氟中毒及补钙干预大鼠骨骼差异蛋白的分离与鉴定

王金明，徐慧淼，闫子鹏，杨镓蓉，朱雅雅，成小芳，王俊东



氟中毒及补钙干预大鼠骨骼差异蛋白的分离与鉴定

王金明1，徐慧淼1，闫子鹏1，杨镓蓉1，朱雅雅1，成小芳2，王俊东1

1 山西农业大学 动物科技学院山西 太谷 030801 2 山西农业大学 文理学院，山西 太谷 030801

为从蛋白水平探索钙缓解氟中毒的作用机制，本试验建立氟中毒和补钙干预动物模型进行骨骼差异蛋白的分离鉴定。通过双向凝胶电泳技术(Two-dimensional electrophoresis，2-DE) 和基质辅助质量飞行时间质谱技术(MALDI-TOF MS) 鉴定骨骼中的差异蛋白质，并通过gene ontology (GO) 注释、pathway富集和互作网络对差异蛋白进行分析。结果表明，与对照组 (C) 相比，在氟中毒组 (F) 和氟中毒补钙组 (F+Ca) 中有17种差异性的蛋白，包括Ⅰ型胶原蛋白 (Col1a1)、肌动蛋白 (Actb)、蛋白质谷氨酰胺转移酶2 (Tgm2) 等。这些差异蛋白富集到黏着斑 (Focal adhesion)、PI3K-Akt信号通路、AMPK信号通路等38条骨代谢通路。并且这些蛋白的功能主要与细胞骨架、能量代谢、物质转运、离子通道、细胞凋亡有关。因此推测，钙可能通过调控黏着斑、PI3K-Akt、AMPK等信号通路进而缓解氟对骨骼带来的损伤，具体作用机制还需要进一步验证。

氟中毒，钙，骨组织，双向电泳，差异蛋白

氟中毒是全世界广泛存在的一种人畜共患地方性中毒病，该病危害严重、分布广泛、难以治愈。过量的氟可导致组织和细胞损伤，骨骼和牙齿是受其威胁的主要靶器官和组织，主要临床表现是氟骨症和氟斑牙[1-2]。

高氟不仅可使骨硬化、骨软化，还可引起骨质疏松及骨周围软组织化骨。近年来对氟骨症的骨组织形态结构研究表明，中毒后的骨骼结构松散、着色不均，Havers氏系统受损[3]。Yan等对大鼠饲喂含有NaF的去离子水120 d后，取胫骨和股骨进行结构观察后发现，中毒后的骨小梁数目、体积均降低，形状不规则，且骨组织中胶原纤维断裂、肿胀、排列紊乱，网状结构受损[4]。Zhang等发现，高剂量的氟还可影响骨细胞DNA的合成并诱导骨细胞凋亡[5]。有研究发现，钙或含钙化合物对一定条件下的氟中毒能起到适当的预防和治疗作用[6]，可明显缓解氟中毒带来的骨质损伤和内质网应激[7]。关于钙对氟中毒的缓解机制，可能会通过影响氟的吸收、骨转换、氧化应激、细胞凋亡等过程，从而改变氟对机体的损伤作用[8]。

蛋白质是生命活动的重要体现者，是生命的物质基础。随着后基因组时代的到来，蛋白组学技术已经广泛应用到科学研究的各个领域。其中蛋白质双向电泳(Two-dimensional electrophoresis，2-DE) 是蛋白质组学研究中应用最广泛的分离和鉴定技术手段，能有效地查找差异蛋白[9-10]。基质辅助质量飞行时间质谱技术 (Matrix-assisted laser desorption/ionization time of flight mass spectrometry, MALDI-TOF MS) 具有灵敏度高、准确度高和分辨率高等特点[11-12]，可与多种蛋白质分离方法相结合。目前，2-DE和MALDI-TOF MS已成为许多研究者对差异蛋白质进行比较和鉴定的常用方法。

因此本研究以试验周期为120 d的正常组 (C)、染氟组 (F)、染氟补钙组 (F+Ca) SD大鼠的股骨组织提取的蛋白质为样本，采用蛋白质2-DE和MALDI-TOF MS技术以及生物信息学分析，从蛋白组学水平研究氟和钙对骨组织蛋白表达的影响，分析差异蛋白的功能及关系，在蛋白水平解释钙对骨骼氟中毒缓解的作用机制，为进一步的研究提供理论依据。

1 材料与方法

1.1 实验动物和材料

30只SD雄性大鼠，体重120 g左右，购自山西医科大学实验动物中心。氟化钠 (NaF)、浓盐酸、溴酚蓝和氢氧化钠均为分析纯，购自北京化工厂；RIPA蛋白裂解液和蛋白酶抑制剂 (PMSF) 购自碧云天(Beyotime)公司；IPG胶条购自Bio-Rad公司；胰酶购自Promega公司；快速蛋白银染试剂盒购自中科瑞泰 (北京) 生物科技有限公司。VersaDoc™成像系统 (德国Bio-Rad)、电泳槽 (GE ETTAN DALTsix)、等电聚焦仪 (GE ETTAN IPGPHOR3)、UltrafleXtreme MALDI TOF/TOF质谱仪 (德国布鲁克Bruker Dalton)。

1.2 动物模型

30只大鼠购买后饲喂普通饲料，自由饮水，一周适应性饲养后随机分为3组，分别为C组、F组、F+Ca组，每组10只。动物模型建立按表1进行处理[13]。试验期间所有大鼠均以自由采食和自由饮水的方式饲养，每只每天喂食30 g，采用12 h光照和12 h黑暗，温度控制在22 ℃–25 ℃，湿度控制在55%–60%范围内，定期更换垫料，保证良好的饲养环境，试验周期为120 d[14]。

1.3 骨氟含量测定

取1–1.5 g的股骨中段置于坩埚中，马弗炉灰化后研碎。取研碎的骨灰20–25 mg置于25 mL容量瓶内，加入0.25 mol/L盐酸溶液5 mL使其溶解，然后加一滴溴酚蓝，用0.5 mol/L氢氧化钠溶液中和至刚显蓝色 (pH 4)，加入12.5 mL总离子强度缓冲溶液 (TISAB)，定容[14]。倒出溶液至聚乙烯塑料杯中，待电位平衡后用氟离子电极测定其浓度。用此方法首先建立标准曲线，同时进行样本测定。通过下列公式计算出股骨的氟含量。

=/×25

式中：表示股骨中氟的含量 (μg/g)；为胫骨样品待测液中氟的浓度 (μg/mL；为股骨湿重 (g)；25为待测液总量 (mL)。骨氟结果采用GraphPad Prism 5统计软件的One-way analysis of variance (ANOVA)方法进行，数据表示使用平均值±标准差表示，组间比较使用LSD进行显著性检验，<0.05表示差异显著，<0.01表示差异极显著。

表1 动物模型的建立

1.4 蛋白质提取

参照王簕等对兔骨总蛋白的提取方法[15]，用骨钳截取适量的靠近股骨头近端的大鼠股骨并迅速放入预冷并加有液氮的研钵中，快速研磨至粉末状，然后将粉末状的股骨放入含有RIPA裂解液(按每50 mg骨组织加入200 μL裂解液) 的1.5 mL EP管中，加入与RIPA体积比为99∶1的蛋白酶抑制剂 (PMSF)。振荡2–3 min，然后将EP管置于冰上，静置裂解30 min。4 ℃、12 000 r/min离心15 min，吸取上清用Bradford法定量测定蛋白含量[16]，然后取其上清液分装并置于−80 ℃ 保存。

1.5 双向电泳

等电聚焦：沿着聚焦盘中槽的边缘至左而右线性加入250 μg样品。将IPG胶条 (24 cm pH 4–7) 放入聚焦盘，并一起放入等电聚焦仪中，设置等电聚焦程序。聚焦程序为：无电压水化12 h (20 ℃)；250 V线性升压30 min；500 V快速升压1 h；1 000 V快速升压1 h；10 000 V线性升压5 h；10 000 V快速升压，整个聚焦过程中最终累积增压达到90 000 V/h，完成等电聚焦。该过程结束后胶条进行平衡。

SDS-PAGE：分离胶浓度为12%，电泳条件为10 mA/gel 1 h，20 mA/gel 10–12 h，直到溴酚蓝迁移至分离胶底部。每个样本重复3次。凝胶染色方法为硝酸银染色。

1.6 图像采集及分析

图像采集采用VersaDoc™成像系统，用PDQuest图像软件分析与参考胶相比有特异表达、表达量上调或者下调2.5倍以上的差异蛋白点。

1.7 MALDI-TOF-MS分析

将2.5倍以上的差异蛋白点挖出，用胰酶进行胶内消化后将样品与基质液CHCA (a-氰基-4羟基肉桂酸) 按照1∶1进行混合，取1 μL样品点靶后用UltrafleXtreme MALDI TOF/TOF质谱仪对差异表达的蛋白点进行质谱分析，质荷比 (/) 检测范围设定为350–1 300/，采用正离子和自动获取数据的模式进行数据采集，将所得到的肽片段质量数据通过MASCOT搜索引擎检索，用UniProt数据库检索蛋白质功能。

1.8 GO注释

GO (Gene ontology) 可标准化地统一描述生物体系中基因及其产物的生物学功能。GO共有三级结构 (Ontology)，包括描述基因的分子功能 (Molecular function)、所处的细胞组分 (Cellular component) 以及参与的生物过程 (Biological process)。采用DAVID分析系统对差异蛋白进行GO富集分析[17]。

1.9 差异蛋白的pathway富集分析

差异蛋白ID号导入DAVID分析系统，找出显著性富集的KEGG pathway。通过pathway显著性富集确定差异蛋白参与的最主要生化路径和信号转导途径[17]。

1.10 蛋白质互作网络分析

釆用STRING-Known and Predicted Protein- Protein Interactions数据库进行蛋白质-蛋白质相互作用分析。STRING数据库使用最短的枝干将因子间进行连接，欧氏距离较近说明两个因子性质较近，距离较远说明关联较远。

2 结果与分析

2.1 大鼠生长状况及骨氟含量

对照组大鼠生长状态正常，精神状态良好，被毛正常有光泽，反应灵敏，牙齿完整。染氟组大鼠生长状态较差，精神状态异常，有些出现过度亢奋，被毛暗淡无光泽，牙齿出现白垩样不透明性改变。染氟补钙组大鼠状态均较染氟组状态好，牙齿白垩样不透明状态也有所改善。提示氟中毒对骨相组织有明显的损伤，而补充钙可一定程度上缓解氟对硬组织的毒性作用。各组大鼠骨氟含量见图1，与对照组相比，试验期120 d氟中毒大鼠骨氟含量显著升高 (<0.001)。与氟中毒组相比，氟中毒补钙组大鼠骨氟含量显著降低 (<0.001)。表明补钙对骨骼氟含量的沉积有明显的缓解作用。

2.2 双向电泳图谱分析

经过等电聚焦、SDS-PAGE分离、硝酸银染色以及图像扫描后，分析不同组别差异蛋白的2-DE凝胶图谱 (图2、3、4、5)。经Image Master 2D Platinum software 对2-DE胶分析后，以对照组为参考胶，蛋白表达量在F组和F+Ca组都有差异的蛋白点共鉴定出17种。以C组为参考，其中蛋白表达量在F和F+Ca组均上调且F组上调程度大于F+Ca组的蛋白点为A47 (E135)、A53 (E178)、A76 (E225)、A82 (E243)、A85 (E252)；在F组上调且在F+Ca组下调的蛋白点为A12 (E26)、A23、A45 (E115)、A74 (E224)，这9种差异蛋白点为氟可使蛋白表达显著上调，而钙可以缓解氟中毒所致蛋白表达的上调。在F组下调且在F+Ca组上调的蛋白点为B84 (F61)、B94 (F67)、B125 (F106)；在F组和F+Ca组均下调且F组下调程度大于F+Ca组的蛋白点为B38 (F28)、B72 (F46)、B77 (F56)、B99 (F72)、B106 (F76)，这8种差异蛋白点为氟中毒可使蛋白表达显著下调，而补钙可以抑制氟引起的蛋白表达量下降。括号内为重复点。

图1 各实验组大鼠骨氟含量

图2 F组上调的差异蛋白

图3 F组下调的差异蛋白

图4 F+Ca组上调的差异蛋白

图5 F+Ca组下调的差异蛋白

2.3 差异蛋白点的质谱鉴定

对这17种差异2.5倍以上的蛋白点进行质谱鉴定后，通过MASCOT、NCBI数据库检索和Uniprot蛋白质功能和分类查询，对差异蛋白点进行功能注释和分类 (表2)。蛋白点A53为Ⅰ型胶原蛋白 (Col1a1)、A76为肌球蛋白L链1或 3 (MYL1)、A82是肌球蛋白调节L链2 (MLRS、Mylpf)、B72是肌动蛋白 (Actb)，这4种蛋白质与细胞骨架有关。蛋白点A45为丙酮酸激酶同工酶M1/M2 (KPYM，Pkm)、A47为6-磷酸果糖激酶(K6PF，Pfkm)，二者是能量代谢相关的酶。与细胞凋亡和氧化应激有关的差异蛋白有5种，分别为A12蛋白质谷氨酰胺转移酶2 (Tgm2)、B84膜联蛋白A5 (Annexin A5)、B99胞内氯离子通道蛋白 1 (CLIC1)、B94谷胱甘肽S转移酶ω-1 (GSTO1) 和A23硫氧还蛋白域蛋白12 (Txndc12)。A74为脂质运载蛋白2 (NGAL)、A85为细胞视黄酸结合蛋白1 (RABP1)、B125为视黄醇结合蛋白4 (RET4)，这3种蛋白与物质转运有关。另外B38为白细胞弹性蛋白酶抑制剂A (ILEUA，Serpinb1a)，参与炎症免疫抑制。B106 为CT011蛋白未鉴定出来，其功能仍需进一步研究。以上结果表明，氟中毒主要影响骨组织中细胞骨架的形成、能量代谢及细胞的应激与凋亡，同时影响到物质转运及免疫抑制，而补充钙可以缓解氟的骨骼毒性作用。

表2 差异蛋白点的质谱鉴定结果

2.4 显著差异蛋白的生物信息学分析

2.4.1 GO注释

将17种显著差异蛋白提交至DAVID分析系统，得到差异蛋白质中显著富集的GO条目。按蛋白的富集度进行排序，排名前6位的生物过程中依次有内稳定过程 (13%)、解剖结构的发展 (11%)、小分子代谢过程 (11%)、运输 (11%)、蛋白质复合体组装 (11%)、应激反应 (图6)；在细胞成分中依次是细胞质 (19%)、细胞外空隙 (13%)、蛋白质复合体 (12%)、胞外区 (10%)、细胞器 (10%)、细胞核 (8%)、细胞成分 (8%)、和细胞溶质 (8%) (图7)；在分子功能中依次为离子结合 (41%)、脂质结合 (11%)、酶结合 (11%)、结构分子活性 (7%)、激酶活性 (7%)、氧化还原酶活性 (7%) (图8)。结合差异蛋白质谱鉴定的结果，表明氟中毒重点通过应激反应引起骨骼产生氧化应激、破坏细胞骨架、引起骨细胞炎症反应、细胞内物质转运过程紊乱，最终导致细胞凋亡，而补充钙对氟的骨骼毒性有显著的缓解作用。

图6 骨骼差异蛋白参与的生物过程

图7 骨骼差异蛋白包含的细胞成分

图8 骨骼差异蛋白包含的分子功能

2.4.2 差异蛋白的pathway分析

基于KEGG数据库对差异蛋白基因进行通路注释，得到差异蛋白基因所参与的所有通路。筛选出差异蛋白所参与的38条与骨代谢相关的通路 (表3)。与骨代谢相关的38条通路所涉及到的9种差异蛋白分别为Col1a1、Mylpf、Actb、Pkm、Pfkm、Serpinb1a、Tgm2、Txndc12和Gsto1。有部分差异蛋白参与了多种通路的代谢，如Actb同时参与16条通路，Pkm和Pfkm分别参与了8条通路，Col1a1参与了骨代谢的3条通路。但也有部分差异蛋白只涉及一种骨代谢通路，如Tgm2、Txndc12和Gsto1。在本实验中，Col1a1参与了黏着斑(Focal adhesion，FA )、PI3K-Akt信号通路和ECM-receptor interaction这3条通路，FA是细胞与细胞外基质 (ECM) 的主要连接方式，整合蛋白的集聚可以造成黏着斑激酶 (FAK) 的集合与磷酸化，由此激活整条PI3K/Akt信号通路，维持对细胞及ECM粘附能力，改变细胞骨架，阻止细胞凋亡[18]。氟中毒发生时，影响ECM的形成，导致细胞骨架发生改变，提示钙可能通过这3条通路调节Col1a1缓解骨骼氟中毒。Pfkm参与了AMP-activatedproteinkinase (AMPK) 信号通路，同时调节细胞内能量和代谢平衡，其激活后可以增加ATP的生成。在本实验中，Pfkm在氟中毒中表达量增加，可能会激活AMPK通路，补钙后通过抑制AMPK信号通路中Pfkm的表达缓解氟中毒使Pfkm的表达量降低。

表3 差异蛋白参与的KEGG pathways

2.4.3 差异蛋白交互作用分析

采用 STRING 10.5 检索17种显著差异蛋白质相互作用并建立蛋白互相作用网络图 (图9)，除去DDX3Y和CT011这2种孤立蛋白，显示15种差异蛋白存在相互作用，可以形成网络代谢图。

3 讨论

氟中毒作为全世界广泛存在的一种地方病，主要表现为氟骨症和氟斑牙。有文献报道，氟可能是通过mTOR自噬通路、凋亡通路、PI3K/Akt通路、p38MAPK信号通路、Sema4D/Plexin-B1信号通路和刺猬(Hh) 信号通路等引起机体氟中毒[19-21]。研究报道，钙作为氟的一种拮抗剂，可能通过调节内质网应激、线粒体通路和Wnt信号通路等缓解氟中毒[7,22]。本实验通过2-DE和MALDI-TOF MS筛选分析F及Ca对骨组织蛋白的差异表达。结合UniProt数据库、GO注释、KEGG pathway与STRING蛋白互作网络分析，鉴定出17种差异蛋白，38条骨代谢信号通路，且对17种差异蛋白的功能进行分析，发现氟中毒及钙对骨组织的作用机制可能与细胞骨架、能量代谢、物质转运、离子通道及细胞凋亡等有关。

骨组织由多种骨细胞和ECM构成，研究表明氟可以影响软骨和骨骼的胶原代谢[4,23]。Col1a1是ECM中重要的结构蛋白，具有调控胶原纤维形成、组织分化、损伤修复、为骨基质提供矿化支架等多种功能[24]。Actb是一种高度保守的细胞骨架蛋白，参与多种代谢通路，也是细胞骨架重塑引起细胞分裂的关键[25]，所以在细胞分泌、吞噬、移动、胞质流动和胞质分离、神经的形成和细胞凋亡等过程中起重要作用。Mylpf也是细胞骨架的组成成分，并参与细胞质流动、细胞器运动、物质运输、有丝分裂、胞质分裂等过程并为细胞的顶端生长等提供所需的力[26]。黏着斑 (FA) 可以保持细胞正常结构和正常功能的稳定和发挥[27]，也可以连接细胞与ECM，而黏着斑激酶 (FAK) 的集合与磷酸化可以激活整条 PI3K/Akt 信号通路，维持对细胞及ECM粘附能力，阻止细胞凋亡[19]。在本研究中氟影响ECM的形成，导致细胞骨架发生改变，引起Col1a1和Mylpf上调、Actb表达量降低；加钙后，细胞骨架得以修复，Col1a1和Mylpf表达量上升、Actb下调。有研究显示，PI3K/Akt信号通路可改变破骨细胞的骨架、分化、游走和存活[20]，而氟化钠可以通过P13K/Akt信号转导系统对人成骨细胞进行调控[28]，与本研究的结果一致。提示钙可能通过调节P13K/Akt通路中Col1a1、Mylpf及Actb的表达缓解骨骼氟中毒。

图9 差异蛋白质网络分析

Tgm2可通过诱导蛋白质之间发生交联、转氨基和脱氨基等作用催化Ca2+依赖蛋白的转录后修饰[29-30]，参与机体伤口愈合、自身免疫性疾病、肿瘤生长和氧化应激反应等诸多病理反应[31-32]，在炎症病变组织和炎症刺激下细胞中的Tgm2表达升高。另外Tgm2表达可以激活酪氨酸激酶FAK，活化抗凋亡信号通路如P13/AKT等，促进细胞增殖[33]。在本实验中，氟中毒导致Tgm2显著上调，加钙后Tgm2表达量显著下降，这与PI3K-Akt信号通路中Tgm2表达激活酪氨酸激酶FAK的研究结果相一致[33]。提示钙可能通过调控Tgm2激活P13/AKT等通路缓解氟中毒，具体机制需进一步验证。

GSTO1在谷胱甘肽循环中具有单甲基砷酸 (MMA5+) 还原酶、硫醇转移酶和谷胱甘肽依赖的脱氢抗坏血酸还原酶活性[34]。Board等[35]和Menon等[36]分别在小鼠抗辐射细胞内和炎症反应、结肠炎和肥胖症模型中发现GSTO1表达显著升高，表明GSTO1在氧化应激中有非常重要的作用。本课题组在前期体外研究沉默GSTO1基因后低剂量氟对成骨细胞自噬增强，凋亡减少[37]，与本实验结果不一致，其原因可能是低剂量氟的刺激作用和高剂量氟的毒性作用正好相反，具体机制有待进一步研究。

Serpinb1a是由白细胞受到炎症刺激而释放出的一种保护性的抗炎免疫调节剂，参与了阿米巴病 (Amoebiasis) 的代谢途径。有研究指出缺乏Serpinb1a (Sb1a-/-)的小鼠肺部感染的敏感性增加[38]。在本实验中，Serpinb1a在氟组表达量显著降低，加钙后表达量有所上升。Ashida等发现前列腺上皮内瘤变(PIN)和前列腺癌的全基因组基因表达谱中Serpinb1a显著下调[39]，这与本研究结果相一致。提示氟可能通过调节Serpinb1a引起感染，而钙可以抑制Serpinb1a蛋白的表达减轻骨骼炎症反应从而缓解氟中毒。

综上所述，17种差异蛋白参与不同的骨代谢信号通路，钙可能通过这些途径进而缓解氟对骨组织细胞的损伤。由于目前的研究仅仅是蛋白质组学初筛试验，这些差异表达蛋白与其相关的信号转导通路还需要进一步深入研究。

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Separation and identification of differential protein in rat’s bone with fluorosis and calcium supplementation intervention

Jinming Wang1, Huimiao Xu1, Zipeng Yan1, Jiarong Yang1, Yaya Zhu1, Xiaofang Cheng2, and Jundong Wang1

1College of Animal Science and Veterinary Medicine, Shanxi Agricultural University, Taigu 030801,Shanxi, China 2 College of Arts and Sciences, Shanxi Agricultural University, Taigu 030801,Shanxi, China

In order to explore the mechanisms underlying the calcium alleviating fluorosis at protein level, we made an attempt to establish fluorosis and calcium supplementation rat models to isolate and identify bone differential proteins. The bone proteins of different groups were compared by two-dimensional electrophoresis (2-DE) and mass spectrometry (MALDI-TOF MS), and analyzed by gene ontology annotation, pathway enrichment and interaction networks. The 17 proteins were identified in the fluorosis group (F) and the fluorosis calcium supplement group (F+Ca), including type I collagen (Col1a1), actin (Actb), protein glutamine transferase 2 (Tgm2), compared with the control group (C). These differential proteins are enriched in 38 bone metabolic pathways such as focal adhesion, PI3K-Akt signaling pathway, and AMPK signaling pathway. And the functions of these proteins are mainly related to cytoskeleton, energy metabolism, substance transport, ion channel, and apoptosis. Therefore, it is speculated that calcium may alleviate the fluoride-induced bone damage by regulating the focal adhesion, PI3K-Akt, AMPK and other signaling pathway, but the specific mechanism needs further research.

fluorosis, calcium, bone tissue, two-dimensional electrophoresis (2-DE), differential expressed proteins

November 29, 2018;

March 4, 2019

National Natural Science Foundation of China (No. 31001089), National Science Foundation of Shanxi Province (No. 2014011027-3).

Jinming Wang. Tel: +86-354-6288335; E-mail: jm50408@163.com

国家自然科学基金 (No. 31001089)，山西省自然科学基金 (No. 2014011027-3) 资助。

2019-03-20

http://kns.cnki.net/kcms/detail/11.1998.q.20190318.1314.003.html

10.13345/j.cjb.180497

王金明, 徐慧淼, 闫子鹏,等. 氟中毒及补钙干预大鼠骨骼差异蛋白的分离与鉴定. 生物工程学报, 2019, 35(6): 1097–1108.

Wang JM, Xu HM, Yan ZP,et al. Separation and identification of differential protein in rat’s bone with fluorosis and calcium supplementation intervention. Chin J Biotech, 2019, 35(6): 1097–1108.

(本文责编 陈宏宇)