黄芪多糖对大鼠T淋巴细胞顺铂处理后自噬的影响
2018-06-06王楠陆金华林胜友
王楠 陆金华 林胜友★
黄芪多糖是中药黄芪的主要活性成分之一,具有介导宿主免疫反应,对抗化疗引起的免疫抑制,提高宿主免疫力,降低化疗药物对机体伤害作用等功能[1-2]。T淋巴细胞介导的细胞免疫是肿瘤免疫的主要组成部分,而采用化疗药物治疗会对T淋巴细胞产生一定的毒害作用,影响细胞免疫[3-4]。细胞凋亡和自噬都是生物体内高度保守的生物过程,而这两个通路中有部分成分可以相互作用,同时可以被相同的刺激诱导发生。化疗药物能够增强机体T淋巴细胞的自噬,同时引起T淋巴细胞凋亡。本资料主要拟研究黄芪多糖对大鼠T细胞顺铂处理后自噬相关基因mRNA与蛋白表达以及细胞凋亡的影响,探究黄芪多糖是否能够对顺铂引起的T细胞自噬和凋亡产生抑制作用,对抗化疗引起的T细胞损伤。
1 材料和方法
1.1 实验器材 试剂:黄芪多糖标准品购自上海源叶生物有限公司,顺铂注射液购自Hospira(H20090521),RPMI 1640(Gibco),Fetal Bovine Serum(Gibco),1%青霉素-链霉素混合液(Hyclone公司),Quick Start™ Bradford Protein Assay(BioRad 公 司 ),anti-CD3 APC,anti-CD4 PE,anti-CD8 FITC均购自CST,Anti-GAPDH (Sigma:G8795),Anti-Caspase3 (CST:9662),Anti-Class I PI3K (SantaCruz:SC7189),Anti-Class III PI3K (SantaCruz:SC134986),Anti-Apg5 (SantaCruz:SC33210),Anti-Beclin1 (CST:3459),Anti- mTOR (SantaCruz:SC8319),Anti-LC3I/II(Sigma:L7543),Goat anti-Rabbit IgG-HRP(Life Tech公司),TRIzol试剂(Invitrogen),PrimeScriptTM RT Master Mix (Takara),Amersham ECL Prime Western Blotting Detection Reagent(RPN2236);Annexin V-FITC(Cell signaling)。仪器:CFX Connect Real-Time System(Biorad);NanoDrop 2000(Thermo Scientific公 司 );二氧化碳培养箱(Thermofisher);全波长酶标仪(SpectraMax Plus 384型,美国MD);Mini-Proten Tetra System(Bio-RAD)。
1.2 大鼠脾脏T淋巴细胞分离和培养 取6~8周龄SD大鼠,在无菌条件下取脾脏,采用手术剪将其剪至5mm×5mm小块,并用载玻片研碎,加入PBS制作成脾脏细胞悬液,采用200目筛过滤,收集单细胞滤液并采用1500rpm离心5min沉淀细胞,采用PBS重悬后滴加至等体积的淋巴细胞分离液中,1900rpm水平离心20min,收取淋巴细胞层,加入5倍体积细胞洗涤液漂洗,1500rpm离心5min并收集淋巴细胞沉淀,采用RPMI1640加10%FBS及1×青链霉素混合液重悬细胞,调整细胞密度至1×106/ml,5% CO2条件下37℃恒温湿式培养。
1.3 流式细胞术检测T细胞类型及细胞凋亡 T细胞类型检测:取新分离的大鼠脾脏T淋巴细胞,细胞计数后400g离心3min收集50万细胞,采用100μl 1%BSA重悬细胞,加入anti-CD3 APC,anti-CD4 PE,anti-CD8 FITC各2.5μl,混匀后4℃孵育30min,再加入1ml预冷的PBS洗去多余抗体,400g离心5min,再加入300μl PBS重悬细胞,采用BD FACSCalibur流式细胞仪检测anti-CD3 APC,anti-CD4 PE,anti-CD8 FITC,收集1万个细胞信号,并采用FlowJo 7.6进行数据分析。细胞凋亡检测:取新分离的大鼠脾脏T淋巴细胞1×107个,分别采用(1)等体积的PBS。(2)625μg/ml的黄芪多糖。(3)40μm的顺铂。(4)40μm顺铂加625μg/ml的黄芪多糖处理24h,离心收集细胞,计数,取50万个细胞采用100μl 1%BSA重悬,加入Annexin V-FITC 2.5μl,Propidium Iodide (PI)1μl在4℃双染30min,再加入1ml预冷的PBS洗去多余抗体,400g离心5min,再加入300μl PBS重悬细胞,采用BD FACSCalibur流式细胞仪检测Annexin V-FITC,Propidium Iodide,采用FlowJo 7.6进行数据分析。
1.4 荧光定量PCR 取新分离的大鼠脾脏T淋巴细胞4×107个,按1.3方法处理12h和24h,离心收集细胞。采用TRIzol试剂(Invitrogen)提取淋巴细胞总RNA,并用NanoDrop 2000对提取的RNA进行定量。采用PrimeScriptTM RT Master Mix (Takara)进行cDNA合成。荧光定量PCR试剂盒为SuperReal PreMix Color(SYBR Green),在CFX Connect Real-Time System(96孔)上进行qRT-PCR反应并用BIO-RAD CFX Manager 3.1进行数据分析,反应程序为:50℃ 2min;95℃ 10 min;95℃ 15 s,60℃ 1 min,循环40次。采用GAPDH基因作为内参,每个样品测定3次,目的基因表达量变化采用与GAPDH基因循环阈值比较进行确定。
1.5 免疫印迹实验 取新分离的大鼠脾脏T淋巴细胞3×107个,按1.3方法处理12h和24h,离心收集细胞。采用100μl IP裂解液裂并加入蛋白酶抑制剂cocktail(Roche公司)4℃裂解过夜,在4 ℃ 13000rpm离心30min收集含蛋白上清液,采用Quick Start™ Bradford Protein Assay进行蛋白定量,最后调整蛋白浓度为2μg/μl后冻存在-80℃备用。Western blot垂直电泳条件为10% Gel,上层胶80V,下层胶120V,转膜条件为80V 100min,封闭液为5% non-fat milk(Biorad公司),一抗为Anti-TUBULIN (SantaCruz:SC5286),Anti-Caspase3 (CST:9662),Anti-Class I PI3K (SantaCruz:SC7189),Anti-Class III PI3K (SantaCruz:SC134986),Anti-Atg5 (SantaCruz:SC33210),Anti-Beclin1 (CST:3459),Anti- mTOR (SantaCruz:SC8319),Anti-LC3I/II(Sigma:L7543),二抗为Goat anti-Rabbit IgG-HRP(Life Tech公司),显色液为Amersham ECL Prime Western Blotting Detection Reagent(RPN2236)。
1.6 统计学方法 采用SPSS 19.0统计软件。计量资料以()表示,采用独立样品t检验,P<0.05为差异有统计学意义。
2 结果
2.1 大鼠脾脏T淋巴细胞的分离和鉴定 取6~8周龄SD大鼠脾脏,研磨后采取淋巴细胞分离液分离淋巴T细胞,采用流式细胞术鉴定,结果如图1所示,分离得到CD3+淋巴细胞占总细胞比例为67.9%,其中CD3+CD4+T淋巴细胞比例为27.9%,CD3+CD8+T淋巴细胞比例为64.2%。
2.2 黄芪多糖对顺铂处理后T淋巴细胞自噬相关基因表达影响 取新鲜分离的大鼠脾脏T淋巴细胞,分为空白对照组(加等体积的PBS),顺铂组(加40μm的顺铂),黄芪多糖组(加625μg/ml的黄芪多糖),黄芪多糖顺铂组(40μm顺铂加625μg/ml的黄芪多糖处理),分别处理12h和24h,离心收集细胞,提取总RNA进行荧光定量PCR检测mTOR﹑ClassI PI3K﹑ClassIII PI3K﹑Atg5﹑Beclin1的表达量。结果见表1﹑2。
表1 药物处理12h后大鼠脾脏T淋巴细胞自噬相关基因表达变化[n=3,()]
表1 药物处理12h后大鼠脾脏T淋巴细胞自噬相关基因表达变化[n=3,()]
注:与空白对照组比较,*P<0.05,**P<0.01;与顺铂组比较,#P<0.05,##P<0.01
组别 ATG5 ClassⅢ PI3K ClassⅠPI3K mTOR Beclin1空白对照组 1.00±0.00 1.00±0.00 1.00±0.00 1.00±0.00 1.00±0.00顺铂组 1.35±0.05 * 3.21±0.18 ** 2.55±0.13** 1.95±0.12** 1.75±0.08**黄芪多糖组 0.95±0.04 1.18±0.09 1.23±0.07 1.11±0.09 1.05±0.06顺铂黄芪多糖组 1.16±0.04 *# 2.56±0.13 **## 1.78±0.15**# 1.43±0.08*# 1.35±0.07*#
表2 药物处理24h后大鼠脾脏T淋巴细胞自噬相关基因表达变化[n=3,()]
表2 药物处理24h后大鼠脾脏T淋巴细胞自噬相关基因表达变化[n=3,()]
注:与空白对照组比较,*P<0.05,**P<0.01;与顺铂组比较,#P<0.05,##P<0.01
组别 ATG5 ClassⅢPI3K ClassⅠPI3K mTOR Beclin1空白对照组 1.00±0.00 1.00±0.00 1.00±0.00 1.00±0.00 1.00±0.00顺铂组 2.95±0.24** 3.56±0.23** 2.41±0.15** 3.45±0.26** 2.86±0.19**黄芪多糖组 0.93±0.05 1.12±0.08 1.21±0.08 1.02±0.05 1.01±0.05顺铂黄芪多糖组 1.38±0.06*# 3.08±0.19**## 2.14±0.25**## 1.67±0.11**## 1.85±0.15**##
2.3 黄芪多糖对顺铂处理后T淋巴细胞自噬相关蛋白表达影响 如图2所示,顺铂处理T淋巴细胞12h或24h后,自噬相关蛋白Atg5﹑Beclin1﹑LC3表达量明显上升,同时凋亡相关蛋白Caspase-3蛋白表达也明显上升,而ClassI PI3K﹑ClassIII PI3K﹑mTOR蛋白表达下降,表明顺铂处理导致T淋巴细胞自噬和凋亡增加。采用黄芪多糖处理T淋巴细胞后相关蛋白表达变化不明显,而顺铂加黄芪多糖处理T淋巴细胞12h和24h后,自噬相关蛋白Atg5﹑Beclin1﹑LC3表达明显低于顺铂组,同时凋亡相关蛋白Caspase-3表达也明显降低,而ClassI PI3K﹑ClassIII PI3K﹑mTOR表达上升,表明黄芪多糖能够抑制顺铂导致的T淋巴细胞自噬和凋亡。
图1 大鼠脾脏T淋巴细胞鉴定结果
2.4 黄芪多糖对顺铂处理后T淋巴细胞凋亡的影响 如图3所示,在Annexin V-FITC 和Propidium Iodide (PI)双阳性的细胞中,顺铂组双阳性细胞比例为15.8%,正常对照组为5.55%,黄芪多糖组为8.77%,顺铂黄芪多糖组为11.2%,表明黄芪多糖能够改善顺铂引起的T细胞凋亡发生。
图2 黄芪多糖对顺铂处理后T淋巴细胞自噬相关蛋白表达影响
图3 黄芪多糖对顺铂处理后T淋巴细胞凋亡的影响
3 讨论
越来越多的证据表明,细胞自噬和凋亡可以相互作用,拮抗或者协同,影响细胞命运,自噬和凋亡相关的关键分子存在交叉及相互作用。Insulin-IGF-1信号减弱,营养或能量限制等细胞代谢压力会导致mTOR活性下调,引起mRNA转录抑制以及自噬,同时mTOR的下游分子还包括p53,BAD和BCL-2等凋亡相关分子。Beclin 1是酵母Atg6基因的同系物,多方面证据显示Beclin 1参与了自噬和凋亡的相互作用,研究表明Beclin 1和抗凋亡相关蛋白BCL-2,BCL-XL之间有功能上和结构上的相互作用[5-6]。细胞凋亡引起的Caspase激活可以裂解Beclin 1和PI3K等。前期研究表明,T淋巴细胞在化疗药物作用后,会产生过多的自噬,并且凋亡也会增加。
本研究通过分离大鼠脾脏T淋巴细胞并在体外培养,采用黄芪多糖和顺铂处理,研究黄芪多糖对顺铂引起的T淋巴细胞自噬和凋亡的影响。结果表明,顺铂能够引起T淋巴细胞自噬相关基因mTOR﹑ClassI PI3K﹑ClassIII PI3K﹑Atg5﹑Beclin1的mRNA表达上升,并且处理24h上升效果明显高于12h,而采用黄芪多糖加顺铂处理后,自噬相关基因的mRNA表达量与空白对照组相比仍然有上升,但是与顺铂组相比,其自噬相关基因mRNA的表达量明显下降,表明黄芪多糖对顺铂引起的T淋巴细胞自噬相关基因表达具有抑制作用。在Western blot检测中,采用顺铂处理后自噬相关蛋白Atg5﹑Beclin1﹑LC3和凋亡相关蛋白Caspase-3均有明显升高,同时ClassI PI3K﹑ClassIII PI3K﹑mTOR表达降低,而在加入黄芪多糖后,Atg5﹑Beclin1﹑LC3﹑Caspase-3表达与顺铂组相比有不同程度下降,而ClassI PI3K﹑ClassIII PI3K﹑mTOR表达上升,表明黄芪多糖对顺铂引起的T细胞自噬相关蛋白表达有抑制作用,同时对细胞凋亡也有抑制。通过流式细胞检测发现Annexin V-FITC 和Propidium Iodide(PI)双阳性凋亡细胞在顺铂处理后明显多于正常对照组,而加入黄芪多糖后明显降低,表明黄芪多糖可以降低顺铂引起的T细胞凋亡。
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