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抑制Akt/PKB信号通路促进缺氧诱导的人牙周膜成纤维细胞凋亡

2018-04-12刘惠莉

实用口腔医学杂志 2018年2期
关键词:明显提高牙周炎单抗

刘惠莉

牙周炎是一类高发性的口腔炎症疾病,严重危害人类口腔健康,并与全身健康和诸多疾病有着密切的关系,在全球有着极高的发病率[1]。

近年来研究发现牙周炎主要是厌氧菌的混合感染,缺氧环境更有利于厌氧型致病菌的生长和繁殖,因此缺氧环境会加重牙周炎病变过程,影响牙周组织的防御和修复,并直接诱导牙周组织细胞的凋亡[2]。牙周膜成纤维细胞(hPDLFs)是牙周组织内的主要组成成分,其生物活性与牙周炎的发生密切相关[3]。

缺氧诱导的hPDLFs凋亡与牙周炎密切相关[4]。缺氧诱导因子-1(HIF-1)由α和 β两个亚基组成,HIF-1α蛋白在细胞核中表达,常氧条件下迅速降解。在缺氧的条件下,HIF-1α含量则显著提高,与含缺氧反应元件的下游基因结合,激活缺氧应答基因调控系统的缺氧应答反应[5]。

本文主要研究在缺氧条件下,抑制Akt/PKB信号通路对hPDLFs凋亡的影响,为进一步阐明牙周炎的发病机制提供理论基础。

1 材料与方法

1.1 主要实验材料与仪器

hPDLFs(BioWhittaker公司,美国);DMEM培养基(Gibco公司,美国);厌氧产气袋AnaeroPack(三菱公司,日本);FITC-Annexin V、Propidium Iodide(BD Biosciences Pharmingen公司,美国);Lipofectamine 2000转染试剂盒、si-Akt、si-control(Introvigen公司,美国);Fast SYBR Green mastermix kit(Applied Biosystems公司,美国);HIF-α单抗、pAktser473单抗、t-Akt单抗、βactin抗体及酶标二抗(CST公司,美国);流式细胞仪(BD公司,FACSCalibur,美国);PCR仪 (ABI公司,9700,美国)。其他常用试剂购自上海生工公司。

1.2 细胞培养

从液氮中快速取出hPDLFs,复苏后,用含有4 ml DMEM培养基的25 cm2的培养瓶在37℃、5%CO2培养箱中培养,24 h后更换培养基继续培养。

1.3 细胞缺氧处理

将hPDLFs接种入培养瓶,放入厌氧产气袋AnaeroPack,产生CO2,减少氧气含量至1%左右,扎口密封,放入细胞二氧化碳培养箱培养48 h。

1.4 细胞转染

取hPDLFs以7.5×104/孔的密度接种于6孔板中,5%CO2、37℃的培养箱中进行培养4 h。采用Lipofectamine 2000转染试剂盒转染,分别将si-Akt和si-control转染至细胞中,转染48 h后,收集细胞用于后续实验。

1.5 流式细胞仪检测细胞凋亡

取稳定转染和缺氧48 h处理的hPDLFs,培养48 h后收集并消化细胞,接种在6孔板中,PBS洗涤3次,使用500μl binding buffer重悬细胞,调整细胞浓度为1×105/孔,各孔加入5μl Annexin V-FITC和5μl PI混匀,室温避光放置10 min,流式细胞仪检测细胞的凋亡率。

1.6 qRT-PCR

取稳定转染和缺氧48 h处理的hPDLFs常规培养,用TRIzol试剂提取细胞中的总RNA。以提取的RNA为模板,反转录成cDNA。加入荧光染料SYBR Green,在ABI 7900 qRT-PCR系统,以U6 snRNA为相对定量的内参进行HIF-1α蛋白mRNA的扩增。

1.7 Western blot检测蛋白表达

取稳定转染和缺氧48 h处理的hPDLFs,培养48 h后消化收集,加入RIPA裂解液提取总蛋白,进行12%的SDS-PAGE电泳,将分离的蛋白转膜,5%脱脂奶粉室温封闭1 h后,将单抗HIF-α、p-Akt、t-Akt、Bcl-2、Bax在4℃条件下孵育过夜,加入二抗(辣根过氧化物酶标记),室温孵育1 h,ECL显影检测蛋白表达。

1.8 MTT法检测细胞增殖

取稳定转染和缺氧48 h处理的hPDLFs进行消化收集,以1×105/孔的密度接种于96孔板中,37℃、5%CO2条件下分别培养12、24、48、72 h后,加入10 μl MTT溶液,孵育4 h后,弃掉培养液,每孔加入150μl DMSO荡摇匀后,酶标仪检测490 nm的吸光值。

1.9 统计分析

2 结 果

2.1 缺氧抑制hPDLFs的增殖

在12、24、48、72 h时,缺氧组的细胞增殖率明显低于常氧组(P<0.05)(图 1)。

图1 缺氧抑制hPDLFs增殖Fig 1 Proliferation inhibition of hPDLFs by hypoxia

2.2 缺氧促进hPDLFs凋亡

与常氧组相比,缺氧组的hPDLFs的凋亡率明显提高(图2A、2B)。缺氧组的Bax蛋白表达量明显提高,Bcl-2蛋白表达量明显降低,Bax/Bcl-2的比值明显提高(图2C)。说明缺氧显著促进hPDLFs凋亡。

2.3 缺氧促进HIF-1α蛋白的表达

缺氧组的HIF-1α表达量明显高于常氧组(图3A),而HIF-1α的mRNA表达没有明显的变化(图3B)。结果说明缺氧显著促进HIF-1α的蛋白表达。

2.4 缺氧抑制Akt/PKB信号通路

与常氧组相比,pAktser473的表达量明显降低,而总Akt的表达量没有明显变化(P<0.05),说明缺氧明显抑制了Akt/PKB信号通路(图4)。

2.5 抑制 Akt/PKB信号通路促进缺氧条件下HIF-1α的蛋白表达

在缺氧条件下,si-Akt明显降低了pAktser473的表达,而总Akt的表达量没有明显变化,si-Akt抑制了Akt/PKB信号通路(图 5);在缺氧条件下,si-Akt组的HIF-1α蛋白表达明显高于si-control组,说明si-Akt显著抑制Akt/PKB信号通路,且明显提高了缺氧条件下HIF-1α蛋白的表达(图5)。

2.6 抑制Akt/PKB信号通路增强缺氧对的hPDLFs增殖的抑制

将si-Akt和 si-control转染 hPDLFs以研究 Akt/PKB信号通路抑制对hPDLFs增殖的影响。结果显示,在缺氧条件下,si-Akt组的hPDLFs增殖抑制率明显高于si-control组,且在24、48、72 h时有统计学差异(图6)。说明抑制Akt/PKB信号通路促进缺氧对hPDLFs增殖的抑制。

图2 缺氧诱导hPDLFs的凋亡Fig 2 Apoptosis of hPDLFs induced by hypoxia

图3 缺氧提高hPDLFs HIF-1α蛋白的表达Fig 3 HIF-1αexpression in hPDLFs

图4 缺氧抑制Akt/PKB信号通路Fig 4 Inhibition of Akt/PKB signaling pathway by hypoxia

2.7 抑制 Akt/PKB信号通路促进缺氧诱导的 hPDLFs的凋亡

在缺氧条件下,与 si-control对照组相比,si-Akt组的 hPDLFs凋亡率 明显提高(P<0.05)(图 7A)。Westernblot结果表明,与si-control组相比,si-Akt组的Bcl-2蛋白表达量明显减少,Bax蛋白表达量明显增加,Bax/Bcl-2的比值明显提高(图 7B)。说明抑制Akt/PKB信号通路显著促进缺氧诱导hPDLFs的凋亡。

图5 抑制Akt/PKB信号通路促进缺氧诱导的HIF-1α蛋白表达Fig 5 Promotion of HIF-1αexpression by the inhibition of Akt/PKB signaling pathway hypoxic-induced reduction of HIF-1αlevel

图6 抑制Akt/PKB信号通路增强缺氧诱导的hPDLFs增殖抑制Fig 6 Increase of the inhibition of hypoxia induced proliferation of hPDLFs by inhibition of Akt/PKB signaling pathway

3 讨 论

图7 抑制Akt/PKB信号通路促进缺氧诱导的hPDLFs的凋亡Fig 7 Increase of hypoxia-induced apoptosis of hPDLFs by the inhibition of Akt/PKB signaling pathway

细胞凋亡是在正常生理或病理状态下机体细胞发生的一种自发的、程序化的死亡过程,是细胞缺氧诱导细胞损伤的主要形式。细胞在缺氧条件下,细胞核中HIF-1α蛋白显著增加,引发一系列细胞缺氧反应[6]。本研究发现hPDLFs在缺氧条件下的凋亡率明显高于常氧条件下的凋亡率,说明缺氧促进了hPDLFs的凋亡,且缺氧条件下的HIF-1α蛋白表达量明显增加,HIF-1α mRNA没有明显的变化,常氧条件下几乎无HIF-1α的表达。研究表明缺氧对HIF-1αmRNA水平没有影响,但可以显著影响蛋白水平变化,可能是对转录后水平的调控。在缺氧的条件下,细胞核中HIF-1α蛋白显著增加,同时HIF-1β亚基从胞浆转移入细胞核中,与细胞核中的HIF-1α形成异二聚体。HIF-1异二聚体与含缺氧反应元件的下游基因结合,激活缺氧应答基因调控系统的缺氧应答反应,引发一系列细胞缺氧反应[7]。

Akt/PKB参与了多个细胞过程。SARS冠状病毒膜蛋白通过激活caspase-8和caspase-9并抑制PDK1与Akt/PKB信号通路的相互作用诱导细胞凋亡[8]。环氧化酶抑制剂SC236通过下调Akt的表达和上调Cyt-C的表达诱导胃癌细胞的凋亡[9]。Baran等[10]发现Akt/PKB信号通路可以作为介导小鼠胚胎细胞抗凋亡信号的主要靶标。在本研究中,实验结果证明缺氧显著促进hPDLFs的凋亡,抑制细胞增殖,抑制Akt/PKB信号通路,并且抑制Akt/PKB信号通路显著促进缺氧诱导的hPDLFs的凋亡,增强缺氧诱导的hPDLFs增殖抑制,提高HIF-1α蛋白的表达,为牙周炎发病机制的进一步研究提供了理论依据。

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