杂交黄颡鱼与普通黄颡鱼幼鱼生长性能及耐低氧能力的比较

孙俊霄 韩广坤 刘 娅 李明波 袁勇超 樊启学 王银海杨贺舒 莫爱杰

(1. 华中农业大学水产学院, 农业部淡水生物繁育重点实验室, 湖北省水生动物病害防控工程技术研究中心, 武汉 430070;2. 潜江市水产技术推广中心, 潜江 433100)

黄颡鱼Pelteobagrus fulvidraco隶属鲇形目(Siluriformes)、鲿科(Bagridae)、黄颡鱼属(Pelteobagrus), 俗名黄姑鱼, 黄腊丁等, 广泛分布于我国江河、湖泊、水库等自然水域的底栖、小型、经济鱼类[1]。据2017年中国渔业统计年鉴报道, 黄颡鱼养殖产量已从 2003 年的5.48×107kg增长至2016年的41.73×107kg, 已发展成为南至两广、北至辽宁、东起江浙、西至川陕以及中部各大省份的全国性养殖鱼类。目前, 我国已经形成了以池塘集约化养殖黄颡鱼的产业化生产模式, 随着黄颡鱼养殖产业规模的扩大, 对优质性状、良种多元化的需求不断增加。将生长速度作为选育目标, 以选育三代的普通黄颡鱼为母本, 选育两代的瓦式黄颡鱼为父本杂交获得的子一代, 即杂交黄颡鱼“黄优1号”, 目前已经全国水产原种和良种审定委员会审定通过成为水产新品种。杂交黄颡鱼为黄颡鱼良种培育提供了新的选择, 但有关杂交黄颡鱼相比于其他黄颡鱼品种的优缺点还少有报道。

在自然水体中, 水体低氧是一种常见且频发的现象, 对鱼体产生了很多不利影响甚至可能导致鱼类的大量死亡[2]。水体溶氧水平直接关系着鱼类的生存、生长和鱼体代谢水平, 是影响鱼类生命活动的重要指标。对于绝大多数养殖鱼类而言, 当水中溶解氧含量低于2.0 mg/L, 鱼会因缺氧表现出浮头的症状; 当水中溶解氧含量低于1.0 mg/L, 鱼会表现出严重浮头的症状甚至缺氧死亡[3]。气压、温度、盐度、昼夜节律以及季节变化、水体富营养化、人类行为等都会对水体溶氧平衡造成影响[4]。鱼类的低氧耐受能力是鱼类抗逆性的重要指标, 也是评价水产养殖良种的重要指标。

本研究以相同养殖条件下的杂交黄颡鱼“黄优1号”和普通黄颡鱼幼鱼为研究对象, 比较研究其生长性能和低氧胁迫条件下乳酸脱氢酶和抗氧化酶等活力的变化以及缺氧诱导基因(HIF-1α)的相对表达量变化, 评估杂交黄颡鱼“黄优1号”幼鱼的生长优势以及低氧耐受能力, 为今后选育黄颡鱼养殖新品种提供基础资料和参考数据。

1 材料与方法

1.1 实验鱼

本研究的杂交黄颡鱼“黄优1号”和普通黄颡鱼苗种由湖北黄优源渔业发展有限公司鲁湖基地提供。杂交黄颡鱼和黄颡鱼苗种均为同批次繁育, 挑选规格一致、健康无病的实验鱼进行实验。在实验开始前, 杂交黄颡鱼“黄优1号”和普通黄颡鱼经过为期2周的驯化暂养以适应实验环境和饲料。

1.2 实验设计与养殖管理

生长性能对比试验生长性能对比实验在华中农业大学校内基地的流水养殖系统中进行, 选取6个养殖水体体积为250 L的养殖缸进行了杂交黄颡鱼和普通黄颡鱼8周养殖生长对比实验。初始规格分别为: (2.05±0.18) g和(1.95±0.24) g的杂交黄颡鱼和普通黄颡鱼鱼苗各90 尾, 2种实验鱼分别各自随机分成三组, 每组30 尾/缸。实验期间均采用实验室自制的黄颡鱼配合饲料, 每天进行2次饱食投喂(上午8:00和下午19:00), 饲料的主要组成及营养成分见表 1。

低氧胁迫实验低氧环境设计参考姜景腾等[5]的方法: 用1个体积为2000 L的储水桶, 放于较高位置; 6个体积为250 L的实验桶, 放于较低位置。用氮气把水中的氧排出, 加液体石蜡封闭。选取(38.14±2.35) g 的杂交黄颡鱼和(38.02±2.50) g普通黄颡鱼进行低氧胁迫实验。

选取3个实验桶, 每个实验桶随机放30尾杂交黄颡鱼, 再用另外3个实验桶, 每个实验桶随机放30尾普通黄颡鱼。通过预实验发现当实验鱼在溶氧水平低于1.50 mg/L时实验鱼表现出明显的缺氧症状(烦躁不安, 不时上游到水面), 所以以溶解水平1.50 mg/L作为实验低氧标准。低氧胁迫过程中实验桶内溶解氧含量为(1.48±0.27) mg/L (Winkler 碘量法), 每隔1h重新测定溶解氧含量, 根据需要调节水流速度维持溶氧水平不变。

表1 基础饲料组成和营养水平Tab. 1 Composition and nutrient levels of the basal diet

1.3 测定指标与方法

生长指标测定杂交黄颡鱼和普通黄颡鱼养殖8周, 禁食24h后取出每个养殖缸中的所有实验鱼, 以MS-222溶液麻醉, 然后计数并称重, 测量鱼体体长, 计算肥满度; 解剖得到肝脏和内脏称重, 计算肝体比和脏体比。计算方法如下:

其中,W0和Wt分别为实验鱼的初始体重和终末体重(g);WL和WV分别为肝脏湿重和内脏湿重(g);t为实验天数;N0和Nt分别为实验开始和结束时养殖缸中实验鱼的尾数;Wf为摄食饲料干重(g);L为鱼的体长(cm)。

血清和肝脏酶活性变化低氧胁迫0、6h、12h和24h后取杂交黄颡鱼和普通黄颡鱼的血清和肝脏。每个时间点取3尾鱼, 以MS-222溶液麻醉,尾静脉取血于EP管中混匀, 于4℃, 4000 r/min, 制备血清, -80℃冰箱保存。随后在冰盘上解剖, 分离肝脏, 以体积1:9加预冷生理盐水匀浆, 在4℃下3000 r/min离心10min, 取上清液, -20℃冰箱保存。血清和肝脏乳酸脱氢酶(LDH)活性、超氧化物歧化酶(SOD)活性、过氧化氢酶(CAT)活性、总抗氧化能力(T-AOC)测定采用南京建成生物工程研究所的试剂盒, 具体测定方法见试剂盒说明书。

脑和肝脏缺氧诱导基因(HIF-1α)mRNA 的相对表达量变化低氧胁迫0、6h、12h和24h后取杂交黄颡鱼和普通黄颡鱼的脑和肝脏。每个时间点取3尾鱼, 以MS-222溶液麻醉, -80℃冰箱保存备用。PCR引物参考张慧[6]根据黄颡鱼HIF-1α基因序列设计的引物HIF-f6与HIF-r6, 以及根据黄颡鱼βactin基因序列设计的引物AF和AR, 引物序列见下表 2。

表2 引物序列Tab. 2 Primer sequence

1.4 数据分析

实验结果数据用平均值±标准差(Mean±SD)来表示, 利用SPSS 18.0软件进行单因素方差分析, 当差异显著时再进行Tukey’s检验分析不同组别之间的差异, 显著水平为P＜0.05。

2 结果

2.1 杂交黄颡鱼和普通黄颡鱼幼鱼生长对比结果

杂交黄颡鱼和普通黄颡鱼幼鱼生长实验结果见表 3和表 4。结果表明: 经过8周的养殖, 杂交黄颡鱼平均体重为 (19.60±0.88) g/尾, 显著高于普通黄颡鱼平均体重为 (15.74±0.42) g/尾(P＜0.05), 杂交黄颡鱼幼鱼较普通黄颡鱼幼鱼体重生长快24.52%;杂交黄颡鱼幼鱼存活率为 (87.78±1.92) %, 显著高于普通黄颡鱼幼鱼存活率 (67.78±1.92) % (P＜0.05),杂交黄颡鱼幼鱼比普通黄颡鱼幼鱼存活率高29.51%;杂交黄颡鱼的饲料系数为1.18±0.14, 普通黄颡鱼饲料系数为1.36±0.21。杂交黄颡鱼和普通黄颡鱼肝体比、脏体比、肥满度等形态学指标差异不显著(P＞0.05)。

2.2 杂交黄颡鱼和普通黄颡鱼幼鱼酶活力测定

在低氧胁迫下杂交黄颡鱼和普通黄颡鱼幼鱼血清和肝脏乳酸脱氢酶(LDH)活性从图 1、图 2可以看出: 低氧胁迫0时, 杂交黄颡鱼和普通黄颡鱼血清和肝脏中LDH活性没有显著性差异(P＞0.05);低氧胁迫6h、12h和24h时, 杂交黄颡鱼和普通黄颡鱼血清、肝脏中LDH活性均显著高与低氧胁迫0时LDH活性(P＜0.05); 低氧胁迫6h时, 杂交黄颡鱼血清中LDH活性显著低于普通黄颡鱼血清中LDH活性(P＜0.05)。

在低氧胁迫下杂交黄颡鱼和普通黄颡鱼幼鱼血清和肝脏超氧化物歧化酶(SOD)活性从图 3、图 4可以看出: 低氧胁迫0时, 杂交黄颡鱼和普通黄颡鱼血清和肝脏中SOD活性没有显著性差异(P＞0.05), 低氧胁迫后杂交黄颡鱼和普通黄颡鱼血清、肝脏中SOD活性呈现出先升高后降低的趋势。在低氧胁迫6h时, 杂交黄颡鱼和普通黄颡鱼血清和肝脏中SOD活性显著高于低氧胁迫0时SOD活性(P＜0.05), 杂交黄颡鱼肝脏中SOD活性显著高于普通黄颡鱼肝脏中SOD活性(P＜0.05)。

表3 杂交黄颡鱼和普通黄颡鱼幼鱼生长对比Tab. 3 Growth characteristics of P. fulvidraco and P. vachelii ♂ × P. fulvidraco ♀

表4 杂交黄颡鱼和普通黄颡鱼幼鱼形态学指标Tab. 4 The morphological indicators of P. fulvidraco and P.vachelii ♂ ×P. fulvidraco ♀

图1 杂交黄颡鱼和黄颡鱼幼鱼肝脏乳酸脱氢酶活性Fig. 1 The effect of hypoxia on LDH activities in the liver of P.fulvidraco and P. vachelii ♂ ×P. fulvidraco ♀

图2 杂交黄颡鱼和黄颡鱼幼鱼血清乳酸脱氢酶活性Fig. 2 The effect of hypoxia on LDH activities in the serum of P.fulvidraco and P. vachelii ♂ ×P. fulvidraco ♀

在低氧胁迫下杂交黄颡鱼和普通黄颡鱼幼鱼血清和肝脏过氧化氢酶(CAT)活性从图 5、图 6可以看出: 低氧胁迫0时, 杂交黄颡鱼和普通黄颡鱼血清和肝脏中CAT活性没有显著性差异(P＞0.05)。在低氧胁迫后, 杂交黄颡鱼和普通黄颡鱼肝脏中CAT活性呈现出先降低后升高的趋势, 杂交黄颡鱼和普通黄颡鱼血清中CAT活性呈现逐渐上升趋势。在低氧胁迫6h时, 杂交黄颡鱼和普通黄颡鱼肝脏中CAT活性显著低于低氧胁迫0时 肝脏中CAT活性(P＜0.05), 杂交黄颡鱼和普通黄颡鱼血清中CAT活性显著高于低氧胁迫0时血清中CAT活性(P＜0.05); 杂交黄颡鱼肝脏中CAT活性显著高于普通黄颡鱼肝脏中CAT活性(P＜0.05); 杂交黄颡鱼血清中CAT活性显著高于普通黄颡鱼血清中CAT活性(P＜0.05)。

图3 杂交黄颡鱼和黄颡鱼幼鱼肝脏 SOD 活性Fig. 3 The effect of hypoxia on SOD activities in the liver of P.fulvidraco and P. vachelii ♂ ×P. fulvidraco ♀

图4 杂交黄颡鱼和黄颡鱼幼鱼血清 SOD 活性Fig. 4 The effect of hypoxia on SOD activities in the serum of P.fulvidraco and P. vachelii×P. fulvidraco

图5 杂交黄颡鱼和普通黄颡鱼幼鱼肝脏 CAT 活性Fig. 5 The effect of hypoxia on CAT activities in the liver of P.fulvidraco and P. vachelii ♂ ×P. fulvidraco ♀

在低氧胁迫下杂交黄颡鱼和普通黄颡鱼幼鱼血清和肝脏总抗氧化能力(T-AOC)活性变化从图 7、图 8可以看出: 低氧胁迫0时, 杂交黄颡鱼和普通黄颡鱼血清和肝脏中T-AOC活性没有显著性差异(P＞0.05), 在低氧胁迫后杂交黄颡鱼和黄颡鱼血清和肝脏中 T-AOC 活性均呈现先升高后降低趋势。在低氧胁迫12h时, 杂交黄颡鱼和黄颡鱼血清和肝脏中 T-AOC 活性显著高于低氧胁迫 0 时TAOC活性(P＜0.05); 杂交黄颡鱼血清和肝脏中TAOC活性显著高于普通黄颡鱼 T-AOC 活性(P＜0.05)。

2.3 杂交黄颡鱼和普通黄颡鱼幼鱼缺氧诱导因子(HIF-1α)mRNA相对表达量

从图 9和图 10可以看出: 低氧胁迫后杂交黄颡鱼和普通黄颡鱼脑和肝脏中HIF-1αmRNA 相对表达量逐渐升高; 低氧胁迫6h和12h杂交黄颡鱼脑中HIF-1αmRNA相对表达量显著高于普通黄颡鱼脑中HIF-1αmRNA 相对表达量(P＜0.05); 低氧胁迫12h 杂交黄颡鱼肝脏中HIF-1α mRNA相对表达量显著高于普通黄颡鱼肝脏中HIF-1αmRNA相对表达量(P＜0.05)。

图6 杂交黄颡鱼和普通黄颡鱼幼鱼血清 CAT 活性Fig. 6 The effect of hypoxia on CAT activities in the serum of P.fulvidraco and P. vachelii ♂ ×P. fulvidraco ♀

图7 杂交黄颡鱼和普通黄颡鱼幼鱼肝脏 T-AOC 活性Fig. 7 The effect of hypoxia on T-AOC activities in the liver of P. fulvidraco and P. vachelii ♂ ×P. fulvidraco ♀

图8 杂交黄颡鱼和普通黄颡鱼幼鱼血清 T-AOCFig. 8 The effect of hypoxia on T-AOC activities in the serum of P. fulvidraco and P. vachelii ♂ ×P. fulvidraco ♀

图9 杂交黄颡鱼和普通黄颡鱼幼鱼脑 HIF-1α mRNA 相对表达量Fig. 9 The effect of hypoxia on the brain HIF-1α mRNA P.fulvidraco and P. vachelii ♂ ×P. fulvidraco ♀

图10 杂交黄颡鱼和普通黄颡鱼幼鱼肝脏 HIF-1α mRNA 相对表达量Fig. 10 The effect of hypoxia on the liver HIF-1α mRNA level of P. fulvidraco and P. vachelii ♂ ×P. fulvidraco ♀

3 讨论

3.1 杂交黄颡鱼和普通黄颡鱼幼鱼生长性能比较

目前有关杂交黄颡鱼杂交育种的研究, 主要是通过对瓦氏黄颡鱼(Pelteobagrus vachelli)、黄颡鱼(Pelteobagrus fulvidraco)、斑点叉尾鮰(Ietalurus punetaus)、乌苏里拟鲿(Pseudobagrus ussuriensis)和粗唇(Leiocassis crassilabris)等鱼类进行正、反交育种, 就体型特征和生长速度而言, 以黄颡鱼为母本, 瓦氏黄颡鱼为父本杂交得到的杂交黄颡鱼是目前最优的杂交组合[7,8]。同时, 张佳佳等[9]通过对黄颡鱼 ♀ ×瓦氏黄颡鱼 ♂ 双亲以及杂交子代的营养成分进行对比得出: 杂交黄颡鱼在营养方面不低于其亲本, 甚至优于亲本; 陈建明等[10]通过杂交黄颡鱼、雄性瓦氏黄颡鱼和黄颡鱼的形体指数及肌肉营养组成比较分析发现黄颡鱼 ♀ ×瓦氏黄颡鱼 ♂ 杂交得到的杂交黄颡鱼的体形和出肉率与雄性黄颡鱼一致, 其肌肉为低脂高蛋白食品,营养价值接近黄颡鱼。生长速度、成活率、饲料系数等被认为是评估水产良种的重要指标, 已有研究表明通过杂交育种获得了生长速度更加优良的子代, 如尼罗罗非鱼(Oreochromis niloticus)[11]、鲤(Cyprinus carpio)[12]、石斑鱼(Epinephelusssp.)[13]等。本研究对杂交黄颡鱼“黄优1号”和普通黄颡鱼幼鱼进行了生长对比试验, 对比分析杂交黄颡鱼“黄优1号”和普通黄颡鱼幼鱼的生长性能。在相同室内流水养殖条件和养殖密度下, 杂交黄颡鱼幼鱼较普通黄颡鱼幼鱼体重生长快24.52%, 存活率高29.51%, 这充分表明杂交黄颡鱼具有优良的生长性能。对于杂交黄颡鱼其他优良性状以及与全雄黄颡鱼生长性能对比将是本研究后续的研究方向。通过与普通黄颡鱼生长对比充分表明: 杂交黄颡鱼幼鱼比普通黄颡鱼幼鱼具有更快的生长速度、更高的存活率以及更低的饲料系数。

3.2 杂交黄颡鱼和普通黄颡鱼幼鱼耐低氧能力比较

黄颡鱼属于小型、底栖鱼类, 目前有关黄颡鱼耐低氧能力的研究主要是围绕黄颡鱼耗氧率[14,15]和窒息点[15]、在低氧胁迫条件下氧化应激反应[16,17]以及分子应对机制[6,17]等几个方面。杨凯等[15]通过对不同规格黄颡鱼的窒息点和瞬时耗氧率研究表明: 黄颡鱼属于低窒息点(0.33—0.60 mg/L)鱼类, 窒息点随体长的增加而逐渐降低; 呼吸类型为顺应型, 瞬时耗氧率随溶氧水平的下降而逐渐降低。张国松等[17]通过对瓦氏黄颡鱼应对低氧胁迫的分子机制研究发现: 瓦氏黄颡鱼为了应对急性低氧环境,在转录水平上通过miRNA-mRNA pairs调控一些重要的信号通路(如HIF-1 signaling pathway、Glycolysis/Gluconeogenesis、AMPK signaling pathway等)并导致包括促进血红细胞增殖, 促进血管生成,抑制细胞凋亡; 有氧代谢和无氧代谢的转换; 减少能量消耗和生物合成等一系列生物学过程。同时张国松等[17]对瓦氏黄颡鱼氧化应激反应的研究结果表明: 瓦氏黄颡鱼在同一溶氧水平条件下, 不同组织的耐低氧程度也不同, 导致不同组织在氧化应激下的酶活性和各个指标变化存在差异。

乳酸脱氢酶(LDH)存在于机体所有组织细胞的细胞质内, 是参与糖无氧酵解和糖异生的重要酶可以在缺氧条件下为鱼体生命活动提供能量, 常被用来作为衡量无氧代谢能力的重要指标。在低氧胁迫后LDH活性上升且随着时间延长LDH活性未出现明显下降, 说明杂交黄颡鱼和普通黄颡鱼在低氧条件下均可通过无氧代谢为机体提供能量。乳酸脱氢酶主要存在于机体各组织器官中, 当机体各组织器官受损时, 可引起血液中LDH含量的改变[18]。在低氧胁迫前(0时)杂交黄颡鱼和普通黄颡鱼血清和肝脏中LDH活性没有显著性差异(P＞0.05); 在低氧胁迫后 6h 杂交黄颡鱼血清中LDH活性显著低于普通黄颡鱼血清中LDH活性(P＜0.05), 说明相比与普通黄颡鱼, 在低氧胁迫条件下杂交黄颡鱼受到的损伤更小。通过杂交黄颡鱼和普通黄颡鱼血清和肝脏中LDH活性变化表明: 相比于普通黄颡鱼, 杂交黄颡鱼的低氧耐受能力要高于普通黄颡鱼。

低氧环境会加速生物体内活性氧(ROS)的产生, 包括一些活性氧自由基和过氧化氢(H2O2)、二氧化氮等活性物质。活性氧会对生物造成氧化胁迫, 导致生物细胞膜流动性降低和通透性增加、蛋白质功能的丧失以及DNA的损伤和突变等, 因此生物能否快速有效地清除活性氧是其能否在低氧环境下生存的关键[19]。超氧化物歧化酶(SOD)和过氧化氢酶(CAT)是生物体中能够对活性氧发挥作用的抗氧化酶, 广泛分布于机体血液和各个组织器官中。SOD可以催化活性氧自由基超氧阴离子转变成 H2O2, 是生物体中最先对活性氧自由基作出反应的抗氧化酶[20], 并且能够对环境胁迫反应表现出明显的活力变化[17]。总抗氧化能力(T-AOC)是生物体内抗氧化酶体系和抗氧化物体系抗氧化能力的总和, 是反映抗氧化能力的重要指标之一。有研究表明在不同溶氧水平条件下, 黄颡鱼体内抗氧化酶活性会发生明显变化[21]。本研究在低氧胁迫条件下, 杂交黄颡鱼和普通黄颡鱼血清和肝脏中SOD活性均呈现出先升高后降低的趋势, 这一结果与姜景腾等[5]研究低氧胁迫对真鲷(♀)与黑鲷(♂)杂交子一代体内酶活力的影响中肝脏SOD活性变化趋势以及强俊[22]、谢明媚等[23]研究低温胁迫对尼罗罗非鱼幼鱼和银鲳幼鱼血清和肝脏中SOD活性变化趋势相似。当低氧胁迫时杂交黄颡鱼和普通黄颡鱼机体产生更多的活性氧自由基对机体细胞和组织器官造成损伤促使机体SOD活性升高, 随着胁迫时间的延长, 过量的活性氧自由基可能会超过机体自我调节阈值导致SOD活性降低。CAT能够将SOD催化活性氧自由基超氧阴离子生成的H2O2分解成 H2O与O2使得 H2O2不至于与O2反应生成危害性更大的-OH。CAT与SOD接连发挥作用, 但本研究发现肝脏CAT的活性变化与SOD的活性变化趋势相反, 这一结果与姜景腾等[5]研究低氧胁迫对真鲷(♀)与黑鲷(♂)杂交子一代体内酶活力的影响中肝脏CAT活性呈先下降后上升变化趋势相同; 与王春琳等[24]在曼氏无针乌贼耗氧率及溶氧胁迫对其体内酶活力的影响研究中低氧胁迫后CAT活性呈先升后降趋势相反。杂交黄颡鱼和普通黄颡鱼血清中CAT活性呈现上升趋势, 肝脏中CAT活性先降低后升高, 这一结果与谢明媚等[23]研究急性温度胁迫对银鲳幼鱼抗氧化和免疫指标的影响中高温胁迫对肝脏造成损伤促使鱼体细胞通透性增加因此肝脏 CAT 活性降低而血清CAT活性升高这一结果相似。因此, 在不同物种不同胁迫条件下肝脏CAT活性变化趋势还有待研究。在低氧胁迫后, 杂交黄颡鱼和黄颡鱼血清和肝脏中SOD活性和TAOC较低氧胁迫前(0时)均会表现出明显上升, 而随着胁迫时间的延长, 抗氧化酶活性降低, 这一结果表明: 在低氧胁迫条件下, 杂交黄颡鱼和普通黄颡鱼短时间均可以通过改变血清和肝脏中抗氧化酶活性来适应低氧环境, 但随着胁迫时间的延长超过自身调节阈值仍会对鱼体造成氧化损伤。在低氧胁迫后, 肝脏中CAT活性下降有学者认为是低氧胁迫条件下活性氧的大量产生直接抑制了CAT活性[25]。在低氧胁迫后, 杂交黄颡鱼血清和肝脏中LDH活性、SOD活性、CAT活性和 T-AOC变化幅度大于普通黄颡鱼血清和肝脏中LDH活性、SOD活性、CAT活性和T-AOC变化幅度, 表明在低氧胁迫条件下, 相比于普通黄颡鱼, 杂交黄颡鱼抗氧化能力更高。

缺氧诱导基因(HIF-1)是细胞缺氧应答反应的全局性调控因子, 广泛存在于各种高低等动物体内[26], 被喻为哺乳动物在转录水平上应答低氧的总开关[27]。HIF-1由HIF-1α和HIF-1β两部分构成, 在细胞核内聚合生成具有生物活性的HIF-1。HIF-1α是HIF-1独有亚基, 也是功能单位。细胞内HIF-1αmRNA持续表达, 在常氧条件下HIF-1α生成后会迅速分解, 在细胞内水平很低, 当细胞内氧分压变化时HIF-1α降解途径被破坏在细胞内会迅速积累[28];HIF-1β是HIF-1的结构单位且HIF-1βmRNA和蛋白水平均不受氧分压影响[6]。张慧[6]通过对黄颡鱼HIF-1α基因克隆和表达分析发现, 常氧条件下HIF-1αmRNA在肝脏、肾脏、腮中均有表达而在低氧诱导后表达量均显著升高。本研究通过低氧胁迫后0、6h、12h 和 24h杂交黄颡鱼和普通黄颡鱼缺氧诱导基因(HIF-1α)的相对表达量变化发现杂交黄颡鱼和普通黄颡鱼脑和肝脏中HIF-1α的相对表达量均在低氧胁迫后出现显著性上升(P＜0.05)且在低氧胁迫6h和12h杂交黄颡鱼缺氧诱导基因(HIF-1α)的相对表达量均高于普通黄颡鱼。

综合研究结论表明: 在相同养殖条件下, 杂交黄颡鱼幼鱼比普通黄颡鱼幼鱼具有更快的生长速度、更高的存活率以及更低的饵料系数。通过对杂交黄颡鱼幼鱼和普通黄颡鱼幼鱼低氧胁迫条件下无氧代谢能力、抗氧化能力以及缺氧诱导基因相对表达量三方面分析, 表明表明杂交黄颡鱼“黄优1号”幼鱼比普通黄颡鱼幼鱼具有更好的低氧耐受能力。