舟山海域好氧不产氧光合异养细菌群落结构分析*

赵本宣 赵 晟 李汝伟 刘 强 吴常文①

(1. 浙江海洋大学 舟山 316022; 2. 国家海洋设施养殖工程技术研究中心 舟山 316022)

大洋海域更具生存优势, 这意味着AAPB的丰度和多样性会随环境中营养丰富程度的提高而降低, 反之亦然。而Goericke(2002)等在南加利福尼亚沿岸的富营养、中营养和贫营养水域的对比研究却得出与Kolber等人相反的结论。有人在泥炭沼泽湖泊中研究发现, 在 pH为 6.7—7.6之间时, AAPB的丰度最高(Lew et al, 2016)。因此, 目前AAPB在初级生产力中的地位还不能够完全明确, 而且影响AAPB分布格局及其在海洋生物生产和物质循环中生态地位的机制或许要比预期的更加复杂(胡耀华, 2006), 只有从季节、年度尺度上对全球多个典型海区的广泛的自然生态学调查, 获取更充分、更具代表性的第一手数据,才能全面、准确地评估AAPB在海洋中的生态地位。

基于基因组和其它单基因位点的证据表明,AAPB和厌氧光合细菌一样也含有细菌叶绿素, 它们是按功能分类的一类属于变形菌门的细菌(Yurkov et al, 1998a, b; Bryant et al, 2006)。早期发现的大部分AAPB都来源于海洋环境, 在进化上都属于α-Proteobacteria, 而 唯 一 属 于 β-Proteobacteria的AAPB来自于淡水环境(Suyama et al, 1999), 基于环境序列的分析表明海洋未可培养细菌中还存在着类似 β-Proteobacteria 的 AAPB (Béjà et al, 2002)。而最近的研究表明在近岸海洋表层微生物群落中γ-Proteobacteria也占有相当的比重(Hu et al, 2006;Cho et al, 2007)。基于可培养和非培养的研究表明AAPB具有属于α、β、γ分支的广泛的遗传多样性, 这些研究都扩展了AAPB的多样性(Salka et al, 2008)。由于海洋环境中绝大多数细菌都是未可培养的, 必然还会存在许多稀有的、目前还不为人知的AAPB种类。前人研究表明, 基于 16S rRNA的基因序列与pufM基因的序列分析结果所得到的AAPB系统发育关系不完全一致, 这说明光合作用的超级操纵子的侧向迁移产生了高度多样化的 AAPB 群落(Nagashima et al, 1997; Yurkov et al, 1998a, b)。像 16S rRNA基因, pufM基因存在于所有的AAPB中, 具有保守区和可变区, 使其成为一个很好的用于量化的丰度和评估 AAPB 的遗传多样性的分子标记(Achenbach et al, 2001; Allgaier et al, 2003)。由编码光合反应中心M亚基的pufM基因所设计出来的引物被广泛地用来扩增来自不同环境的样品, 作为研究AAPB基因多样性的最常用的方法(Yutin et al, 2005)。

对整个大西洋和太平洋的观测证据表明, AAPB的丰度和多样性沿环境梯度而改变。例如, 沿海和咸水似乎具有独特的AAPB分支, 而在开放的海洋中却未发现(Yutin et al, 2007)。同样, 具有更高生产力的水域, 正如高叶绿素 a浓度所指示的, AAPB多样性比贫营养水域要低(Jiao et al, 2007)。相反, 在一些主要的出海口定的采样位置自由生活与颗粒附着AAPB之间不存在显著差异, 但采样点之间却存在遗传多样性的显著差异(Cottrell et al, 2010)。来自波罗的海不同位置的细菌样本间存在 AAPB实质性的遗传变异, 包括两个淡水和咸水分支(Masín et al, 2006;Salka et al, 2008), 进一步表明AAPB的遗传多样性,并且这种多样性具有与环境变量相关的生物地理和潜在的系统地理格局。已有的结果表明, 尽管环境变化可能很重要, 但也可能是特有的AAPB与原有岛屿生物地理学的一些假设一致(Losos, 1967), 即使没有明显限制它们悬浮分散在海洋中, 这表明地理的距离可能在这些微生物种群的生态结构中发挥重要作用。而AAPB群体遗传多样性也与环境变量和位置相关, 表明种群数量和遗传多样性是通过环境变量和特有机制的组合进行调节的(Ritchie et al, 2012)。

舟山群岛海域是东海地区集旅游、港口、工业、渔业、养殖区等于一体的重要海域。根据舟山市海洋功能区划, 结合岛礁分布和行政区划, 在基本涵盖舟山所有功能海域的基础上, 我们选择了 8个典型站位。本文针对这8个典型站位的表层海水样品, 基于高通量 DNA测序的方法, 利用编码光合反应复合中心小亚基的pufM基因构建文库, 对AAPB分布及其系统发育多样性进行分析, 旨在初步探讨舟山群岛海域AAPB的多样性情况, 为今后舟山群岛AAPB生态学角色及其在碳循环中的贡献奠定科学基础。

1 材料与方法

1.1 样品采集及预处理

于2016年4月在舟山群岛海域选择8个代表性站位, 采样点的选择依据舟山市海洋功能区划和行政区划相结合的原则, 采样站位为东极岛(DJ)(122.69°°E, 30.19°N)、岱山(DS)(122.11°E,30.27°N)、沈家门(SJM)(122.32°E, 29.94°N)、枸杞岛(GQ)(122.81°E, 30.72°N)、金塘岛(JT)(121.85°E,30.07°N)、六横岛(LH)(122.11°E, 29.79°N)、桃花岛(TH)(122.30°E, 29.81°N)、朱家尖(ZJJ)(122.41°E,29.92°N), 见图 1。采集表层(0.5m)海水样品各2L装入预先灭过菌的聚乙烯采样瓶中, 先用真空抽滤装置经 3μm 孔径滤膜过滤去除大颗粒杂质, 再用0.22μm 孔径滤膜过滤, 然后将滤膜取出, 放入已灭菌的含有石英砂的5mL离心管中, 于液氮中保存, 用于细菌DNA提取。

图1 调查海区及采样站位(东海舟山群岛海域)Fig.1 Location of the study area and sampling stations in the Zhoushan Archipelago, the East China Sea注: 东极岛(DJ), 枸杞岛(GQ), 金塘岛(JT), 六横岛(LH), 沈家门(SJM), 桃花岛(TH), 朱家尖(ZJJ), 岱山(DS)。样品采集于2016年4月8—30日

1.2 环境参数测定

在水样采集的同时, 利用携带的便携式 HQ-30D溶氧仪测定溶解氧和温度, 盐度计和 pH计分别测定盐度和 pH, 总磷使用便携多参数水质分析仪(型号:5B-2H)进行测定, 其它一些水质参数, 如 COD、氨氮、硫酸盐、磷酸盐、硅酸盐、亚硝酸盐和硝酸盐等使用 Smartchem-200全自动间断式化学分析仪进行测定。

1.3 DNA的提取及检测

将保存滤膜的 5mL离心管从液氮中取出, 在无菌的条件下, 剪碎, 加入1mL提取缓冲液, 水样中细菌DNA具体提取步骤参照美国MOBIO公司强力水样DNA提取试剂盒的说明书, 并用1.0%琼脂糖凝胶电泳检测。

1.4 AAPB pufM基因PCR扩增

采样针对不产氧光合细菌 pufM 基因扩增引物(Achenbach et al, 2001; Béjà et al, 2002) pufM-557-f(5′-TACGGSAACCTGTWCTAC-3′) 和 pufM-750-r(5′-CCATSGTCCAGCGCCAG AA-3′), 对样品基因组DNA进行扩增, PCR产物片段长度约为193bp。PCR反应体系为95℃预变性4min, 95℃变性30s, 58℃退火 30s, 72℃延伸 30s, 循环 35次, 72℃延伸 5min。20μL反应混合液, 包括 2μL DNA, 正反引物各 0.7μL,10μL的PCR mastermix (TaKaRa), 用水补齐。扩增产物用1.5% (W/V)的琼脂糖凝胶电泳检测扩增效果。

1.5 样品的高通量测序及数据分析流程

将样品的 PCR产物, 送至上海翰宇生物科技有限公司在Illumina MiSeqTM平台上进行高通量测序。为了提高分析结果的质量, 在序列充足的同时, 也要保证序列的质量, 因此, 分析前要先对原始数据进行过滤处理, 得到优质序列。然后对优质序列进行OTU聚类分析。基于OTU聚类分析结果, 可以进行Alpha多样性分析, 根据 OTU的物种分类结果, 可以进行群落结构的统计分析。将OTU和分类学信息结合在一起进行 Beta多样性分析。在提供了环境因子的情况下, 可以进行多样性统计分析。

数据预处理, 使用Mothur v.1.32.1 (Schloss et al,2009) (http://www.mothur.org/wiki/Calculators)对原始数据进行处理, 得到优质序列, 并进行统计。使用QIIME (Caporaso et al, 2010)聚类生成OTU, 相似性设为97%, 即任意两条reads的相似度均达到97%以上,将该序列聚类为一个OTU。OTU代表序列与NCBI nr数据库BlastX比对, 得到每个OTU的分类学信息。

本研究中所有的原始数据全部上传到 NCBI-SRA数据库(http://www.ncbi.nlm.nih.gov/sra/SRP080714), 登录号为ID: SRP080714。

2 实验结果

2.1 环境参数

现场进行定位, 采集表层海水, 采样深度为0.5m, 溶解氧(DO)、盐度、pH、温度现场测定, 其它水质参数, 如 COD、总磷、溶解无机氮(DIN)等带回实验室立即进行检测, 结果如表1所示。从结果可以看出, 水温为13.8—17.2; ℃溶解氧(DO)变化不大,为10.00—11.85; pH范围在7.65—7.92; 盐度变化较大, 20—33, 金塘最低, 东极最高; COD 含量都符合一类海水的标准; 无机氮含量桃花岛最高, 为0.438mg/L, 总磷枸杞岛最低, 只有0.008mg/L。

表1 采样点环境参数Tab.1 The environmental parameters of each sampling station

2.2 OTU聚类和Alpha多样性

经过预处理的原始测序数据, 一共得到 192633条序列, 我们进行了 OTU聚类分析, 相似性设为97%, 可以看到, 所有的数据最后一共分成 4051个OTU, 各站点 OTU聚类结果分别是 DJ 490个, GQ 670个, JT 1123个, LH 883个, SJM 1526个, TH 1204个, ZJJ 691 个(表 2)。

进行 Alpha多样性分析, Alpha多样性指数(estimator), 包括: 丰度评估指数(ACE指数和Chao 1指数)和多样性评估指数(Shannon指数、Simpson指数和Coverage)。从ACE指数和Chao 1指数的结果可以看出, 各采样站点微生物丰富度排序是: SJM ＞ ZJJ＞ TH ＞ JT ＞ LH ＞ GQ ＞ DJ, 而从 Shannon 指数和Simpson指数来看, 各站点微生物多样性从高到低依次是: SJM ＞ LH ＞ JT ＞ TH ＞ ZJJ ＞ DJ ＞ GQ。从Coverage可以看出, 测序深度已经足够, 覆盖度较高,文库可用于评估AAPB多样性。从稀释性曲线(图2)来看当测序量超过 25000读长时, 仍然有新的 OTU被发现, 但是整个曲线已经趋于平缓, 说明测序数据量合理, 更多的数据量对发现新 OTU的边际贡献很小, 从图中也可以看出相同序列数时, SJM、TH和JT的OTU数比其它三个位点要高, DJ最低, 说明SJM、TH和JT的微生物丰富度要高于其它三个位点, DJ的微生物丰富度最低。

表2 样品OTUs(cutoff=0.03)聚类和Alpha多样性指数情况Tab.2 The OTUs and the estimators of each sample (cutoff=0.03)

图2 稀释性曲线(cutoff=0.03)Fig.2 The rarefaction curve (cutoff=0.03)注: 横轴为从某个样品中随机抽取的测序条数, 纵轴为基于该测序条数能构建的OTU数量。每条曲线代表一个样品, 用不同颜色标记。东极岛(DJ), 枸杞岛 (GQ), 金塘岛 (JT), 六横岛 (LH), 沈家门 (SJM), 桃花岛 (TH), 朱家尖 (ZJJ)

2.3 AAPB群落组成

根据 OTU聚类分析的结果, 各采样站点样品中AAPB群落结果组成基本相似, 大部分序列都属于未明确分类的细菌, 明确分类的门主要包括:Planctomycetes浮霉菌门, Proteobacteria变形菌门,Firmicutes厚壁菌门。AAPB在门水平上的组成分布与前人报道的结果相似(陈晨, 2014), 但是有关Planctomycetes的发现还不是很多。其中,Proteobacteria占已明确分类的细菌类群的绝对优势,各站点中序列数目分别是DJ 150个, GQ 43个, JT 230个, LH 819个, SJM 195个, TH 89个, ZJJ 86个, 最多的是LH, 其次是JT, 最少的是GQ。Firmicutes只在JT和 ZJJ发现了, Planctomycetes仅在 ZJJ检测到 1条序列。在明确分类的各细菌门中, 属于Proteobacteria的AAPB占到总体的97%。

各站点聚类分析结果中未明确分类的 AAPB占大多数, 一共发现了 32个明确分类的属, 明确分类的属分类水平的分布情况见图 3, 其中占优势的菌属分别为 Roseobacter、Sphingopyxis、Loktanella、Sphingomonas、Methylobacterium 和 Escherichia, 其中前三个是所有站点共有的属。其它还包括Skermanella、Brevundimonas、Thalassobium、Bacillus、Isosphaera、Ahrensia、Maritimibacter、Rhodobacter、Sulfitobacter、Elioraea、Erythrobacter、Blastomonas、Citromicrobium、Novosphingobium、Limnohabitans、Rubrivivax、Methyloversatilis、Desulfocapsa、Thiohalocapsa、Thiorhodococcus、Klebsiella、Amphritea、Cellvibrio、Pseudomonas和 Cycloclasticus。有些属只在某一个位点或其中几个位点发现, 例如,Isosphaera、 Maritimibacter、 Desulfocapsa、Thiorhodococcus、Klebsiella和 Amphritea只存在于ZJJ, Ahrensia、Blastomonas和Methyloversatilis仅在JT发现。Sulfitobacter和Elioraea是LH特有的两个属, 而 Novosphingobium 是 TH 的 特 有 属,Limnohabitans和Rubrivivax也仅在SJM检测到。总的来说, 各位点明确分类的 AAPB丰度大小顺序是LH＞JT＞SJM＞DJ＞TH＞ZJJ＞GQ。

表3 门水平分类结果Tab.3 The taxonomy in phylum for AAPB in each station

2.4 AAPB群落相似性分析

从属水平的样品间聚类关系树(图 4)可以看出,各采样位点之间的群落结构相似性, 其中LH和SJM相似性较高, DJ和GQ相似性最高, 然后TH和DJ、GQ两个比较相似, ZJJ又和DJ、GQ和TH相似性较高, JT和其它位点相似性是最低的。Heatmap图可以很直观的反映各位点在 AAPB属水平上群落组成的相似性和差异性(图 5)。横轴代表各采样位点, 纵轴代表AAPB各属, 在JT站点, Bacillus和Erythrobacter丰度较高, 而 Roseobacter丰度相对较低, TH站点,Sphingopyxis、Loktanella和 Roseobacter具有较高丰度, GQ主要是未明确分类的一些属。可以发现, 单独分析某一个属的时候, 各站点差别仍然很明显, 比如:Roseobacter相对丰度最高的是LH, DJ和ZJJ相对丰度比较高的都是 Escherichia, 在 DJ和 SJM,Methylobacterium的丰度相对较高, Bacillus在JT和ZJJ的分布则相对较多。同样又印证了LH和SJM具有较高相似性, ZJJ、DJ、GQ和TH相似性比较近, 而JT与其它位点差异性是最大的。

图4 样品间聚类关系树(属水平)Fig.4 The tree of clustering for all samples at genus level注: 下角的图例为距离标尺, 分支距离越长, 差异关系越远。东极岛(DJ), 枸杞岛(GQ), 金塘岛(JT), 六横岛(LH), 沈家门(SJM), 桃花岛(TH), 朱家尖(ZJJ)

RDA用于探究的AAPB丰度和环境变量之间的关系。不难发现, 溶解氧(DO)和 pH对于除Roseobacter和Escherichia之外的AAPB各属细菌均呈正相关性关系, 而其它的环境变量如 COD、总磷(TP)、温度(T)、无机氮(DIN)和盐度(salinity)对Roseobacter和Escherichia呈正相关性关系。溶解氧(DO)、总磷(TP)和 pH射线较长, 说明这三种因素对相应的AAPB影响较大, 相关性比较明显(图6)。

3 讨论与结论

本研究的目的是确定在舟山群岛海域不同海洋功能区表层海水之间 AAPB群落组成的异同并进一步探究AAPB与环境因子之间的关系。我们推测舟山群岛 AAPB的组成类型将有可能既表现出特有性又具有世界大同主义的细菌群落的格局。

图5 AAPB属水平的Heatmap图Fig.5 The Heatmap of AAPB in the sampling stations at genus level注: 每小格代表其所在样品中某个物种的相对丰度, 颜色对应的是最上面的色阶, 不同颜色代表物种所占比例, 从绿到红, 代表该样本横坐标的丰度越高。东极岛(DJ), 枸杞岛(GQ), 金塘岛(JT), 六横岛(LH), 沈家门(SJM), 桃花岛(TH), 朱家尖(ZJJ)

图6 AAPB与环境参数之间关系的RDA分析Fig.6 Ordination plot of redundancy analysis (RDA) for AAPBs with hydrochemical data (environmental variables)注: 温度(T), 溶解氧(DO), 盐度(salinity), 化学需氧量(COD)无机氮(DIN)总磷(TP)。东极岛(DJ), 枸杞岛(GQ), 金塘岛(JT), 六横岛(LH),沈家门(SJM), 桃花岛(TH), 朱家尖(ZJJ)

所有的测序结果按照 97%的相似值, 一共归为4051个 OTU中, 每个采样站点的 OTU数不等, 为490—1526个。其中, 有28个OTU是所有站点共有的, 并且所含序列数占总测序条数的70%。基于OTU聚类分析的结果, 我们计算了每个样品的α多样性指数(表 2)。 7个站点独有的 OTU数目分别是 DJ 10个、GQ 14个、JT 14个、LH 17个、SJM 33个、TH 24个、ZJJ 28个。Chao 1和ACE指数通常用来计算丰富度情况, 而Shannon和Simpson指数, 被用来估计多样性。结果表明, 多样性是排名为: SJM ＞ LH ＞JT ＞ TH ＞ ZJJ ＞ DJ ＞ GQ, 而丰富度排名为: SJM ＞ZJJ ＞ TH ＞ JT ＞ LH ＞ GQ ＞ DJ。在各种样品中 OTU的变化中也观察到类似的趋势。稀释性曲线很好地展示了各样品测序的情况, 此外结合Alpha多样性指数,可以得出结论: SJM微生物丰富度和多样性都是最高的, LH、JT和TH也都比较高, 而DJ和GQ微生物丰富度和多样性最低(图2)。

与以往的研究相比(Zhang et al, 2007; Yutin et al,2009; Zeng et al, 2016; Zhang et al, 2016),α-Proteobacteria, γ-Proteobacteria 为优势类群, 而我们的样本中细菌群落是由 α-Proteobacteria,γ-Proteobacteria, β-Proteobacteria, δ-Proteobacteria,Bacilli和 Planctomycetia 为主(图 4)。α-Proteobacteria已经被广泛研究(Alexandre et al, 2008), 它们在赤潮的时候有明显的增殖活动, 在沿岸和大洋环境中为主流群体(Glöckner et al, 1999; Pinhassi et al, 2000;Eilers et al, 2001; Alonso-Sáez et al, 2007)。近年来, 赤潮在DJ和GQ发生的频率比以往更高, 可能与它们相对丰度降低有关, 特别是当与γ-Proteobacteria相比较的时候(Teira et al, 2007)。另一方面, 曾经有几个α-Proteobacteria丰度增大的情况, 例如 Roseobacterlike细菌丰度随着正烷烃的增加而增大(McKew et al,2007)。虽然一些报告已经描述过从烃污染海洋环境中分离 α-Proteobacteria的分类, 但还是难以确认这些微生物是否能够降解或利用烃。一项对印度尼西亚海水中烃类降解菌的研究显示, 属于Sphingomonadales和 Rhodobacterales的不同的海洋α-Proteobacteria属的细菌参与了脂肪族和低分子量芳烃的降解过程(Harwati et al, 2007)。值得注意的是, 在波罗的海北部夏季分层条件下, 当细菌的生长受养分可利用性的限制时, Sphingomonas属种类占浮游细菌的主导地位(Pinhassi et al, 2000)。巧合的是这两种类型的细菌在各采样位点均被发现并鉴定出, 而最高是 LH, 其原因可能是因为它位于与许多有机污染物的污水区域。

一些结果表明, 属于Rhodobacteraceae的AAPB在沿岸海域具有非常重要的影响。类似的结果, 在贫营养的西太平洋(Zheng et al, 2015)和极地沿海地区(Zeng et al, 2016)也有发现, 这表明AAPB更喜欢高透光的表层海水。属于 Rhodobacteraceae科的Loktanella和Roseobacter两个属的 AAPB在所有的采样站点中都处于优势地位, 而在细菌属的分类水平上, ZJJ和JT比其它样本具有更高的多样性(图3)。Roseobacter进化枝在海水中的广泛分布已经通过多种分子技术得到证实(Schmidt et al, 1991; González et al, 1997; Lanoil et al, 2000), 这些生物体是海洋浮游细菌的一个重要组成部分(Giovannoni, 2000)。目前,仍然缺乏足够的知识去了解这一群体在海洋环境中的作用和功能。因此, 需要全面的研究以提高我们对α-Proteobacteria在海洋环境中的烃降解生态位的理解。

在JT和SJM也被发现了β-Proteobacterial群体(约占 3%), 然而很少有在除了淡水环境和河口以外其它环境中发现 β-Proteobacterial-like AAPB序列的报道(Ritchie et al, 2012)。Bouvier等(2002)在两个河口发现了沿着盐度梯度变化的细菌群落组成, 发现盐度是β-Proteobacteria额外的控制因素。而伽玛变形菌的成员被认为是海洋表层水中的重要的代表细菌,这也就意味着它们能够快速生长并能迅速降解海洋中更容易被降解的有机成分(Pinhassi et al, 2003;Poretsky et al, 2005)。与以往的研究一致, 它们在大西洋、波罗的海和北太平洋(Hu et al, 2006; Masín et al,2006; Boeuf et al, 2013)中占主导地位。在高纬度(＞60°N, ＞60°S)和极地水域缺乏伽马变形细菌的情况相对于全球性的分布趋势是一个例外, 表明其成员无法在冰冷的海水环境中发展壮大(Koh et al, 2011;Boeuf et al, 2013)。依赖培养的和非培养的研究表明,AAPB多样性体现在拥有许多α-, β-和γ-Proteobacteria的成员(Jeanthon et al, 2011)。然而δ-Proteobacteria纲的Desulfocapsa属在ZJJ的发现, 实属罕见。在先前的研究报道中, 在石油污染潮下带沉积物中曾经发现过它的存在(Acosta-González et al, 2013)。在AAPB的相关研究中, 至今几乎很少有涉及到δ-Proteobacteria纲细菌的发现。究其原因, 这可能与环境有关, ZJJ属于捕捞区, 基于Azam等(1994, 2007)提出了海洋微食物环的概念, 捕捞区必定具有高丰度的浮游生物, 从而相应地微生物种类和丰度也会更多。

基于非培养的分子技术, 如荧光原位杂交技术(Fluorescence In Situ Hybridization, FISH), 末端限制性片段长度多态性图谱技术(Terminal-Restriction Fragment Length Polymorphism, T-RFLP)和 puf操纵子大量的插入克隆分析, 拓展了我们对AAPB多样性和丰度的认识(Grüntzig et al, 2002; Cottrell et al,2006)。与传统的基于分离培养的数据相比, 在不同类型的功能区, AAPB 含有 α-, β-, δ-和 γ类的变形菌, 并支持 AAPB多样性远不止两个容易被培养的Erythrobacter和Roseobacter属这一观点。尽管已经有许多关于 AAPB在不同的地理位置和营养条件下的群落结构的研究(Zeng et al, 2009; Lehours et al,2010), 但尚未发现有沿着各种类型海洋功能区的AAPB分布的研究。我们探索了AAPB在不同功能区域表层海水的分布, 利用基于 pufM基因的高通量测序的数据。共得到 32个明确分类的属和 7个属于Proteobacteria纲未分类的属(图3), 而大多数OTU属于未明确分类的AAPB的分支。这些属分别被划分为16科、15目、6纲和3门。在结果中, 丰度和多样性相对较高的是变形杆菌, 其中也包含了大多数纲、目和科, 其次是厚壁菌门和浮霉菌门(表3)。尤其是属于δ-Proteobacteria的 pufM 基因的发现, 使我们确信AAPB多样性的复杂程度远远超出目前所了解的情况。

温度是促进 AAPB生长的一个重要环境因素(Masín et al, 2006; Ferrera et al, 2014; Koblížek, 2015;Lew et al, 2015)。巴伦支海的数据呈现强烈的线性相关性, 在温度最高时 AAPB的丰富度和多样性最高(Lehours et al, 2015)。然而, 在极度贫营养的寒冷的高山湖泊, 电导率、pH值、硝酸盐含量是影响AAPB群落结构分布和生长的主要因素(Koblížek, 2015)。在我们的研究中, Roseobacter属在LH的丰度最高, 这可能表明温度是某些Roseobacter属细菌生长的至关重要条件。AAPB的丰度与pH值在我们研究的范围内呈正相关, pH值显著影响阿加西斯泥炭地冰川湖细菌群落的组成和纽约阿迪朗达克公园物种多样性和丰富度(Frischer et al, 2008, Lin et al, 2012)。AAPB的丰度也可能直接或间接地受到其它因素(如水化学性质和pH值)的影响。水的pH值也可能会显著改变原生生物和植食性浮游动物的组成。已有研究证明,AAPB经常处在激烈的被捕食的压力下, 植食性浮游动物群落的改变可能也会严重影响 AAPB的数量(Ferrera et al, 2011)。另一个关键的环境因素是盐度,它对海洋微生物的生长也有至关重要的影响。据报道,在特拉华河口和北冰洋西部的 AAPB受到环境盐度变化影响(Waidner et al, 2008; Boeuf et al, 2013), 但这种影响关系在本研究中未发现。虽然盐度变化很大(表 1), 在这些变化下的背后可能生存着许多具有相应生理耐受性的AAPB种群。可能的原因是, 不同盐度的水域之间, 光线充足时, 光合异养可能在温暖、高盐度的水和寒冷、低盐度的水中具有不同的生理作用。除了温度以外, 不同的盐度也导致 ZJJ的 pufM多样性高于JT和LH。

Zohary和Robarts得出结论认为, 冬季在地中海东部, 磷是细菌和浮游植物大面积生长的最主要的限制性营养物质(Zohary et al, 1998)。同样, 在夏天的地中海西北面水域, 磷的限制性作用也很常见(Zweifel et al, 1993, Sala et al, 2002)。此外, AAPB是一类快速生长代谢活跃的生物, 它们极大地促进了溶解氧的补充。我们可以得出结论认为, DO是影响许多细菌属分布的一个重要因素(图 6)。另外, 从采样站点pufM基因的OTU分类结果表明, AAPB特有分支与特定环境条件有关。这些结果表明观察到的AAPB丰度的变化往往也会伴随着种群的遗传多样性变化(图 5)。从属的分布情况来看, Isosphaera、Maritimibacter、Desulfocapsa、Thiorhodococcus、Klebsiella和 Amphritea这几个属只在朱家尖(ZJJ)被发现, Ahrensia、Blastomonas和 Methyloversatilis仅属于金塘岛(JT), Sulfitobacter和 Elioraea只在六横岛(LH)存在, 而Novosphingobium也仅在桃花岛被发现(TH), Limnohabitans和 Rubrivivax只存在于沈家门(SJM)(表4)。它们的生理适应和代谢灵活的本性表明了光能异养为其提供了选择性的优势。所有的物理和化学因素都可能在构建 AAPB种群结构时起到单独或协同作用。数据表明, 不同的AAPB群体被各种复杂的环境因素所控制, 这或许可以解释为什么目前很难准确预测水生环境总AAPB分布的问题。

陈 晨, 2014. 内蒙古高原湖泊好养不产氧光合细菌的分离及其脱氮活性分析和脱氮功能基因的检测. 呼和浩特: 内蒙古农业大学硕士学位论文

胡耀华, 2006. 代表性海区好氧不产氧光合细菌的光合基因(pufM)生态分布特征, 厦门: 厦门大学硕士学位论文

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