黄蜀葵种子中资源性化学成分分析与利用价值探讨

刘 杰,郭 盛,朱振华,严 辉,钱大玮,段金廒(南京中医药大学江苏省中药资源产业化过程协同创新中心,国家中医药管理局中药资源循环利用重点研究室,中药资源产业化与方剂创新药物国家地方联合工程研究中心,江苏南京 210023)



黄蜀葵种子中资源性化学成分分析与利用价值探讨

刘 杰,郭 盛*,朱振华,严 辉,钱大玮,段金廒*
(南京中医药大学江苏省中药资源产业化过程协同创新中心,国家中医药管理局中药资源循环利用重点研究室,中药资源产业化与方剂创新药物国家地方联合工程研究中心,江苏南京 210023)

分别采用气相色谱-质谱联用法、超高效液相色谱串联三重四极杆质谱法、紫外可见分光光度法、粗纤维测定法、BCA试剂盒法对黄蜀葵[Abelmoschusmanihot(L.)Medic.]种子中的主要成分进行分析评价。结果表明,黄蜀葵种子含有丰富的脂肪酸类、可溶性总多糖、总纤维、可溶性蛋白、游离氨基酸类、核苷及碱基类成分,脂肪酸总量(棕榈油酸、棕榈酸、亚油酸、油酸、亚麻酸、硬脂酸)为55.47～102.17 mg/g,不饱和脂肪酸占脂肪酸总量的78.01%～79.40%;可溶性总多糖、总纤维和可溶性蛋白含量分别为6.53%～6.68%、12.77%～14.26%、10.36%～14.51%;检出的19种游离氨基酸类和7种核苷及碱基类成分中,氨基酸类成分较为丰富100.82～101.51 mg/g,其中必需氨基酸约占游离氨基酸总量的25%;核苷类成分含量较低(3.01～3.11 mg/g)。研究结果为黄蜀葵种子的资源化利用提供了理论依据。

黄蜀葵,种子,化学成分,资源化利用

黄蜀葵(AbelmoschusmanihotL. Medic),又称黄葵,为锦葵科(Malvaceae)秋葵属(Abelmoschus)一年至多年生草本植物,主要分布于江苏、广东、广西、福建、湖南、湖北、河南、云南、贵州、四川、山东、河北和陕西等省区[1],多生于山坡路旁或庭园周围,现多人工种植。《本草纲目》中记载黄蜀葵的花冠、种子、叶、茎、根均可药用,民间亦常作食用。其中花冠具有清热利湿、消肿解毒之功;而种子具有利水、通经、消肿解毒之功,可用于淋证、水肿、便秘、乳汁不通、痈肿、跌打损伤的治疗,为“催生及利小便要药”。目前,国内外关于黄蜀葵的研究与开发利用多集中于其花冠[2-4],对其种子的研究及开发利用少见报道。相对于同科同属植物黄秋葵(A.esculentus)种子已广泛用于相关功能性产品的开发利用[5-6],黄蜀葵种子目前尚未得到充分利用[7]。本研究采用现代分析方法对黄蜀葵种子中含有的与其营养保健功效密切相关的化学成分(脂肪酸类、核苷类、氨基酸类、可溶性多糖类、总纤维素及可溶性蛋白)进行分析评价,并在此基础上探讨其资源利用价值,以期为我国黄蜀葵种子资源的精细化利用提供依据,为构建黄蜀葵植物资源绿色发展产业链提供支撑。

1 材料与方法

1.1 材料与仪器

37种脂肪酸甲酯混合标准品溶液 批号:CDDE-GLC-NESTLE-37-25 MG,上海安谱实验科技股份有限公司,除棕榈酸甲酯浓度为1.32 mg/mL,其余脂肪酸甲酯浓度均为0.66 mg/mL;氨基酸类对照品:亮氨酸、苯丙氨酸、异亮氨酸、色氨酸、γ-氨基丁酸、甲硫氨酸、脯氨酸、缬氨酸、牛磺酸、酪氨酸、半胱氨酸、丙氨酸、反式-4-羟基-脯氨酸、苏氨酸、谷氨酸、赖氨酸、谷氨酰胺、丝氨酸、天冬酰胺、瓜氨酸、精氨酸、组氨酸、鸟氨酸、天冬氨酸 纯度>98%,中国惠兴生化试剂有限公司;核苷及碱基类对照品:胸腺嘧啶、胸苷、2′-脱氧尿苷、2′-脱氧腺苷、腺嘌呤、次黄嘌呤、2′-脱氧肌苷、胞嘧啶、2′-脱氧腺苷-5′-单磷酸 纯度>98%,Sigma公司;葡萄糖对照品 Sigma公司;葡萄糖醛酸对照品 中国药品生物制品检定所;BCA蛋白测量试剂盒 南京碧云天医药试剂有限公司;乙腈、甲醇、甲酸 色谱纯,德国Merck公司;其他试剂 分析纯,上海国药集团化学试剂有限公司;黄蜀葵种子 于2015年10月分别采集于江苏省宜兴市(HSK-1)、江苏省南京市南京中医药大学药苑(HSK-2)和江苏省南京市栖霞区(HSK-3),其原植物经南京中医药大学段金廒教授鉴定为黄蜀葵(AbelmoschusmanihotL. Medic.),以上各样品采集后,40 ℃干燥,粉碎成粗粉,置干燥器中备用。

Waters ACQUITY UPLC系统(含四元泵溶剂系统,在线脱气机和自动进样器)、Xevo TQ 检测器、MassLynxTM质谱工作站软件 Waters公司;Perkin Elmer Clarus 680气相色谱仪串联AxIONiQT质谱检测器 美国Perkin Elmer公司;NIST标准质谱图库(2011版) 美国国家标准技术研究院;WILEY标准质谱图库 美国John Wiley & Sons公司;Enspire多功能酶标仪 美国Perkin Elmer公司;UV-2000紫外-可见分光光度计 北京莱伯泰科仪器有限公司;FIWE 3/6纤维素测定仪 北京盈盛恒泰科技有限公司;Microfuge 22R Centrifuge离心机 美国Beckman Coulter公司;KQ-500B超声波清洗机(功率150 W) 昆山市超声仪器有限公司;Milli-Q Integral 5超纯水系统 默克密理博公司;马弗炉 上海洪纪仪器设备公司;Sartorius BT125D电子分析天平 德国塞利多斯公司。

1.2 实验方法

1.2.1 脂肪酸类成分测定

1.2.1.1 供试品溶液制备 取黄蜀葵种子粉(40目)约1.0 g,精密称定,置于50 mL具塞锥形瓶中,精密加入20 mL正己烷,称重,静置过夜,室温超声(100 Hz)提取30 min,称重,用正己烷补足损失重量,摇匀,3000 r/min离心10 min,取上清液2 mL,置于10 mL量瓶中,加入浓度为0.4 mol/L的氢氧化钾-甲醇溶液1 mL,振摇1 min后静置15 min,加超纯水至刻度,静置分层,移取上层液体约1 mL于2 mL离心管中,加入少量无水硫酸钠静置1 min得供试样品甲酯化溶液。精密移取黄蜀葵种子脂肪酸甲酯化溶液100 μL置于2 mL容量瓶中,加入10 μL内标物,依次用正己烷稀释定容,混匀,得供试品溶液[8]。以上溶液过0.22 μm有机滤膜,进样1 μL进行GC-MS/SIM分析。

1.2.1.2 对照品溶液配制 以正己烷为溶剂配成除棕榈酸甲酯浓度为66 μg/mL,其它脂肪酸甲酯浓度均为33 μg/mL的混合对照品溶液。

内标溶液制备:以正己烷为溶剂配成质量浓度为90.3 μg/mL的苯甲酸甲酯内标溶液,于4 ℃保存,备用。

1.2.1.3 色谱分析条件 Agilent HP-5 MS石英毛细管色谱柱(30 m×0.25 mm,0.25 μm),程序升温:初始温度60 ℃,保持4 min;以6 ℃/min升至140 ℃,保持4 min;以3 ℃/min升至180 ℃,保持4 min;以1 ℃/min升至225 ℃,保持3 min;以10 ℃/min升至280 ℃,保持2 min。载气:氦气;分流比:20∶1;流速:1.0 mL/min;进样口温度:200 ℃;检测口温度:250 ℃;进样量:1 μL。

1.2.1.4 质谱条件 电子轰击离子源(EI),离子源温度230 ℃,电子能量70 eV,气相色谱-质谱接口温度230 ℃,扫描方式:SCAN(质量扫描范围m/z 40～400)。在上述色谱条件下,得到混合脂肪酸甲酯对照品溶液及供试品溶液的GC-MS总离子流色谱图。同时依据不同脂肪酸特征离子中丰度相对较大的碎片离子作为定量离子进行积分。

1.2.2 可溶性总多糖成分测定

1.2.2.1 供试品溶液制备 取黄蜀葵种子样品粗粉各1.0 g,精密称定,置于100 mL具塞锥形瓶中,加入50 mL 80%乙醇,室温静置1 h后超声处理30 min,水浴回流2 h后,趁热抽滤,热乙醇洗涤残渣。残渣烘干后加入20 mL蒸馏水,称重,回流提取2 h,取出放冷,加蒸馏水补足减失重量,摇匀,15000 r/min离心10 min,取上清液,即得用于中性多糖和酸性多糖测定的供试品溶液[9]。

1.2.2.2 对照品溶液制备 精密称取经105 ℃干燥至恒重的无水葡萄糖对照品、葡萄糖醛酸对照品,分别加水溶解制备成浓度分别为101.6、101.5 μg/mL的对照品储备液。

1.2.2.3 标准曲线的绘制 参考文献方法[9],精密量取葡萄糖对照品储备液0.2、0.4、0.6、0.8、1.0 mL,分别置10 mL干燥具塞试管中,加蒸馏水至1.0 mL,摇匀,精密加入5%苯酚溶液2.0 mL,混匀,再精密加入浓硫酸7.0 mL,充分混匀,置沸水浴中加热20 min,冷却至室温后,于490 nm处测吸光度,以空白溶液为对照。以吸光度(Y)为纵坐标,以对照品溶液浓度(X)为横坐标进行线性回归,绘制葡萄糖标准曲线。得到用于测定中性多糖的葡萄糖对照品回归方程为Y=0.013X-0.169,r=0.9940,线性范围为20.32～101.6 μg/mL。

精密量取葡萄糖醛酸对照品储备液0.2、0.4、0.6、0.8、1.0 mL,分别置于10 mL干燥具塞试管中,加蒸馏水至1.0 mL,摇匀,精密加入12.5 mol/L四苯硼钠硫酸溶液5.0 mL,混匀,置沸水浴中加热10 min后,冷却至室温后,混匀,再精密加入0.125%咔唑无水乙醇溶液0.2 mL,充分混匀,置沸水浴中加热15 min,冷却5 min后,混匀,于512 nm处测吸光度,以空白溶液为对照。以吸光度(Y)为纵坐标,以对照品溶液浓度(X)为横坐标进行线性回归,绘制葡萄糖醛酸标准曲线。得到用于测定酸性多糖的葡萄糖醛酸对照品回归方程为Y=0.008X-0.057,r=0.9910,线性范围为20.30～101.5 μg/mL。

1.2.3 总纤维素测定方法 参照Weende法[10],精密称取干燥至恒重的黄蜀葵种子粗粉2.0 g,加乙醚脱脂后,干燥,加入煮沸的浓度为1.25%(w/w)硫酸溶液150 mL,并加入数滴正辛醇(消泡剂),煮沸30 min,除去硫酸,用热蒸馏水约30 mL清洗样品3次,再加入已煮沸的浓度为1.25%(w/w)的KOH溶液150 mL,并加入数滴正辛醇,煮沸30 min后,加热蒸馏水约30 mL清洗样品3次,再用丙酮25 mL清洗3次,将清洗残留物及玻璃坩埚一并置于烘箱中130 ℃烘干1 h,在干燥器中冷却至室温并精密称重,即为总纤维含灰分重量(W1)。将试样和玻璃坩埚于500 ℃马弗炉中灼烧3 h,在干燥器中冷却至室温并精密称重,即为灰分重量(W2)。根据计算公式:粗纤维(%)=(W1-W2)/W×100,计算样品中总纤维素含量,其中W1为粗纤维含灰分重量,W2为灰分重量,W为样品重量。

1.2.4 可溶性总蛋白成分测定

1.2.4.1 供试品溶液制备 取黄蜀葵种子样品粗粉1.0 g,精密称量,置于50 mL具塞锥形瓶中,加入40 mL纯水,室温静置1 h后超声提取30 min,在80 ℃水浴回流30 min后,冷却,用蒸馏水补充失重,摇匀,15000 r/min离心10 min,准确量取上清液200 μL置于2 mL量瓶中,依次用蒸馏水稀释定容,混匀,即得供试品溶液[11]。

1.2.4.2 对照品溶液制备 完全溶解牛血清蛋白标准品,配制对照品储备液浓度为0.5 mg/mL,该储备液于24 h之内稳定。

1.2.4.3 标准曲线绘制 精密吸取对照品储备液0、1、2、4、8、12、16、20 μL分别加入到96孔板中,加蒸馏水补足至20 μL,各孔再加入200 μL BCA工作液,摇匀,37 ℃培养箱中放置20～30 min,于562 nm处测吸光度,以空白溶液为对照。以吸光度(Y)为纵坐标,对照品溶液浓度(X)为横坐标进行线性回归,绘制蛋白标准曲线。得到用于测定可溶性蛋白含量的对照品回归方程为Y=1.167X-0.102,r=0.9990,线性范围为0.0～0.5 mg/mL。

1.2.5 核苷及氨基酸类成分测定

1.2.5.1 供试品溶液制备 取黄蜀葵种子样品粗粉约1.0 g,精密称量,置于50 mL具塞锥形瓶中,精密加入40 mL蒸馏水,称重,静置30 min后,超声提取30 min,再称重,用蒸馏水补足损失重量,摇匀,15000 r/min条件下离心10 min。准确量取上清液200 μL置于2 mL量瓶中,依次用蒸馏水稀释定容,混匀,得供试品溶液,过0.22 μm滤膜,冷藏备用。

1.2.5.2 对照品溶液制备 精密称取24种氨基酸对照品适量,置于10 mL量瓶中,加蒸馏水溶解并定容,制成含天冬氨酸、亮氨酸、苯丙氨酸、异亮氨酸、色氨酸、γ-氨基丁酸、甲硫氨酸、脯氨酸、缬氨酸、牛磺酸、酪氨酸、半胱氨酸、α-丙氨酸、反式-4-羟基-脯氨酸、苏氨酸、谷氨酸、赖氨酸、谷氨酰胺、丝氨酸、天冬酰胺、瓜氨酸、精氨酸、组氨酸、鸟氨酸的混合对照品储备液。

精密称取9种核苷及碱基类对照品适量,置于10 mL量瓶中,加蒸馏水定容,制成含胸腺嘧啶、胸苷、2′-脱氧尿苷、2′-脱氧腺苷、腺嘌呤、次黄嘌呤、2′-脱氧肌苷、胞嘧啶、2′-脱氧腺苷-5′-单磷酸的混合对照品储备液。

1.2.5.3 色谱分析条件 色谱柱:ACQUITY UPLC BEH Amide色谱柱(100 mm×2.1 mm,1.7 μm);流动相A:含5 mmol/L甲酸铵、5 mmol/L乙酸铵和0.2%甲酸的水溶液;流动相B:含1 mmol/L甲酸铵、1 mmol/L乙酸铵和0.2%甲酸的乙腈溶液;梯度洗脱:0～3 min,10% A;3～9 min,10%～18% A;9～15 min,18%～20% A;15～16 min,20%～46% A;16～18 min,46%～46% A;18～19 min,46%～10% A;19～20 min,10% A;流速:0.4 mL/min,柱温:35 ℃,进样体积:2 μL[12-13]。

1.2.5.4 质谱检测条件 离子化模式ESI+,毛细管电压3.0 kV,多反应模式(MRM)检测,离子源温度150 ℃,脱溶剂气流量和温度分别为1000 L/h、500 ℃,碰撞气流量为0.15 mL/min、锥孔气流量为50 L/h,所测氨基酸与核苷类物质的碰撞能量和锥孔电压同文献[12-13]。

1.3 数据统计分析

测定结果采用平均值±标准差表示。所有数据采用SPSS 18.0统计软件包进行单因素方差分析,显著性检验(p<0.05)以LSD检验方法进行。

2 结果与分析

2.1 脂肪酸类化学成分的分析与评价

取黄蜀葵种子按“1.2.1.1”项下方法制备供试品溶液,依次进样分析,结果见表1,GC-MS总离子流见图1,选择离子流见图2。

图1 黄蜀葵种子中脂肪酸类成分GC-MS总离子流图Fig.1 GC-MS of the fatty acids in the seed of A. manihot注:A-混合对照品溶液;B-供试品溶液; 1-棕榈油酸;2-棕榈酸;3-亚油酸;4-油酸; 5-亚麻酸;6-硬脂酸;IS-内标物;图2同。

由表1可知,3批次样品中,均检测出6种脂肪酸类成分,且3批次样品中均以亚油酸含量相对较高,分别为44.90、23.69、26.78 mg/g。3批次样品脂肪酸总量之间存在显著性差异,其中江苏宜兴地区产样品(HSK-1)中总脂肪酸含量最高,为102.17 mg/g。6种脂肪酸类成分含量由高至低依次为:亚油酸>油酸>棕榈酸>硬脂酸>亚麻酸>棕榈油酸;不饱和脂肪酸含量占脂肪酸总量的78.01%～79.40%。3批次样品饱和脂肪酸、单不饱和脂肪酸、多不饱和脂肪酸比例分别为1∶1.77∶2.27、1∶1.67∶2.10和1∶1.69∶2.01,各样品间三种类型脂肪酸比例未见显著差异。据文献报道[14-18],不饱和脂肪酸在稳定细胞膜功能、调控基因表达、维持细胞因子和脂蛋白平衡、防治心血管疾病、抗炎、调节免疫和促进生长发育等方面起着重要作用,具有重要的保健营养价值,且黄蜀葵种子中三种类型脂肪酸比例接近于世界卫生组织推荐的人类食用油脂肪酸标准[19],因此可作为保健食用油开发。

表2 黄蜀葵种子中可溶性总多糖类、总纤维和可溶性蛋白质类成分含量(%)Table 2 The contents of soluble polysaccharides,total cellulose and soluble protein in seeds of A. manihot(%)

注:同一列数据具有相同字母者表示无显著差异,具不同字母者表示具有显著差异(p<0.05)。

表1 黄蜀葵种子中的脂肪酸类成分含量(mg/g)Table 1 The content of fatty acids in the seeds of A. manihot(mg/g)

注:同一行数据具有相同字母者表示无显著差异,具不同字母者表示具有显著差异(p<0.05)。

2.2 可溶性总多糖的分析与评价

分别取3批次黄蜀葵种子,按“1.2.2.1”项下方法制备供试品溶液,并按照“1.2.2.3”项下方法分析其可溶性多糖类组分含量,分析结果见表2。结果显示,不同批次黄蜀葵种子中均为中性多糖含量高于酸性多糖,可溶性多糖总含量在6.53%～6.68%。不同产地的黄蜀葵样品中可溶性总多糖含量未见显著差异。有研究显示[7],黄蜀葵植物含有的多糖类组分多具有凝胶特性及可降解性,因此可以黄蜀葵种子为主要原料提取制备多糖类组分用于制备食品工业的可食性包装材料及增稠剂、稳定剂等及中药凝胶剂的基质。

2.3 总纤维素的分析与评价

相比于黄秋葵种子中粗纤维的含量为20.68%[6],不同批次黄蜀葵种子中总纤维类分析结果显示(表2),其总纤维含量在12.77%～14.26%,虽然含量低于黄秋葵种子,但仍旧具有利用价值,并且其中南京市所产样品(HSK-2、HSK-3)总纤维含量显著高于江苏宜兴市产样品(HSK-1),可能与产地生长环境不同有关。

2.4 可溶性总蛋白的分析与评价

分别取3批次黄蜀葵种子,按“1.2.4.1”项下方法制备供试品溶液,并按照“1.2.4.3”项下方法经显色后分析其总蛋白含量,分析结果见表2。结果显示,不同批次黄蜀葵种子可溶性蛋白含量范围在10.36%～14.51%之间,而黄秋葵种子中的粗蛋白含量[6]为26.82%,这其中包含可溶性蛋白成分,所以黄蜀葵种子中可溶性蛋白含量可以开发利用。此外,不同产地所产样品可溶性蛋白含量存在显著差异,其中江苏宜兴地区的样品(HSK-1)中可溶性蛋白含量最高,为14.51%,显著高于其他两个产地样品。该研究结果与3批次样品中总纤维测定结果表现出相反趋势,提示在黄蜀葵种子中当纤维类物质含量升高时,其蛋白类物质含量存在下降的趋势,有待进一步研究证实。

图2 黄蜀葵种子中脂肪酸类成分GC-MS选择离子流色谱图Fig.2 SIM of GC-MS for fatty acids in the seeds of A. manihot

2.5 核苷及氨基酸类化学成分的分析与评价

氨基酸类成分分析结果(表3)显示,在黄蜀葵种子中共检出15种组成蛋白质的游离氨基酸类和4种非蛋白质氨基酸类化学成分(γ-氨基丁酸、反式-4-羟基-脯氨酸、瓜氨酸和鸟氨酸),其中3批次黄蜀葵种子中游离氨基酸总量在100.82～101.51 mg/g;人体必需氨基酸总量在25.16～25.51 mg/g,必需氨基酸约占游离氨基酸总和的25%。各氨基酸中以亮氨酸、谷氨酸、天冬氨酸和精氨酸含量相对较高,分别占氨基酸总量11.55%～11.61%、14.09%～14.23%、10.98%～12.40%、10.98%～12.31%。3批次样品氨基酸组成参照FAO/WHO标准计算EAAI指数(必需氨基酸指数)分别为2.72、2.75和2.78,表明黄蜀葵种子中含有的氨基酸类组分营养价值较高[20]。各样品中共测得7种核苷及碱基类化学成分,分别为:胸腺嘧啶、胸苷、2′-脱氧尿苷、2′-脱氧腺苷、腺嘌呤、次黄嘌呤、胞嘧啶,其总量为3.01～3.11 mg/g。氨基酸及核苷类化学成分为维持生命活动的重要营养保健成分,为重要的资源性化学物质,黄蜀葵种子中富含游离氨基酸及核苷类化学成分,其中必需氨基酸总量较高,且含有可参与多种代谢活动,具有神经抑制作用的功能性氨基酸γ-氨基丁酸,因此具有较高的营养保健价值。

3 结论

资源的利用价值在于其可利用物质的多用性和多宜性特点[21]。研究表明,黄蜀葵种子中含棕榈油酸、棕榈酸、亚油酸、油酸、亚麻酸、硬脂酸,脂肪酸总量为55.47～102.17 mg/g,不饱和脂肪酸占脂肪酸总量的78.01%～79.40%,可溶性总多糖、总纤维和可溶性蛋白含量分别为6.53%～6.68%、12.77%～14.26%、10.36%～14.51%,检出的19种游离氨基酸类和7种核苷及碱基类成分中,氨基酸类成分较为丰富,含量为100.82～101.51 mg/g,其中必需氨基酸约占游离氨基酸总量的25%;核苷类成分含量较低(3.01～3.11 mg/g)。脂肪酸类、可溶性总多糖、总纤维、可溶性蛋白、游离氨基酸类、核苷及碱基类成分均有检出并且脂肪酸含量较多,可开发用作植物油。

表3 黄蜀葵种子中氨基酸类和核苷及碱基类成分含量结果(mg/g)Table 3 The contents of nucleosides and amino acids in seeds of A. manihot(mg/g)

注:“-”表示低于检测限;#:必需氨基酸。

本研究通过对黄蜀葵种子中多类型化学成分的分析,基本明晰了其可利用物质基础与组成特点,为构建黄蜀葵种子分层次、多途径资源化利用策略,创新黄蜀葵种子的资源利用价值,提高黄蜀葵植物资源的利用效率,最终为构建黄蜀葵植物资源循环经济产业链及绿色发展策略提供了支撑。

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Analysis of the chemical constituents in the seeds ofAbelmoschusmanihotand discussion on its utilization value

LIU Jie,GUO Sheng*,ZHU Zhen-hua,YAN Hui,QIAN Da-wei,DUAN Jin-ao*

(Jiangsu Collaborative Innovation Center of Chinese Medicinal Resources Industrialization,State Administration of Traditional Chinese Medicine Key Laboratory of Chinese Medicinal Resources Recycling Utilization,National and Local Collaborative Engineering Center of Chinese Medicinal Resources Industrialization and Formulae Innovative Medicine,Nanjing University of Chinese Medicine,Nanjing 210023,China)

The chemical constituents of the seeds ofAbelmoschusmanihot(L.)Medic. were determined by GC-MS,UV-Vis spectrophotpmetry,Weende,BCA and UPLC-TQ/MS. The seed ofA.manihotwas rich in fatty acids,soluble polysaccharides,celluloses,soluble protein,amino acids and nucleosides.Total content of the fatty acids(palmitoleic acid,palmitic acid,linolic acid,oleic acid,linolenic acid,stearic acid)was 55.47～102.17 mg/g,and the unsaturated fatty acids accounted for 78.01%～79.40% of all these fatty acids. The contents of soluble polysaccharides,celluloses and soluble protein were 6.53%～6.68%,12.77%～14.26%,and 10.36%～14.51%,respectively. Total of 19 amino acids and 7 nucleosides were detected in the seed,and the content of amino acids were 100.82～101.51 mg/g,in which essential amino acids were accounted for 25%. The content of nucleosides in the seed was determined as 3.01～3.11 mg/g. The results provided a theoretical basis for the resourceful utilization of the seed ofA.manihot.

Abelmoschusmanihot(L.)Medic;seed;chemical composition;resourceful utilization

2016-10-14

刘杰(1992-)，男，硕士研究生，研究方向：中药资源化学，E-mail:liujie041210123@163.com。

*通讯作者:郭盛(1977-)，男，博士，副研究员，研究方向：中药资源化学与资源循环利用，E-mail:guosheng@njucm.edu.cn。 段金廒(1956-)，男，博士，教授，研究方向：中药资源化学与资源循环利用，E-mail:dja@njucm.edu.cn。

江苏省产学研合作前瞻性联合研究项目(BY2015008-04)；江苏省高校中药学优势学科II 期建设项目(2014-ysxk)。

TS207.3

A

1002-0306(2017)14-0020-07

10.13386/j.issn1002-0306.2017.14.005