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卷丹百合珠芽发育进程中矢车菊素的积累动态

2019-03-27张丽萍唐道城

安徽农业科学 2019年6期
关键词:卷丹珠芽矢车菊

张丽萍,张 恪,唐 楠,唐道城

(青海大学高原花卉研究中心,青海省园林植物重点实验室, 青海西宁 810006)

卷丹百合(Liliumlancifolium)属百合科百合属卷瓣组,在我国广泛分布。珠芽是卷丹百合特有器官,是由腋芽发育而成的小鳞茎,紫色,富含多种营养物质和花青素。花青素是广泛存在于植物中的水溶性色素,种类多样,结构复杂,从而导致植物的花和果实等呈现多种色彩[1-2]。花青素并不是一直存在于植物组织中,而是在特定的发育时期才合成[3-4]。目前国内关于卷丹百合的研究主要集中于鳞片繁殖、组织培养和脱毒快繁技术、高产栽培技术[5-7]等方面。Markakis[8]首次将HPLC法应用于单个花色苷的分离;叶兴乾等[9]采用纸层析、高效液相色谱(HPLC)、光谱分析等方法对荸荠种杨梅的花色苷进行研究,分离鉴定出其主要成分为矢车菊花色苷元-3-葡萄糖苷。由于花青素的结构类型多,其成分复杂,易受提取分离的仪器、分离柱及温度等的影响,因此在利用HPLC法测定花青素之前需要进行色谱条件的筛选与优化。笔者利用HPLC法测定卷丹百合珠芽中的矢车菊素-3-O-葡萄糖苷含量,首先对HPLC的色谱条件进行优化,然后对不同发育期珠芽提取物中的矢车菊素-3-O-葡萄糖苷含量进行测定,旨在了解珠芽发育进程中矢车菊素的动态变化,以期为卷丹百合珠芽中花青素开发利用提供理论依据。

1 材料与方法

1.1材料与试剂材料:珠芽采自互助县威远镇青海互丰农业科技集团公司实验田,实验田土壤为栗钙土,年平均温度4.5 ℃,平均降水量约400 mm。

标准品:矢车菊素-3-O-葡萄糖苷标准品纯度≥95%(SIGMA公司)。

1.2仪器与设备高效液相色谱仪(Agilent 1260)、C18固相色谱柱(5 μm,4.4 mm×150 nm Agilent ZORBAX SB-C18)、上海申顺科技R-21旋转蒸发仪。

1.3试验方法

1.3.1采样。从珠芽形成起始叶节,由下向上,对各株第3~5叶节的珠芽进行定位取样。每14 d取珠芽样1次,每次取3个重复,每重复至少30粒。

1.3.2标准液的制备。准确称取1.00 mg标准品矢车菊素-3-O-葡萄糖苷溶于1.00 mL 1%盐酸甲醇溶液中配制成1 mg/mL的标准溶液,然后用1%盐酸甲醇溶液稀释成2、10、20、50、100 μg/mL标准品待测液,置于-20 ℃冰箱中备用。

1.3.3样品待测液的制备。参考文献[10-16]的方法并加以改进,将珠芽冰上迅速切碎混合后液氮研磨成粉末,置于-80 ℃超低温冰箱中保存。取1.0 g珠芽粉末,加入提取液(体积分数1%盐酸甲醇)40 mL,4 ℃下静置萃取48 h,取上清液用滤纸粗滤,旋转蒸发浓缩,0.45 μm微孔滤膜过滤,用体积分数1%盐酸甲醇定容至25 mL,供上样用。

1.4试验设计筛选HPLC的测定条件时以标准品矢车菊素-3-O-葡萄糖苷50 μg/mL进行检测。

1.4.1流动相初选。Ⅰ.V(1%甲酸水溶液)∶V(1%甲酸乙腈溶液)=94∶6[10];Ⅱ.V(0.04%甲酸水溶液)∶V(乙腈)=95∶5[11];Ⅲ.V(4%磷酸水溶液)∶V(乙腈)=88∶12(pH2.0)[12];Ⅳ.V(10%醋酸水溶液)∶V(1%甲酸乙腈溶液)=90∶10[13];Ⅴ.V(2%甲酸水溶液)∶V(乙腈)=94∶6[14];Ⅵ.V(0.5%甲酸水溶液)∶V(乙腈)=88∶12[15];Ⅶ.V(10%甲酸水溶液)∶V(甲醇)∶V(乙腈)=94∶3∶3[16]。

1.4.2波长选择。波长设定为510、515、520、525、530、535、540、545 nm。

1.4.3柱温选择。柱温设定为20、25、30、35、40、45 ℃。

1.4.4流速选择。流速设定为1.2、1.0、0.8、0.5、0.3 mL/min。

1.4.5矢车菊素定性分析。利用该试验优化确定的Agilent ZORBAX SB-C18柱;流动相A(0.04%甲酸水溶液)∶B(乙腈)=95∶5;流速0.5 mL/min;检测波长520 nm;自动进样10 μL;柱温35 ℃,采用梯度洗脱,对标准品进行测定。

1.4.6矢车菊素定量分析。将5个不同浓度的标准品进行检测。以峰面积为纵坐标(y),矢车菊色素浓度为横坐标(x),得到花青素标准曲线的线性回归方程及相关系数。

1.4.7回收率测定。分别精确吸取一定量的标准品溶液,加入到已知量的样品中,按测定样品含量的方法,测得3个浓度标准品的平均回收率。

1.4.8精密度测定。取同一批次的珠芽样品溶液10 μL,连续进样5次(n=5),测定样品花青素中矢车菊素-3-O-葡萄糖苷的峰面积,计算精密度RSD。

2 结果与分析

2.1珠芽的发育进程由图1可知,当植株叶节生长到12~14节时,珠芽开始形成,珠芽集中分布在12~60个叶节。 从珠芽形成到形态发育成熟约经历91 d。珠芽形成过程大致可以分成“鱼雷期”“胎儿期”和“球形期”3个时期(图1),进入球形期后标志着形态发育基本“成熟”,并开始脱落。

注:a.鱼雷期;b.胎儿期;c.球形期Note:a.Torpedo period;b.Fetal period;c.Spherical period.图1 卷丹百合珠芽的形态变化Fig.1 The morphological changes of bulblet from Lilium lancifolium

2.2HPLC测定参数的优化

2.2.1流动相。通过对7个流动相的保留时间、峰宽、峰高、峰面积及对称因子等(表1)各因素的综合考虑,初步选择流动相Ⅱ作为较优流动相。由于流动相Ⅱ中的乙腈价格较高,后将乙腈换为甲醇,改后对出峰时间和峰面积均无不良影响。

表1 7个流动相色谱参数

2.2.2波长。由表2可知,波长520 nm处的峰高和峰面积最大,其余参数与各波长相近,故选择520 nm作为优选波长。

表2 HPLC法不同波长色谱参数

2.2.3柱温。选择峰面积率最高、对称因子较高的35 ℃作为优选柱温(表3)。

表3 不同柱温色谱参数

2.2.4流速。由表4可知,流速0.5 mL/min时出峰时间适中(9.655 min),峰高适宜(72.470),峰面积率较高(76.21%),因此选用流速0.5 mL/min。

表4 不同流速色谱参数

2.2.5矢车菊素定性分析。利用该试验优化的色谱条件,对标准品矢车菊素-3-O-葡萄糖苷(C3G)进行测定,色谱图见图2。由图2可知,矢车菊素的保留时间为(15.923 0±0.275 8)min。

图2 标准品色谱图Fig.2 Standard chromatogram

2.2.6矢车菊素定量分析。以峰面积为纵坐标(y),矢车菊色素浓度为横坐标(x),得到花青素标准曲线(图3)的线性回归方程及相关系数:y= 24.227x+5.390 3,R2=0.999 8。线性范围为2~100 μg/mL,检出限为0.34 μg/mL。

图3 花青素标准曲线Fig.3 The standard curve of Anthocyanin

2.2.7回收率和精密度。矢车菊素的回收率为102.5%,峰面积的RSD=1.07%(n=5)。

2.3卷丹百合珠芽发育过程中矢车菊素-3-O-葡萄糖苷含量分析由图4可知,卷丹百合珠芽内的矢车菊素含量随着珠芽发育时间的延长,呈双峰递增趋势。从肉眼可见(2 mm)起,生长7 d后其花青素含量达36.08 mg/kg,当珠芽生长到21 d时,含量达140.98 mg/kg,出现第一个“小高峰”;第21天后,珠芽的矢车菊素-3-O-葡萄糖苷含量略有下降,第49~91天,矢车菊素-3-O-葡萄糖苷含量急剧增加,至91 d时,珠芽内矢车菊素-3-O-葡萄糖苷含量达344.76 mg/kg,且不再增加。因此,珠芽发育至91 d是采集珠芽提取矢车菊素3-O-葡萄糖苷的最佳时间。此时珠芽形态发育基本成熟,每个珠芽平均重量0.048 08 g,每株平均生长29.27粒珠芽,平均每粒珠芽含矢车菊素-3-O-葡萄糖苷16.576 0 mg/kg,平均每株含矢车菊素-3-O-葡萄糖苷485.181 3 mg/kg。

图4 卷丹百合珠芽发育进程中矢车菊素-3-O-菊萄糖苷积累量Fig.4 The accumulation of cyanin during bulbet development of Lilium lancifolium

3 结论与讨论

在青海年平均气温5.5~8.0 ℃的地区,卷丹百合露地栽培地上部生长期180~190 d,且休眠鳞茎在-15.0 ℃下能安全越冬。出苗后45~60 d,叶腋珠芽开始形成,发育持续时间约91 d,形成过程大致可以分成“鱼雷期”“胎儿期”和“球形期”3个时期,进入球形期后可作为“种子”或其他用途收获。该试验对Agilent 1260高效液相色谱仪测定卷丹百合珠芽矢车菊素-3-O-葡萄糖苷进行条件优化,优化后的条件与Markakis[8]、叶兴乾等[9]对其他植物矢车菊花色苷元-3-葡萄糖苷的分离测定条件有较大差异。利用优化条件对卷丹百合珠芽不同发育时间的矢车菊素-3-O-葡萄糖苷含量进行测定,结果表明,矢车菊素-3-O-葡萄糖苷含量随着珠芽发育时间的延长,呈“双峰”递增趋势,这主要与珠芽不同发育阶段的发育中心有关,在第7~21天珠芽中的矢车菊素-3-O-葡萄糖苷含量随珠芽体积增大而增加,到第21天,珠芽基本形态已经建成,而珠芽中的矢车菊素-3-O-葡萄糖苷含量也出现第一个高峰,第21天后珠芽发育中心开始转入中心芽即生长点的形成,部分已经积累的养分向发育中心转移,导致此阶段珠芽中的矢车菊素-3-O-葡萄糖苷含量略有下降,至第41天中心芽形态分化结束,并进入整个珠芽内含物积累与充实阶段,珠芽中的矢车菊素-3-O-葡萄糖苷含量又快速增加,但91 d达到第2个高峰,这与陈越等[17]对卷丹百合珠芽内多糖、总皂苷、酚类和生物碱含量的变化规律研究结果一致。珠芽生长至91 d基本完成形态成熟,矢车菊素-3-O-葡萄糖苷含量不再增加,达344.76 mg/kg,此时是采集珠芽提取花青素的最佳时间。矢车菊素是花青素的重要成分,具有重要的医药价值和保健价值, 同时还具有抗炎症、抗肿瘤[18]等多种生物学活性的功效和具有改善缺铁性贫血、降低血脂、预防动脉粥样硬化、抗疲劳、抑制癌细胞的作

用[19-20]等。卷丹百合珠芽含有较丰富的花青素类各种成分,充分利用生长过程中的副产品,开发与花青素相关的医药和保健产品,对于增加卷丹百合的利用价值和收益具有十分重要的意义。

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