酸性土壤中接种耐酸根瘤菌对豆科植物根际微生态的影响

任豫霜，朱丹，姜伟，李玖燃，张磊*

（1西南大学资源环境学院，重庆400716；2国家级“三峡库区水环境监测与模拟”国际科技合作基地，重庆400716；3湖南大学生物学院，湖南长沙410082）

酸性土壤中接种耐酸根瘤菌对豆科植物根际微生态的影响

任豫霜1,2，朱丹1,3，姜伟1,2，李玖燃1,2，张磊1,2*

（1西南大学资源环境学院，重庆400716；2国家级“三峡库区水环境监测与模拟”国际科技合作基地，重庆400716；3湖南大学生物学院，湖南长沙410082）

【目的】接种耐酸豆科根瘤菌可以提高豆科植物耐酸能力。应用PLFA等方法研究接种耐酸根瘤菌对根际土壤微生态的综合影响，从土壤角度阐明接种耐酸根瘤菌缓解土壤酸度对豆科植物胁迫的机制。【方法】盆栽条件下分别向种植于pH4.8酸性土壤中的葛藤和苜蓿植株相应接种耐酸葛藤根瘤菌068、389、390与耐酸苜蓿根瘤菌91512、91522、91532，于接种后30d、60d、90d、120d、150d取样，分析耐酸根瘤菌对土壤养分、可培养微生物、微生物群落结构多样性的影响。【结果】1)接种耐酸葛藤和苜蓿根瘤菌处理后，根际土壤pH由4.8显著提高至6.0左右，有效磷、速效钾、铵态氮、硝态氮及有机质含量的增加效果显著(P<0.05)，至120d达到最高。120d样品的有效磷、铵态氮、硝态氮及有机质含量分别为23.16～48.68mg/kg、61.21～81.96 mg/kg、65.05～86.38mg/kg和11.85～12.87g/kg，分别比未接种对照提高24.8%～162.4%、16.6%～56.2%、145.4%～225.8%、1.4%～10.1%；2)接种苜蓿和葛藤耐酸根瘤菌后土壤中可培养微生物数量显著提高(P< 0.05)，土壤中可培养细菌、真菌和放线菌数量在120d达到峰值，比同期未接种对照分别提高了61.5%～348.4%、3.4%～441.7%和18.9%～255.2%，分别达到48.00×102～133.3×107、20.11×104～155.9×104和3.21×104～9.59×104cfu/g鲜土；3)PLFA分析表明，虽然接种耐酸葛藤、苜蓿根瘤菌处理的根际土壤的特征脂肪酸种类数与未接种处理相比并无明显差异，但接种葛藤或苜蓿根瘤菌均明显降低了根际土壤中异构PLFA/反异构PLFA值，显示土壤根际微生态的稳定性得到提高。【结论】在种植豆科植物的酸性土壤中接种相应耐酸根瘤菌能显著提高根际土壤pH，提高根际土壤有机质含量和速效氮磷养分含量，缓解土壤酸性对根际微生物的胁迫。

酸胁迫；耐酸葛藤根瘤菌；耐酸苜蓿根瘤菌；磷脂脂肪酸；根际微生态

酸性土壤在全世界分布广泛，并且有不断恶化的趋势[1–2]。我国的酸性土壤主要分布在长江以南的广大热带、亚热带地区和云贵川等地，面积约为2.04×108hm2，且大部分土壤的pH值小于5.5，其中很大一部分小于5.0，甚至4.5[3]。近年来随着工业的发展和不合理的农田施肥，我国土壤酸化面积和酸化程度还在不断增加[4]。

紫花苜蓿(Medicago sativa L.)是营养丰富的优良牧草，根系发达，与根瘤菌共生后具有较强的固氮能力，被用作改土培肥的良好作物，但紫花苜蓿是对酸性土壤条件最为敏感的植物之一[5]，限制了苜蓿的北草南引[6–7]；豆科葛藤(Argyreia seguinii Levl.)根瘤发达、固氮量多，葛藤–根瘤菌共生固氮体系对提高土壤肥力、改善土壤结构和保持水土发挥了重要的作用[8]，在我国西南石漠化地区，特别是三峡库区对缓解酸性土壤水土流失具有推广应用价值。接种耐酸根瘤菌可以提高豆科宿主在酸性土壤中的定殖能力，提高产量及品质[9–10]。目前对耐酸根瘤菌的研究集中于耐酸根瘤菌的基因组序列研究[11–13]，酸胁迫对耐酸和酸敏感根瘤菌菌株基因和蛋白合成的不同影响[14]以及耐酸根瘤菌菌株对豆科寄主生长的影响[15–18]等方面。已经获得了耐酸根瘤菌菌株LPU83，耐酸苜蓿根瘤菌菌株WSM1115，耐酸伯克氏菌菌株WSM2232全基因组序列；Brigido等[14]研究发现耐酸根瘤菌的耐酸性能与来源土壤及其微生物菌群直接相关。接种耐酸根瘤菌能显著提高盆栽条件下酸性土壤中葛藤、紫花苜蓿的植株鲜重、地上部鲜重、根鲜重、株高、根瘤菌鲜重以及植株全氮含量[16]；在酸性条件下，紫花苜蓿与耐酸性强的根瘤菌株所形成共生体系较与耐酸性弱的菌株的共生体系在固氮量、经济产量和品质方面显著提高[18]。耐酸根瘤菌应用于接种主要集中于接种对缓解酸性土壤对植物的毒害及对土壤理化性质影响的方面[19–21]，而对于接种耐酸根瘤菌对豆科植物根际土壤微生态影响的研究较少。为了深入研究接种耐酸根瘤菌对酸性土壤的生物修复机理，本研究对酸性土壤条件下的葛藤和苜蓿分别接种耐酸葛藤、苜蓿根瘤菌，综合测试和分析了土壤养分、土壤中可培养微生物等特征的变化，以及土壤微生物磷脂脂肪酸(phospholipid fatty acid,PLFA)的动态等，探讨接种耐酸根瘤菌对根际微生态的综合影响，以阐明耐酸根瘤菌缓解土壤酸胁迫的机制。

1 材料与方法

1.1 试验材料

供试土壤为重庆市北碚区缙云山酸性黄壤。基础理化性质：pH4.8、有机质7.28g/kg、全氮0.68 g/kg、全磷0.12g/kg、全钾10.98g/kg、有效磷5.88 mg/kg、速效钾61.39mg/kg。耐酸苜蓿根瘤菌菌株91532、91512和91522(以下简称3、4、5)为本实验室分离保存，耐酸葛藤根瘤菌菌株PR068、389、390分离自贵州和重庆市，均能在pH4.8的土壤和YMA固体平板上生长并分别能使苜蓿、葛藤植株结瘤[14,22]。紫花苜蓿种子购自江苏省连云港草业中心(发芽率85.4%)；葛藤种子购自福建省三明市沙县(发芽率86.6%)。YMA培养基：10g/L甘露醇、0.5 g/L K2HPO4、0.2g/L MgSO4·7H2O、0.1g/L NaCl、5 g/L酵母粉、15g/L琼脂粉。

1.2 试验设计

室内盆栽试验设置7个处理：1)不接种根瘤菌(CK)；2)接种葛藤根瘤菌068；3)接种葛藤根瘤菌389；4)接种葛藤根瘤菌390；5)接种苜蓿根瘤菌3；6)接种苜蓿根瘤菌4；7)接种苜蓿根瘤菌5。各处理均重复3次，分5个时期，即30d、60d、90 d、120d、150d取样。YMA培养基培养耐酸根瘤菌至OD600值约为1.0后，经4000r/min离心10min，收集菌体后重悬于新鲜YMA液体培养基中。

种子于50～60℃水中浸泡30min后捞出，白天放在阳光下暴晒，夜间转至阴凉处，期间加水保持种子湿润，当大部分种子略有膨胀时用根瘤菌拌种，即种子与菌剂(根瘤菌重∶种子重=1∶10)，加入适量1%羧甲基纤维素纳溶液充分搅拌均匀，阴干后直接用于播种[23]。

每盆装pH为4.8的酸性黄壤2kg，分别均匀散播籽粒饱满的葛藤种子20粒和紫花苜蓿种子60粒，表面覆少量湿土。栽培期间保持土壤含水量为田间持水量的60%～70%。收获植株，测定土壤养分、微生物数量，利用磷脂脂肪酸(PLFAs)生物标记法分析根际土壤微生物多样性。

1.3 试验方法

1.3.1 土壤常规性质及可培养微生物数量测定根际土壤采用抖根法取样。土壤基本理化性质(包括pH及有机质)采用常规方法测定[24]。土壤可培养微生物采用涂布计数法[25]，细菌和真菌釆用10–3～10–5的稀释度，放线菌采用10–2～10–4的稀释度。

1.3.2 土壤磷脂脂肪酸测定按照Bligh等[26]的方法提取土壤微生物磷脂脂肪酸(PLFAs)，经提取和预处理后，用Agilent6850气相色谱仪(FID检测器)分析PLFA成分。色谱条件为：HP-5柱(25.0m×0.20 μm×0.33μm)，进样量1μL，分流比10∶1，载气为H2，尾吹气高纯N2，助燃气空气，流速0.8 mL/min，汽化室温度250℃，检测器温度300℃，柱前压10.0psi。升高柱温：升温程序为170℃起始，5℃/min升至260℃，而后40℃/min升到310℃，维持1.5min。各成分脂肪酸通过MIDI Sherlock微生物鉴定系统(Version6.1,MIDI,Inc.,Newark,DE)进行鉴定,标准品为购于美国MIDI公司的C9-C20的脂肪酸甲酯，PLFA用C19:0做内标，换算PLFA的绝对含量。表征微生物的PLFAs生物标记参照文献[27]。

1.4 数据处理

使用Microsoft Excel2010对数据进行处理，使用SPSS19.0软件对试验数据进行统计分析，采用单因素ANOVA分析和LSD法检验各处理间的差异显著性(P<0.05)。

2 结果与分析

2.1 接种耐酸葛藤、苜蓿根瘤菌对根际土壤微生物数量的影响

接种耐酸根瘤菌处理的根际土壤中可培养细菌、真菌、放线菌和根瘤菌数量显著高于不接种处理的(表1和表2)(P<0.05)。自接种至120d取样，伴随着土壤中根瘤菌数量的增加(P<0.05)，不论接种葛藤或苜蓿根瘤菌，各处理根际土壤中可培养细菌、真菌、放线菌数量均逐渐升高，在120d时数量达到最高，与对照相比分别提高61.5%～348.4%、3.4%～441.7%、18.9%～255.2%。但在150d取样时，上述指标均下降。说明接种耐酸根瘤菌刺激了酸性土壤中土著微生物的繁殖，该作用可以维持4个月。接种葛藤根瘤菌显著提高了根际土壤可培养细菌的数量，接种苜蓿根瘤菌显著提高了可培养细菌及真菌的数量，菌株葛藤068处理各特征微生物类群数量显著高于葛藤389、390的处理(表1)，菌株苜蓿5处理显著高于苜蓿3、4的处理(表2)。

2.2 接种耐酸葛藤、苜蓿根瘤菌对根际土壤养分的影响

表3、表4所示，除第30天取样期，接种耐酸葛藤和苜蓿根瘤菌处理的土壤pH均显著高于每一取样期的对照处理(P<0.05)，且在整个培养期内稳步上升；除葛藤处理第30d取样、苜蓿处理第90d取样，接种处理的土壤有机质含量显著高于未接种处理，且与土壤pH相似，土壤有机质在整个培养过程中持续增加；无论葛藤或苜蓿处理，土壤全氮在30～90d取样期含量变化不大，但在120d取样期，包括未接种对照，各处理土壤全氮有明显增加，接种处理的土壤全氮显著高于对照(P<0.05)。150d土壤全氮降低至原有水平。接种耐酸根瘤菌后，土壤有效磷、速效钾显著增加，在120d达到峰值，其中有效磷含量较CK提高了24.8%～162.4%，120d之后略有下降。与对照相比，试验组对土壤全氮、铵态氮和硝态氮有显著增加的作用，120d时铵态氮提高16.6%～56.2%，硝态氮提高145.4%～225.8%，说明接种耐酸根瘤菌处理提高了土壤速效氮的释放。接种葛藤068较其他葛藤耐酸根瘤菌的效果好；苜蓿5的接种效果也好于其他耐酸苜蓿根瘤菌。

表1 接种耐酸葛藤根瘤菌对葛藤根际土壤微生物数量的影响Table 1 Effects of inoculating acid-tolerant rhizobium from kudzu on quantity of soil microorganisms

2.3 接种耐酸根瘤菌对土壤微生物PLFA含量及组成的影响

2.3.1 接种耐酸葛藤、苜蓿根瘤菌对土壤中PLFA分子种类数的影响耐酸葛藤根瘤菌施入土壤室内盆栽培养30～150d后，检测出的PLFA种类如表5所示。随着种植和接种时间的延长，土壤中PLFA种类呈逐渐增加趋势；各处理与对照在PLFA分子的种类数上并无显著差异，尤其是葛藤068、苜蓿5处理，PLFA种类数较稳定。可见施入耐酸根瘤菌对根际土壤微生物种类组成并无大的扰动。

2.3.2 接种耐酸葛藤、苜蓿根瘤菌对土壤中PLFA含量和组成的影响图1显示，接种耐酸根瘤菌后，根际土壤微生物PLFA绝对量随时间逐渐增加，尤以葛藤068、390明显。不同处理对根际土壤PLFA绝对含量的影响程度不同：葛藤389处理在取样中后期的PLFA绝对含量低于CK；而葛藤068、葛藤390的PLFA绝对含量在整个培养期内均高于CK。在培养的大部分时期，苜蓿4、5处理的PLFA含量低于CK的，而苜蓿3处理的PLFA绝对含量高于CK。在整个培养期内，相较于CK，施用葛藤390显著提高了表征细菌的PLFA的含量，葛藤068显著提高表征细菌、真菌、G+、G–的PLFA含量；苜蓿3、苜蓿5处理显著提高了中后期根际土壤表征细菌、真菌、G+、G–的PLFA含量。

不同于根际土壤可培养微生物数量变化，各处理的PLFA绝对含量在120d取样期均未达到其最高值，耐酸葛藤根瘤菌、苜蓿3处理在150d达到高峰，苜蓿4、5处理的PLFA含量则以90d样品最高。施用苜蓿根瘤菌后根际土壤PLFA总含量显著高于施用葛藤根瘤菌处理的。

2.4 接种耐酸根瘤菌对PLFA特征比值的影响

细菌/真菌常用来表征两个种群相对丰度及土壤生态系统的稳定性，土壤细菌/真菌越低则土壤生态系统越稳定[28]。施用耐酸葛藤根瘤菌068、389和耐酸苜蓿根瘤菌，在培养前期土壤中细菌与真菌的比值显著低于CK，随培养时间的延长，比值显著升高，有的处理甚至高于对照(表6、表7)。一般饱和脂肪酸/单烯不饱和脂肪酸以及异构PLFA/反异构PLFA反映环境胁迫或营养限制，外界胁迫导致微生物合成更多的单烯不饱和脂肪酸，异构PLFA/反异构PLFA比率也会增大[29]。与CK相比，接种耐酸葛藤根瘤菌提高了一般饱和脂肪酸/单烯不饱和脂肪酸值，尤以30d、120d提高显著；接种耐酸苜蓿根瘤菌在培养的中后期一般饱和脂肪酸/单烯不饱和脂肪酸比值显著高于CK。无论接种耐酸葛藤或苜蓿根瘤菌，在整个培养期内显著降低了根际土壤中异构PLFA/反异构PLFA的比值(P<0.05)。

表2 接种耐酸苜蓿根瘤菌对苜蓿根际土壤微生物数量的影响Table 2 Effects of inoculating acid-tolerant rhizobium from alfalfa on quantity of soil microorganisms

3 讨论

表5 接种耐酸根瘤菌对根际土微生物PLFA种类的影响Table 5 Effect of inoculating acid-tolerant rhizobium on types of microbial PLFAs in soil

图1 接种耐酸根瘤菌土壤微生物PLFAs含量及组成Fig. 1 Contents and composition of microbial PLFAs in soils inoculated with kudzu and alfalfa rhizobium

酸化作用发生后，土壤中盐基饱和度和阳离子交换量降低，加速土壤矿物的风化作用和土壤矿物养分的流失，对作物生长产生极大的负面影响，甚至会导致植物中毒死亡[30]。土壤微生物是生态系统的重要组成部分，土壤微生物区系组成很大程度上影响并决定着土壤的生物活性、有机质分解、腐殖质合成以及土壤养分的转化[31]，肖烨等[32]研究发现湿地土壤微生物数量与土壤养分各指标相关性达到极显著水平，而过低的土壤pH限制微生物在土壤中的定殖能力[33]。接种根瘤菌不仅可以改善植株品质，而且对提高土壤肥力也有显著作用[34–35]。已有研究证明在水培条件下，接种耐酸根瘤菌可促进葛藤、苜蓿的结瘤以及生长，接种耐酸苜蓿根瘤菌使营养液pH从酸性环境(pH4.8)升至中性环境(pH7.5左右)[15]，接种耐酸葛藤根瘤菌使培养液pH由4.6升至7.0左右[36]，有效缓解酸胁迫。朱丹等的研究结果表明，接种耐酸根瘤菌显著提高盆栽条件下酸性土壤中葛藤、紫花苜蓿的植株鲜重、地上部鲜重、根鲜重、株高、根瘤菌鲜重以及植株全氮含量，尤以接种葛藤菌株068及苜蓿菌株5的处理影响最为显著(P<0.05)，其中接种葛藤菌株068，植株鲜重显著提高29.5%(P <0.05)，接种苜蓿菌株5，植株鲜重提高137.6%(P< 0.05)。本研究在酸性土壤中接种耐酸根瘤菌，随培养时间的延长，土壤pH在整个培养期内显著升高(P<0.05)，自接种至150d，根际土壤pH均由4.8提高至6.0左右，其中接种葛藤068及苜蓿5菌株提高的效果最为显著，分别达到6.15及6.03。耐酸葛藤、苜蓿根瘤菌均能在酸性土壤中定殖且数量显著高于不接种处理，可能是由于接种耐酸葛藤、苜蓿根瘤菌提高了土壤pH，缓解酸胁迫，从而促进了根瘤菌的定殖。

根瘤菌的生物固氮作用提高了土壤和植物可利用氮素含量，适宜的土壤氮含量增加了微生物分解有机质的速率[32]，促进土壤微生物参与土壤中碳、氮循环及养分转化。本试验中，土壤有机质随培养时间延长稳步上升且显著优于不接种处理(P<0.05)。在接种初期土壤有效磷、速效钾、全氮、铵态氮和硝态氮含量显著提高，说明接种耐酸根瘤菌改善了根际生态，增加了土壤根际营养的有效性。而120d后土壤有效磷、速效钾略有下降，这可能与培养后期葛藤、紫花苜蓿进入生殖生长需要较多磷素、钾素有关；150d时土壤铵态氮和硝态氮略有降低，应是培养后期根瘤菌活性下降和植物营养需求增大的共同作用结果[16]。

表6 接种耐酸葛藤根瘤菌后土壤微生物各类群PLFA比值Table 6 Ratios of different microorganism PLFA contents in soil inoculated with Kudzu

PLFA是活体微生物细胞膜的恒定组分，对环境因素敏感且在体外迅速降解，特定菌群PLFA含量变化可反映原位土壤微生物活体的生物量以及微生物群落结构的变化[37]。本研究结果还表明，接种耐酸根瘤菌并不影响土壤微生物种类组成，但接种葛藤068菌株、葛藤390菌株和苜蓿菌株3使得土壤PLFA绝对含量均高于CK。这说明接种耐酸根瘤菌后，根际土壤pH显著提高，缓解了酸胁迫，促进表征根际土壤细菌、真菌、G+、G–的PLFA绝对含量的升高，即根际土壤微生物数量的提高，因而促进了土壤有机质的分解，以及有效磷和速效钾的释放。营养的供应反过来又继续维持土壤微生物的生长和生物活性。正如本研究结果，接种初期接种处理的细菌与真菌PLFA比值较未接种对照降低，土壤生态系统稳定性增加[38–39]。但随着接种时间的延长，在接种了120d后，接种耐酸根瘤菌后根际土壤细菌/真菌值显著高于CK，土壤细菌的数量显著增加，可能原因是豆科植物土壤微生物区系中自生固氮菌、氨化细菌、硝化细菌等数量较多，真菌和细菌结构组成受固氮微生物的影响[40]。

低碳源、低氧浓度、低pH和高温情况下，异构PLFA/反异构PLFA比值增大[29]。而本研究中异构PLFA/反异构PLFA值、一般饱和脂肪酸/单烯不饱和脂肪酸值均显著低于CK，表明接种耐酸根瘤菌缓解了土壤微生态原有的胁迫环境。根际土壤生态系统变得活跃，根际土壤养分条件得到改善，促进根际分泌物的形成，显著降低了酸性土壤的环境胁迫及养分胁迫，从而提高豆科宿主产量及品质。Brigido等[14]研究结果表明耐酸根瘤菌的耐酸性能与来源土壤及其微生物菌群有关；本文的研究进一步证明，耐酸根瘤菌在酸性土壤中的定殖还能改善酸性土壤的微生态条件。

表7 接种耐酸苜蓿根瘤菌后土壤微生物各类群PLFA比值Table 7 Ratios of different microorganism PLFA contents in soil inoculated with alfalfa

4 结论

酸性土壤中施用耐酸葛藤、苜蓿根瘤菌显著提高土壤pH，增加根际土壤中全氮、有机质的含量，有效磷、铵态氮、硝态氮、速效钾都呈先升高后略有降低的趋势，在接种120d时达到峰值且以菌种葛藤068、苜蓿5增加效果最为显著。随培养时间延长，根际土壤可培养微生物数量显著升高，耐酸葛藤、苜蓿根瘤菌均能在酸性土壤中定殖且数量显著高于不接种处理(P<0.05)。根际土壤中检测出的特征脂肪酸种类数量与未接种处理无明显差别，葛藤068和390菌株，苜蓿3和5菌株处理显著增加土壤各微生物群落的PLFA含量。由土壤微生物PLFA的相对丰度可知，酸性黄壤中接种耐酸葛藤、苜蓿根瘤菌能显著降低酸性土壤条件对土壤微生物的胁迫。在酸性土壤中接种耐酸根瘤菌，使根际生态得到了改善。

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Effect of inoculating aciduric rhizobia on rhizospheric microecology of the leguminous hosts in acid soil

REN Yu-shuang1,2,ZHU Dan1,3,JIANG Wei1,2,LI Jiu-ran1,2,ZHANG Lei1,2*
(1 College of Resource and Environment, Southwest University, Chongqing 400716, China; 2 National Base of International S&TCollaboration on Water Environmental Monitoring and Simulation in TGR Region, Chongqing 400716, China; 3 College of Biology, Hunan University, Changsha 410082, China)

【Objectives】Existing studies proved that inoculating aciduric rhizobium to the rhizosphere could improve the ability of leguminous host to survive in acid soils.In this paper,the PLFA and other methods were used to study the effect of inoculating rhizobium on rhizospheric soil in order to understand the mechanism of the improvement.【Methods】A pot experiment was conducted using acid soil of pH4.8.Aciduric kudzu rhizobium strains068,389,and390and alfalfa rhizobium strains91522,91512and91532were inoculated to the corresponding leguminous host plants.Rhizospheric soil samples were collected on the30th,60th,90th,120thand150thday after the inoculation.Soil nutrients,culturable microorganisms and microbial community diversity were measured in the samples.【Results】1)Inoculating acid-tolerant rhizobia improved rhizospheric soil pH from4.8 to6.0,significantly improved the contents of soil organic matter,NH4+-N,NO3–-N,available Pand available Kin rhizosphere(P<0.05).The peak contents of soil available P,NH4+-N,NO3–-N and organic matter in the inoculating treatments were at the120thd,they were23.16–48.68mg/kg,61.21–81.96mg/kg,65.05–86.38 mg/kg and11.85–12.87g/kg,with increase of24.8%–162.4%,16.6%–56.2%,145.4%–225.8%,1.4%–10.1%, comparing with those of the control.2)The population of soil microorganisms increased significantly during the cultural period(P<0.05).The peak microbial community appeared at the120thd samples,the culturable bacteria,fungi and actinomycetes in the treatments were48.00×107–133.3×107cfu/g,20.11×104–155.9×104cfu/g,and3.21×104–9.59×104cfu/g,increased by61.5%to348.4%,3.4%to441.7%,18.9%to255.2% respectively,comparing with those of the control.3)PLFA analysis showed that although the types of microbial PLFAs in rhizospheric soil were not significantly different between the inoculation treatments and the control,the ratio of heterogeneous PLFA/anti heterogeneous PLFA was reduced significantly,showing effective reduction of acid stress on rhizosphere microorganisms.【Conclusions】Inoculating the related aciduric rhizobium strains to the leguminous hosts planted in acid soil could improve the rhizospheric soil pH,organic matter,and available nutrients significantly,and hence improve the ability of rhizopheric micro-organisms to deal with soil acidity stress.

acidity stress;aciduric kudzu rhizobium;aciduric alfalfa rhizobium;phospholipid fatty acid; rhizospheric micro-ecosystem

2016–09–23接受日期：2016–12–14

农业部“引进国际先进农业科学技术”项目（2013-Z30）资助。

任豫霜（1992—），女，四川成都人，硕士研究生，主要从事土壤与环境微生物研究。E-mail：renys92@163.com

*通信作者E-mail:zhanglei5401@163.com