明该模型优化得到的KGM制备条件准确性及实际操作性较好。
2.4 魔芋葡甘露聚糖功能性质测定
KGM黏度、持水力、膨胀力、持油力、阳离子交换能力的测定结果见表5。
由表5可知,提取得到的葡甘露聚糖具有高黏性、强吸水性及高膨胀性,分别达到29500mPa·s、49.81g/g、18.77 mL/g;这与其排毒通便、降脂减肥功能密切相关。同时各功能性质指标与文献[15,24]报道相符,说明提取得到的葡甘露聚糖功能性质变化不大。
表5 葡甘露聚糖的功能性质(±s,n=3)Table 5 Functional properties of KGM(±s,n=3)
表5 葡甘露聚糖的功能性质(±s,n=3)Table 5 Functional properties of KGM(±s,n=3)
样品黏度/(mPa·s)持水力/(g/g)膨胀力/(mL/g)持油力/(g/g)阳离子交换能力/(mmol/g)葡甘露聚糖 29 500±800 49.81±1.04 18.77±0.18 1.430±0.02 0.254 0±0.01
2.5 魔芋葡甘露聚糖表观形貌
图5分别为KGM在50倍、250倍、1 000倍及5 000倍的扫描电镜图。
通过观察图5可以得知,KGM呈不规则球形,大小分布不均匀,将其中一个颗粒放大显微倍数观察,可以发现颗粒表面相对光滑,同时吸附有杂质,这与相关文献[25]报道一致。
2.6 魔芋葡甘露聚糖傅里叶红外光谱分析
KGM红外光谱图见图6。
图5 魔芋葡甘露聚糖扫描电镜图Fig.5 SEM photographs of KGM
图6 魔芋葡甘露聚糖红外光谱图Fig.6 IR spectrum of KGM
观察图6发现,其结果与文献报道一致[26]。在3386、2 926 cm-1和1 400 cm-1~12 00 cm-1等处的吸收峰均为多糖的特征吸收峰。在3 600 cm-1~3 200 cm-1处出现一较强宽单峰,此为羟基伸缩振动引起,说明KGM可能存在着较多的羟基及结合水分子[27-28]。在2 929.51cm-1处为C-H的伸缩振动;2 148.00 cm-1为叁键或累积双键特征吸收峰;1 645.12 cm-1处为分子内氢键特征吸收峰;在1 384.59 cm-1处为C-H的伸缩振动。在1 350 cm-1~1 200cm-1范围内的吸收峰为C-H的变角振动,是糖类的特征吸收峰[29]。1 154.45 cm-1处为C-O酯键特征吸收峰;在1 079.61 cm-1和1 023.79 cm-1处同样为多糖类的特征吸收峰,由C-O醇键伸缩振动引起;781.87、612.20、520.19 cm-1处为吡喃型糖环特征吸收峰[30]。
2.7 魔芋葡甘露聚糖的X-射线衍射扫描结果
图7为KGM的X-射线衍射图。
图7 魔芋葡甘露聚糖的X-射线衍射图Fig.7 X-ray diffraction pattern of KGM
由图7结果可知,样品衍射图谱总体呈现弥散状,说明样品以非晶态为主,与文献报道一致[31]。另在2θ角 14.8、24.2、26.4、29.9 °处有较弱衍射峰,说明样品中含有少量晶态成分,提取后的KGM含有大量的无定型区域,少量的结晶成分隐藏在其中。
3 结论
本文对魔芋葡甘露聚糖的制备、性质及结构进行了系统性的研究。首先,应用响应面设计法得到魔芋葡甘露聚糖提取工艺:将鲜魔芋用3倍量50%乙醇打浆后,离心、干燥,再用8倍量70%酸性乙醇(pH=5.5)洗脱46 min,真空干燥后得葡甘露聚糖。其次,对制备的魔芋葡甘露糖理化性质进行分析,其持水力为49.81 g/g、膨胀力 18.77 mL/g、持油力为 1.43 g/g、阳离子交换能力为0.254 mmol/g。扫面电镜图结果显示魔芋葡甘露聚糖为表面带有沟壑的颗粒状,红外光谱显示其具有多糖特征吸收峰,X-射线衍射显示其晶型结构以非晶态为主,并有少量结晶成分隐藏其中。其理化性质与文献报道相一致,这表明本提取工艺对魔芋葡甘露聚糖的结构及功能性质影响较小。