白屈菜红碱对人高转移性肝癌细胞系MHCC97-H生长侵袭和迁移能力的调节作用*
2019-09-05程金玉赵乐中谢国永
程金玉 赵乐中 李 伟 谢国永
商丘市第三人民医院普外科 (河南 商丘, 476000)
原发性肝癌包括肝细胞癌、肝内胆管细胞癌和肝胆管混合型癌,其中肝细胞癌占90%以上。多数患者确诊时已经属于中晚期或发生远处转移。化疗药物单独或联合使用效率不高,且毒副作用大,可重复性差。应用中医中药能够改善该类患者的症状,提高机体免疫功能,减轻放化疗的不良反应。白屈菜是传统中药材,具有止咳、镇痛、解毒等多种功效。白屈菜红碱是白屈菜中重要活性成分,具有抗炎、抑菌、抗寄生虫等多种药理活性[1,2]。近年来研究发现,白屈菜红碱对多种肿瘤细胞系有抑制作用,如鳞状细胞癌、结肠癌、黑色素瘤、神经瘤等[3]。笔者以体外培养的肝癌细胞MHCC97-H为研究对象,探讨白屈菜红碱对其生长、侵袭和迁移能力的影响。
1 材料与方法
1.1 实验材料 白屈菜红碱(纯度>98%,CAS:34316-15-9)购自成都瑞芬思生物科技有限公司;胎牛血清和DMEM培养基购自美国Gibco公司;胰酶购自Hyclone公司;CCK-8试剂盒购自日本同仁公司;Ki67、VEGF、MMP-9抗体购自美国Cell Signalling Technology公司。
1.2 实验方法
1.2.1 肝癌细胞MHCC97-H的培养 MHCC97-H细胞接种于DMEM培养基(含10%胎牛血清),培养条件为37℃、5%CO2的恒温恒湿培养箱。细胞每隔1 d更换新鲜培养基,传代时使用0.25%胰蛋白酶消化。取对数生长期的细胞进行实验。白屈菜红碱溶解于灭菌水后,用0.22 μm针头滤器过滤。
1.2.2 CCK-8检测药物毒性和细胞增殖 取对数生长期的MHCC97-H细胞,胰酶消化后,调整细胞浓度至8×104个/ml,取100 μl细胞悬液至96孔板,正常条件下预培养6 h。待细胞贴壁后分别加入10 μl相应浓度的白屈菜红碱,并设置空白对照组,每组设置3个复孔,培养24 h后加入10 μl CCK-8溶液,继续培养2 h后检测450 nm处光吸收值,细胞存活率=(加药-空白)/(对照-空白)×100%。
取对数生长期的MHCC97-H细胞,胰酶消化后,调整细胞浓度至4×104个/ml,取100 μl细胞悬液至96孔板,正常条件下预培养6 h待细胞贴壁。MHCC97-H细胞贴壁后,将细胞分为MHCC97-H组、白屈菜红碱低浓度组(10μmol/L,简称低浓度组)、白屈菜红碱中浓度组(20 μmol/L,简称中浓度组),白屈菜红碱高浓度组(50 μmol/L,简称高浓度组),分别使用含0.10、20、50 μmol/L白屈菜红碱的培养基培养细胞,并设置空白对照组,分别于培养24、48、72、96 h后,加入10 μl CCK-8溶液继续培养2 h,酶标检测仪检测450 nm处光吸收值。
1.2.3 体外侵袭实验 Matrigel用无血清培养基稀释后,取200 μl至Transwell上室,4℃风干。取对数生长期的MHCC97-H细胞,0.25%胰酶消化后,调整细胞密度为1×105个/ml,取200 μl细胞悬液接种于Matrigel包被的Transwell上层小室,下层小室加入含10%胎牛血清的完全培养基。在37℃、5% CO2的培养箱中培养24 h后取出小室,用棉签擦去上层基质和细胞。4%多聚甲醛固定15 min,在滤膜上加几滴吉姆萨染液,反应10 min,蒸馏水洗后,倒置显微镜下随机选择5个400倍视野观察计数并拍照,每组实验重复3次。
1.2.4 划痕实验 实验前用记号笔于培养板背面划平行的5条直线,灭菌后备用。将细胞传代培养于12孔板中,加入不同剂量的药物后,用10 μl枪头沿培养板背面直线垂直划痕。用预冷的PBS洗涤3次后,加入无血清培养液(含10 μg/ml的丝裂霉素C)进行培养,于0、 24 h进行拍照记录,并计算划痕闭合率,划痕闭合率 =(0 h划痕宽度-24 h划痕宽度)/0 h划痕宽度。
1.2.5 蛋白质印迹实验 收集不同浓度白屈菜红碱作用24 h后的MHCC97-H细胞,用加蛋白酶抑制剂的裂解液冰上超声裂解,4℃下12000 rpm离心30 min后取上清液,BCA法测定蛋白浓度。各组样品上样量为30 μg,12%聚丙烯酰胺凝胶电泳分离,转移至PVDF膜;用含5%脱脂牛奶的封闭液室温下封闭1 h,加一抗4℃孵育过夜;TBST洗3次,每次10 min;加二抗,室温下孵育2 h,TBST洗膜后显影,Image J软件分析条带灰度值。
1.3 统计学方法 应用SPSS18.0统计软件对数据进行分析,两组间比较采用t检验,多组间比较采用方差分析,P<0.05为差异有统计学意义。
2 结果
2.1 白屈菜红碱毒性检测 以含有一系列浓度白屈菜红碱的培养基培养MHCC97-H细胞24 h后,检测MHCC97-H细胞的存活率。结果显示,浓度小于50 μmol/L时白屈菜红碱对MHCC97-H细胞存活率没有显著影响;浓度大于100 μmol/L时白屈菜红碱能明显降低MHCC97-H细胞的存活率,见图1。本实验选择白屈菜红碱浓度小于50 μmol/L的3个梯度进行后续实验。
图1 不同浓度白屈菜红碱的细胞毒性图
2.2 4组细胞增殖情况 检测1、2、3、4天细胞的增殖。结果显示,与MHCC97-H组相比,低、中、高浓度组细胞增殖倍数明显降低(P均<0.05),随着白屈菜红碱浓度和作用时间的增加,效果越明显。见图2。
2.3 4组细胞的侵袭能力 与MHCC97-H组相比,低浓度组侵袭细胞数目没有明显变化;而中、高浓度组细胞侵袭的细胞数目明显降低(P<0.05),且随着白屈菜红碱浓度的增加,效果越明显。见图3。
图2 4组细胞增殖图
图3 4组细胞的细胞侵袭图
图4 4组细胞的细胞迁移图
2.4 4组细胞的细胞迁移情况 结果显示,与MHCC97-H组相比,低、中、高浓度组细胞划痕闭合率明显降低(P<0.05),且白屈菜红碱浓度越高,效果越明显,见图4。
2.5 4组细胞增殖、迁移相关蛋白表达情况 低浓度组细胞与MHCC97-H组相比,Ki67和MMP-9的表达明显降低,VEGF的表达没有明显变化;与MHCC97-H组相比,中、高浓度组细胞的Ki67、VEGF、MMP-9表达显著降低;且随着白屈菜红碱浓度的增加,变化越明显(P<0.05),见图5。
图5 4组细胞的增殖、迁移蛋白电泳及表达量图
3 讨论
随着检测和治疗技术的发展,肝癌的诊断和治疗取得较大进步。由于肝癌早期症状不明显,绝大多数患者确诊时属于晚期。目前靶向治疗药物应用范围较小,放疗和消融治疗后容易出现复发和耐药性,使中晚期肝癌整体治疗效果仍不容乐观,患者5年生存率较低[4]。肝癌细胞系MHCC97-H由上海医科大学中山医院建立,肺转移率为100%。肝癌患者出现肺转移后,治疗手段较为有限,且生存率低。Gao 等研究发现,白屈菜红碱能诱导对顺铂耐药的肺癌A549细胞凋亡,对肺癌细胞株H1299、H460、非耐药A549细胞凋亡没有影响[5]。
无限增殖是肿瘤细胞重要特征之一。Zhang等发现,白屈菜红碱抑制人胃癌细胞BGC-823生长,诱导细胞发生凋亡[6]。本研究结果提示白屈菜红碱能够抑制人肝癌细胞MHCC97-H的增殖。
侵袭和迁移是恶性肿瘤的重要生物学特征,在临床上肿瘤细胞发生转移是其难以治愈的重要原因。肿瘤转移是多步骤、多阶段的综合过程,一般包括脱落、转移、着床和转移灶血管形成,因此肿瘤转移能力的抑制是肿瘤治疗中的重要任务[7]。MMP-9是重要的基质金属蛋白酶,能特异性的降解基底膜中的主要成分IV型胶原,与肿瘤细胞的转移密切相关[8,9]。血管内皮生长因子VEGF是高度特异性的促血管内皮细胞生长因子,能改变血管通透性,促进肿瘤血管生成,从而促使肿瘤发生侵袭和迁移[10,11]。本研究结果提示白屈菜红碱具有抑制肝癌细胞MHCC97-H的侵袭和迁移的能力。
白屈菜红碱属于苯丙菲啶类碱,与蛋白激酶C的催化区直接结合,抑制蛋白激酶C的活性[5]。蛋白激酶C是存在于细胞质的磷脂依赖性丝氨酸/苏氨酸蛋白激酶,是细胞内信号传递的重要介质[12]。在肿瘤的发生、发展过程中发挥着重要的作用,参与肿瘤细胞的增殖、凋亡、迁移和肿瘤耐药性[13]。VEGF与其受体结合后,磷酸化下游磷脂酰肌醇-3-羟激酶等,进而发挥相应作用[14]。蛋白激酶C在VEGF下游蛋白的磷酸化过程中发挥重要作用,当蛋白激酶C被抑制后,VEGF的作用被减弱[15]。白屈菜红碱对蛋白激酶C的抑制作用或许是其影响MHCC97-H增殖、侵袭和迁移的重要因素,但其中的分子学机制需要进一步实验去验证。