结核分枝杆菌38kD蛋白真核表达载体的构建及其在HEK293T细胞中的分泌性表达
2017-11-06白娜毛莹莹颜仁和林明陈兴露李青青陈惠莹刘军李红卫
白娜,毛莹莹,颜仁和,林明,陈兴露,李青青,陈惠莹,刘军,李红卫
1.南方医科大学 检验与生物技术学院生物治疗研究所,广东 广州 510515;2.云南省玉溪市人民医院 核医学科,云南 玉溪 653100;3.广州伯尼兹生物科技有限公司,广东 广州 510663
结核分枝杆菌38kD蛋白真核表达载体的构建及其在HEK293T细胞中的分泌性表达
白娜1,2,毛莹莹1,颜仁和3,林明2,陈兴露1,李青青1,陈惠莹1,刘军1,李红卫1
1.南方医科大学 检验与生物技术学院生物治疗研究所,广东 广州 510515;2.云南省玉溪市人民医院 核医学科,云南 玉溪 653100;3.广州伯尼兹生物科技有限公司,广东 广州 510663
目的:构建含结核分枝杆菌38kD蛋白基因的真核表达载体并转染HEK293T细胞,高效表达分泌性38kD蛋白。方法:设计合成的结核分枝杆菌38kD基因被克隆到T载体,然后亚克隆到真核表达载体pcDNA3.0,经酶切鉴定正确后,PEI转染法导入293T细胞,换不含血清的DMEM培养基培养3d后收集细胞及上清,采用Western印迹检测38kD蛋白的表达。结果:酶切结果显示,获得正确的含38kD基因的重组表达载体;Western印迹结果显示表达载体导入293T细胞中后能在细胞及上清中检测到38kD蛋白表达。结论:构建了含重组结核分枝杆菌38kD蛋白基因的真核表达载体pcDNA3.0-38kD,该载体可在哺乳动物细胞HEK293T中高效分泌性表达38kD蛋白,为结核病诊断试剂盒研发奠定了基础。
结核分枝杆菌38kD蛋白;真核表达载体;分泌表达;HEK293T细胞
近年来由于人口剧增、移民增加、旅游业发展、耐药性产生、人类免疫缺陷病毒感染流行、吸毒、酗酒与贫困等原因,结核病在全球范围内死灰复燃,呈回升趋势[1-2]。我国结核病疫情目前依然很严重,是世界上结核病高负担第二大国,仅次于印度[3-4]。结核杆菌的检测方法主要有细菌学、免疫学及分子生物学方法等,前者是结核病控制、流行病学调查和临床医生用于诊断及鉴别诊断结核的金标准,但因其耗时长,阳性率低而受限;分子生物学技术虽然检查快速、灵敏,但也存在对技术及人员素质要求高、操作复杂等问题;免疫学诊断方法操作简便、快速,便于推广,且有良好的特异性和敏感性,具有血清学诊断价值,成为结核病诊断的良好辅助方法[5-7]。研究表明,38kD抗原上具有结核复合体特异的T淋巴细胞抗原决定簇,可以诱导强烈的抗体和T淋巴细胞反应,部分对抗结核分枝杆菌感染作用[8]。在本研究中,我们利用基因工程技术构建了含结核分枝杆菌38kD蛋白基因的表达载体,并以PEI转染法导入HEK293T细胞,高效分泌表达38kD蛋白,为结核病诊断试剂盒研发奠定了基础。
1 材料与方法
1.1 材料
人胚肾细胞系HEK293T、表达载体pcDNA3.0为本实验室保存;大肠杆菌DH5α、报告基因增强型绿色荧光蛋白(EGFP)购自天根生化科技(北京)有限公司;pcDNA3.0-EGFP由本实验室构建;限制性内切酶NheⅠ、MluⅠ、EcoRⅤ和DL2000 DNA marker购自 TaKaRa公司;Blunting酶、1mmol/L dNTP购自New England Biolabs公司;限制性内切酶ApaⅠ购自Thermo scientific公司;T4DNA连接酶购自Roche公司;蛋白marker、质粒快速小提试剂盒购自GeneStar公司;琼脂糖凝胶片段回收试剂盒购自Magen生物公司;DNA清洁回收试剂盒购自Axygen公司;脱脂奶粉、PVDF膜购自Bio-Rad公司;抗6×His单克隆抗体购自天根公司;羊抗小鼠IgG-HRP购自Solarbio公司;细胞基础培养基DMEM、胎牛血清(FBS)、胰酶、磷酸盐缓冲液(PBS)粉末购自Hyclone公司。
1.2 重组表达载体pcDNA3.0-38kD的构建及鉴定
根据结核分枝杆菌国际标准强毒株H37Rv(GenBank Accession:AL123456.3)的基因组序列,设计合成编码38kD嵌合蛋白的cDNA片段,序列经过优化(http://www.jcat.de)以适于在哺乳动物细胞中表达(图1)。
合成的cDNA片段被克隆到T载体获得重组质粒pMD19T-38kD[通用生物系统(安徽)有限公司],用NheⅠ、MluⅠ双酶切获得38kD基因片段约1152bp,进行补平、清洁处理;真核表达载体pcDNA3.0用EcoRⅤ单酶切后去磷酸化处理。将pcDNA3.0酶切回收产物与38kD基因片段用T4DNA连接酶连接,转化大肠杆菌DH5α感受态细菌,挑过夜培养的LB平板上的单克隆接种到5mL含100μg/mL氨苄西林的LB液体培养基中,37℃摇床培养过夜,提取质粒,得到重组载体质粒pcDNA3.0-38kD。用ApaⅠ酶切pcDNA3.0和重组质粒,琼脂糖凝胶电泳鉴定。
图1 结核分枝杆菌38kD嵌合蛋白cDNA编码核苷酸序列
1.3 重组载体质粒转染HEK293T细胞
用含10%FBS的DMEM培养基常规培养HEK293T细胞,转染前1d胰酶消化、传代细胞,铺于6孔板中,细胞汇合度约80%时即可用PEI法将pcDNA3.0-EGFP及pcDNA3.0-38kD重组载体质粒进行转染[9-10]。转染24h后将培养基换成无血清的DMEM培养基,转染48h后观察细胞荧光,判断转染效率。
1.4 Western印迹检测38kD蛋白的表达
换液后第3d收集细胞上清,4℃、13 000r/min离心5min;每孔细胞用PBS洗涤2次后加入含1%PMSF的RIPA裂解液200μL,冰上裂解30min,收集细胞黏液于灭菌EP管中,加入50μL 5×还原上样缓冲液,金属浴煮沸10min裂解细胞,4℃、13 000r/min离心 5min,取上清进行SDS-PAGE,用湿转法将蛋白转移到PVDF膜上,用10%脱脂奶粉液室温摇床温和振荡3h封闭,用1∶5000稀释的His一抗于4℃孵育过夜;用1×TBST洗膜4次,每次 7min;用 1∶10 000稀释的HRP标记的山羊抗小鼠二抗室温摇床温和振荡孵育 50min,用 1×TBST洗膜4次,每次7min;每张膜加500μL发光液,暗室中用感光胶片显色。
2 结果
2.1 结核分枝杆菌38kD蛋白基因重组真核表达载体的鉴定
pcDNA3.0和pcDNA3.0-38kD的ApaⅠ酶切鉴定结果见图2。重组质粒pcDNA3.0-38kD第2、10、12号酶切后获的的小片段条带位置与预期大小相符(正向连接小片段为984bp),表明38kD重组表达质粒pcDNA3.0-38kD构建成功。
2.2 重组质粒转染HEK293T细胞
分别用pcDNA3.0-EGFP和pcDNA3.0-38kD重组载体转染HEK293T细胞,48h时在荧光显微镜下观察,判断转染效率。pcDNA3.0-EGFP转染的细胞有较强的荧光,pcDNA3.0-38kD转染后细胞无荧光,与预期结果相符,说明转染成功(图3)。
2.3 Western印迹检测38kD蛋白在细胞中的表达
重组质粒转染HEK293T细胞24h后,换为不含血清的DMEM培养基,换液后第3d收取细胞及上清蛋白,样品处理后,用Western印迹在细胞及上清中均可检测到38kD蛋白的表达,而转染pcDNA3.0-EGFP的对照组没有相应条带(图4)。
图2 重组质粒pcDNA3.0-38kD的单酶切鉴定
图3 重组质粒转染HEK293T细胞48h的荧光情况
图4 Western印迹鉴定细胞及上清中38kD蛋白的表达
3 讨论
结核病的快速准确诊断是全球控制结核病的重要措施。1998年,Cole等分离和鉴定出一些极具辅助诊断潜力的特异性蛋白质抗原[11],为结核病特异性诊断奠定了基础。结核杆菌分泌蛋白38kD的免疫学活性最强,其用于单项诊断结核病的效果优于其他单一抗原[12-14]。38kD蛋白又名蛋白抗原b(Pab),是一种磷酸盐转运蛋白,是结核杆菌分泌较多的抗原,日益成为研究热点[15]。38kD蛋白属于分泌蛋白,结核病患者体内抗38kD蛋白的抗体水平较高,是结核杆菌最主要的免疫原[16],目前被证明是最有效的单个血清学诊断抗原。有关学者对CFP10-ESAT6、38kD、Ag85B和HspX等4种结核相关抗原的研究显示,单一抗原中38kD的诊断性能最佳,特异度和灵敏度均较高[16]。38kD蛋白广泛用于结核病的血清学诊断试验,检测的敏感性和特异性均较高[17]。
哺乳动物细胞能够正确有效地识别真核蛋白的合成、加工和分泌信号,识别并去除基因中的内含子,再经过剪切加工成为成熟的mRNA,并准确地完成糖基化、磷酸化及蛋白水解等翻译后加工过程,产生具有生物学活性,最接近天然蛋白的重组产物[18]。对比于胞质内表达,分泌表达有众多优势:简化蛋白产物的检测与纯化,降低生物处理工艺的复杂性,减少细胞相关蛋白的降解,提高蛋白产物的产量与质量等[19]。
为了使重组结核分枝杆菌38kD蛋白在哺乳动物细胞中高水平、分泌性表达,我们设计合成了含小鼠Igk信号肽38kD嵌合蛋白的cDNA片段,并将其克隆到真核表达载体pcDNA3.0中,通过PEI方法导入哺乳动物细胞HEK293T,在转染细胞及其培养上清中都能检测到38kD蛋白,说明构建了含结核分枝杆菌38kD蛋白的重组真核表达载体,且能在哺乳动物细胞293T中高效表达并分泌到细胞外。另外,由于嵌合蛋白C端含有6×His标签而可使用镍柱进行纯化。总之,我们构建了结核分枝杆菌38kD蛋白重组真核表达质粒,可将其用于转染293T细胞大量生产纯化38kD蛋白,从而为结核病诊断试剂盒研发奠定了基础。
[1] Mwinga A,Fourie P B.Prospects for new tuberculosis treatment in Africa[J].Trop Med Int Health,2004,9(7):827-832.
[2]吴燕,朱中元.结核分支杆菌免疫学诊断抗原的研究进展[J].中国热带医学,2006,6(2):338-339.
[3] 王黎霞,成诗明,陈明亭,等.2010年全国第五次结核病流行病学抽样调查报告[J].中国防痨杂志,2012,34(8):485-508.
[4] 韩洪祥.活动性肺结核密切接触者发病影响因素的Me⁃ta分析[J].黑龙江医药,2016,38(3):168-170.
[5] 泮结超,石君帆,丁建祖,等.结核分枝杆菌融合蛋白ELISA方法检测[J].中国公共卫生,2012,28(4):418-420.
[6] 邹自英,朱冰,汤雪晴,等.结核杆菌的细菌学、分子生物学和免疫学检测方法评价[J].四川医学,2011,32(5):756-758.
[7]李常教.结核病实验室诊断技术的进展[J].现代预防医学,2006,33(11):2068-2070.
[8] 吴燕,朱中元,王海波.结核分支杆菌38kD蛋白基因克隆及在大肠杆菌中的表达[J].中国热带医学,2005,5(9):1786-1789.
[9] 陈晓,蒋捍东,路新枝,等.一种用磷酸钙法高效转染HEK293T细胞方法的建立[J].中国海洋大学学报(自然科学版),2005,35(5):807-810.
[10]Segura I,González M A,Serrano A,et al.High trans⁃fection efficiency of human umbilical vein endothelial cells using an optimized calcium phosphate method[J].Anal Biochem,2001,296(1):143-147.
[11]Cole S T,Brosch R,Parkhill J,et al.Deciphering the biology of Mycobacterium tuberculosis from thecom⁃plete genome sequence[J].Nature,1998,6685(393):537-544.
[12]Bothamley G H,Rudd R,Festenstein F,et al.Clini⁃cal value of the measurement of Mycobacterium tuber⁃culosis specific antibody in pulmonary tuberculosis[J].Thorax,1992,47(4):270-275.
[13]Wilkinson R J,Zhu X,Wilkinson K A,et al.38 000 MW antigen-specific major histocompatibility complex class I restricted interferon-y-secreting CD8+T cells in healthy contacts of tuberculosis[J]. Immunology,1998,95:585-590.
[14]Andersen P.Effective vaccination of mice against My⁃cobacterium tuberculosis infection with a soluble mix⁃ture of secreted mycobacterial proteins[J].Infect Im⁃mun,1994,62(6):2536-2544.
[15]赵海,李艳,朱虹.结核分枝杆菌重要诊断用抗原研究进展[J].生物技术通讯,2009,20(3):436-438.
[16]林楠.四种结核分枝杆菌特异蛋白抗原的克隆表达和血清学评价[D].北京:中国疾病预防控制中心,2014:67.
[17]石磊,陈苏红.结核分枝杆菌抗原及其研究进展[J].医学综述,2012,18(11):1609-1611.
[18]毕永春,张建琼,利用哺乳动物细胞表达外源蛋白的研究进展[J].国外医学分子生物学分册,2001,23(5):299-301.
[19]Choi J H,Lee S Y.Secretory and extracellular produc⁃tion of recombinant proteins using Escherichia coli[J].Appl Microbiol Biotechnol,2004,64(5):625-635.
Construction of Eukaryotic Expression Vector of Mycobacte⁃rium tuberculosis38kD Protein and its Secretory Expres⁃sion in HEK293T Cells
BAI Na1,2,MAO Ying-Ying1,YAN Ren-He3,LIN Ming2,CHEN Xing-Lu1,LI Qing-Qing1,CHEN Hui-Ying1,LIU Jun1,LI Hong-Wei1*
1.School of Laboratory Medicine and Biotechnology,Southern Medical University,Guangzhou 510515;2.Department of Nuclear Medicine,Yuxi People's Hospital of Yunnan Province,Yuxi 653100;3.Guangzhou Bioneeds Biotechnology Co.,Ltd,Guangzhou 510663;China.
Objective:To construct a robust expressing vector of Mycobacterium tuberculosis 38kD protein,which is able to induce high efficient and secretory expression of 38kD protein in transfected HEK293T cells.Methods:The 38kD gene of M.tuberculosis was synthesized and cloned to T-vector,and then subcoloned into the pcDNA3.0 vector.The recombinant pcDNA3.0-38kD was verified by enzyme digestion,and then transfected into HEK293T cells by polyethylenemine(PEI)-based transfection.The transfected cells and supernatants were collected separately for the detection of 38kD protein by Western blot after the media were changed to serum-free DMEM media for 3 days.Results:We have obtained a robust M.tuberculosis 38kD protein expressing vector,pcDNA3.0-38kD,which can elicit the expression of high level of 38kD protein in both cell supernatants and lysates in transfectedHEK293T cells.Conclusion:High level of secretory M.tuberculosis 38kD protein was expressed in mammalian cells,and it can be potentially used in the development of serological diagnostic kit for tuberculosis.
Mycobacterium tuberculosis 38kD protein;eukaryotic expression system;secretory expression;HEK293T cells
Q78
A
1009-0002(2017)04-0451-04
2017-02-27
白娜(1984- ),女,检验技师,硕士研究生,(E-mail)bn_281525013@163.com;毛莹莹(1988- ),女,博士,(E-mail)maoyy2011@163.com;二者为并列第一作者
李红卫,(E-mail)hongweil@yahoo.com
10.3969/j.issn.1009-0002.2017.04.009