HPLC法同时测定栀子金花分散片中7种成分的含量Δ
2017-07-25肖娅李晶常金花陈威刘翠哲刘喜纲河北省中药研究与开发重点实验室承德医学院中药研究所河北承德067000
肖娅,李晶,常金花,陈威,刘翠哲,刘喜纲(河北省中药研究与开发重点实验室/承德医学院中药研究所,河北承德067000)
HPLC法同时测定栀子金花分散片中7种成分的含量Δ
肖娅*,李晶,常金花,陈威,刘翠哲,刘喜纲#(河北省中药研究与开发重点实验室/承德医学院中药研究所,河北承德067000)
目的:建立同时测定栀子金花分散片中栀子苷、黄芩苷、芦荟大黄素、大黄酸、大黄素、大黄酚、大黄素甲醚含量的方法。方法:采用高效液相色谱法。色谱柱为Dimonsil C18,流动相为甲醇-0.05%磷酸溶液(梯度洗脱),流速为0.8m L/m in,检测波长为254 nm,柱温为25℃,进样量为20μL。结果:栀子苷、黄芩苷、芦荟大黄素、大黄酸、大黄素、大黄酚和大黄素甲醚检测进样量线性范围分别为0.032 3~0.323μg(r=0.999 8)、0.137 4~1.374μg(r=0.999 9)、0.003 72~0.037 2μg(r=0.999 7)、0.006 9~0.069μg(r=0.999 5)、0.003 32~0.033 2μg(r=0.999 7)、0.008 64~0.086 4μg(r=0.999 7)、0.001 22~0.012 2μg(r=0.999 5);定量限分别为0.032 1、0.137 4、0.003 72、0.006 7、0.003 30、0.008 64、0.001 22µg,检测限分别为0.009 5、0.004 1、0.001 2、0.002 0、0.001 0、0.002 6、0.000 3µg;精密度、稳定性、重复性试验的RSD<3%;加样回收率分别为96.54%~99.52%(RSD=1.17%,n=6)、97.23%~101.23%(RSD=1.36%,n=6)、97.22%~101.25%(RSD=1.83%,n=6)、97.32%~100.23%(RSD=1.09%,n=6)、97.99%~102.71%(RSD=1.73%,n=6)、96.99%~100.23%(RSD=1.21%,n=6)、96.99%~103.01%(RSD=2.31%,n=6)。结论:该方法操作简便、重复性好,可用于同时测定栀子金花分散片中7种成分的含量。
高效液相色谱法;栀子金花分散片;栀子苷;黄芩苷;芦荟大黄素;大黄酸;大黄素;大黄酚;大黄素甲醚;含量
栀子金花分散片是由栀子金花丸剂型改进而成,由栀子、黄连、黄芩、黄柏、大黄、金银花、知母、天花粉等8味中药组成[1-4],收载于2015年《中国药典》(一部)[5],具有清热泻火、凉血解毒的功效。本课题组前期将方中药物提取后,加入辅料制成栀子金花分散片[6-7],由于分散片中有效成分较多,为了更好地控制其质量,需建立该制剂中多种有效成分的含量测定方法。因此,本课题组采用高效液相色谱法(HPLC)建立了测定该制剂中7种有效成分的方法,以期为完善栀子金花分散片的质量控制提供参考。
1 材料
1.1 仪器
1260型HPLC仪,包括二极管阵列检测器、自动进样器、EZChrom色谱工作站(美国Agilent公司);N-1100型旋转蒸发仪(东京理化公司);SHD-Ⅲ型循环水式多用真空泵(保定高新区阳光科教仪器厂);ZDY-8型重型单冲压片机(上海远东制药机械总厂);JA-2003型电子天平(北京精科电子天平);AG-254型电子分析天平(瑞士Mettler-Toledo公司);DT5-6型高速离心机(北京时代北利离心有限公司);KQ2200DE型数控超声波清洗器(昆山市超声仪器有限公司,功率:100W,频率:40 kHz);XY-500A型高速多功能粉粹机(浙江省永康市松青五合金工具厂);M illi-Q Adrantage A10型超纯水仪(美国M illipore公司)。
1.2 药品与试剂
栀子金花分散片(河北省中药研究与开发重点实验室/承德医学院中药研究所自制,批号:20140401、20140402、20140403,规格:0.5 g/片);栀子苷对照品(批号:110749-201115,纯度:99.7%)、黄芩苷对照品(批号:110715-201117,纯度:91.7%)、芦荟大黄素对照品(批号:110795-201308,纯度:97.8%)、大黄酸对照品(批号:110757-200206,纯度:>98%)、大黄素对照品(批号:110756-200110、纯度:>98%)、大黄酚对照品(批号:110796-201319,纯度:99.6%)、大黄素甲醚对照品(批号:110758-201415,纯度:99.1%)均购自中国食品药品检定研究院;甲醇为色谱纯,其余试剂均为分析纯,水为超纯水。
2 方法与结果
2.1 色谱条件
色谱柱:DimonsilC18(150mm×4.6mm,5μm);流动相:甲醇(A)-0.05%磷酸溶液(B),梯度洗脱(0~18m in,25%A;18~20min,25%→35%A;20~30m in,35%A;30~50 m in,35%→60%A;50~55 m in,60%→80%A;55~80m in,80%A);流速:0.8m L/min;检测波长:254 nm;柱温:25℃;进样量:20μL[8]。
2.2 溶液的制备
2.2.1 混合对照品溶液精密称取栀子苷对照品3.23 mg,置于10m L量瓶中;黄芩苷对照品6.87mg,置于10 m L量瓶中;芦荟大黄素对照品4.65mg,置于25m L量瓶中;大黄酸对照品3.45mg,置于50m L量瓶中;大黄素对照品4.15mg,置于25m L量瓶中;大黄酚对照品2.16 mg,置于25m L量瓶中;大黄素甲醚对照品2.03mg,置于100m L量瓶中,均加甲醇适量,超声处理40m in使溶解,放冷至室温,加甲醇定容,制成单一对照品贮备液。精密量取上述栀子苷对照品贮备液5m L,黄芩苷对照品贮备液10m L,芦荟大黄素对照品贮备液1m L,大黄酸对照品贮备液5m L,大黄素对照品贮备液1m L,大黄酚对照品贮备液5m L,大黄素甲醚对照品贮备液3m L,置于同一100m L量瓶中,加甲醇定容,混匀,即得。
2.2.2 供试品溶液精密称取样品细粉约0.20 g,置于10m L量瓶中,加70%甲醇溶液适量,超声处理40m in,放冷至室温,加70%甲醇溶液定容,以半径5 cm、13 000 r/m in离心15m in,取上清液作为供试品溶液。
2.2.3 阴性对照溶液按样品的处方比例及工艺制备不含栀子、黄芩、大黄总蒽醌的阴性对照样品,再按“2.2.2”项下方法制备阴性对照溶液。
2.3 系统适用性试验
精密量取“2.2”项下混合对照品溶液、供试品溶液和阴性对照溶液各适量,按“2.1”项下色谱条件进样测定,记录色谱,详见图1。由图1可知,在该色谱条件下,理论板数以栀子苷峰计为5 000,保留时间为18.3m in;各成分均能达到基线分离,分离度>1.5,结果表明其他成分对测定不干扰。
图1 高效液相色谱图Fig 1 HPLC chromatogram s
2.4 线性关系考察
分别量取“2.2.1”项下混合对照品溶液2.0、4.0、6.0、8.0、10.0m L,分别置于10m L量瓶中,加70%甲醇溶液定容,即得系列混合对照品溶液。取上述系列混合对照品溶液适量,按“2.1”项下色谱条件进样测定,记录峰面积。以待测成分进样量(x,µg)为横坐标、峰面积(y)为纵坐标进行线性回归,得回归方程与线性范围,详见表1。
表1 回归方程与线性范围Tab 1 Regression equationsand linear ranges
2.5 定量限与检测限考察
取“2.2.1”项下混合对照品溶液适量,倍比稀释,按“2.1”项下色谱条件连续进样测定6次,记录峰面积。当信噪比为10∶1时,得定量限(LOQ);当信噪比为3∶1时,得检测限(LOD)。结果,栀子苷、黄芩苷、芦荟大黄素、大黄酸、大黄素、大黄酚和大黄素甲醚的LOQ分别为0.032 1、0.137 4、0.003 72、0.006 7、0.003 30、0.008 64、0.001 22µg,LOD分别为0.009 5、0.004 1、0.001 2、0.002 0、0.001 0、0.002 6、0.000 3µg。
2.6 精密度试验
取“2.2.1”项下混合对照品溶液适量,按“2.1”项下色谱条件进样测定,记录峰面积。结果,栀子苷、黄芩苷、芦荟大黄素、大黄酸、大黄素、大黄酚和大黄素甲醚峰面积的RSD分别为0.40%、0.32%、0.81%、0.47%、1.42%、0.30%、2.47%(n=6),表明仪器精密度良好。
2.7 稳定性试验
取“2.2.2”项下供试品溶液(批号:20140401)适量,分别于室温下放置0、3、5、6、8、24 h时按“2.1”项下色谱条件进样测定,记录峰面积。结果,栀子苷、黄芩苷、芦荟大黄素、大黄酸、大黄素、大黄酚和大黄素甲醚峰面积的RSD分别为0.40%、0.46%、1.89%、0.60%、0.53%、0.44%、1.00%(n=6),表明供试品溶液在室温下放置24 h内稳定性良好。
2.8 重复性试验
取样品(批号:20140401)细粉适量,按“2.2.2”项下方法制备供试品溶液,再按“2.1”项下色谱条件进样测定,记录峰面积并计算各待测成分含量。结果,栀子苷、黄芩苷、芦荟大黄素、大黄酸、大黄素、大黄酚和大黄素甲醚含量的平均值分别为17.60、72.40、2.26、4.78、0.98、1.36、0.35 mg/g,RSD分别为2.69%、1.41%、2.51%、2.50%、1.60%、2.68%、1.86%(n=6),表明本方法重复性良好。
2.9 加样回收率试验
取样品(批号:20140401)细粉适量,共6份,分别加入一定质量的栀子苷、黄芩苷、芦荟大黄素、大黄酸、大黄素、大黄酚和大黄素甲醚对照品,按“2.2.2”项下方法制备供试品溶液,再按“2.1”项下色谱条件进样测定,记录峰面积并计算加样回收率,结果见表2。
2.10 样品含量测定
取3批样品细粉各适量,按“2.2.2”项下方法制备供试品溶液,再按“2.1”项下色谱条件进样测定,记录峰面积并计算各待测成分的含量,详见表3。
3 讨论
3.1 流动相的选择
本课题组考察了不同的流动相[甲醇-0.05%磷酸溶液、乙腈-0.05%磷酸溶液、乙腈-0.1%磷酸溶液、甲醇-0.5%冰乙酸、甲醇-水-冰醋酸],结果发现乙腈-0.05%磷酸溶液、乙腈-0.1%磷酸溶液、甲醇-0.5%冰乙酸、甲醇-水-冰醋酸为流动相进行梯度洗脱时色谱基线不稳,而选择甲醇-0.05%磷酸溶液作为流动相进行梯度洗脱时,色谱的峰形和分离度均较好[9]。因此,选择上述溶液为本试验的流动相。
表2 加样回收率试验结果(n=6)Tab 2 Resultsof recovery tests(n=6)
表3 样品含量测定结果(n=3,m g/g)Tab 3 Results of contents determ ination of sam p les(n=3,m g/g)
3.2 提取溶剂和超声时间的选择
本试验对比了甲醇、乙醇、70%甲醇溶液、70%乙醇溶液作为提取溶剂的回收率,发现采用70%甲醇溶液为提取溶剂时,回收率较好。又考察了不同的超声时间(20、40、60min)对回收率的影响,结果表明,超声处理40min可将样品中的栀子苷、黄芩苷、芦荟大黄素、大黄酸、大黄素、大黄酚、大黄素甲醚提取完全。因此,本试验选择提取溶剂为70%甲醇溶液,超声处理时间为40 m in。
3.3 测定波长的选择
为了方便分析,笔者选择在同一波长下测定各待测成分,参照相关文献[10-14]中各待测成分的波长,发现芦荟大黄素、大黄酸、大黄素、大黄酚、大黄素甲醚在254 nm波长处均有最大吸收,栀子苷和黄芩苷的最大吸收虽然不在254 nm,但二者在制剂中含量比较高,采用254 nm作为测定波长能够达到方法学考察的要求。因此,选择254 nm作为本试验的测定波长。
综上所述,本方法操作简便、重复性好,可用于同时测定栀子金花分散片中7种成分的含量。
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Simultaneous Determ ination of 7 Components in Zhizi Jinhua Dispersible Tabletsby HPLC
XIAO Ya,LI Jing,CHANG Jinhua,CHEN Wei,LIU Cuizhe,LIU Xigang(Hebei Provincial Key Laboratory of Research and Development for TCM/Institute of TCM Research,Chengde Medical College,Hebei Chengde067000,China)
HPLC;Zhizi jinhua dispersible tablets;Geniposide;Baicalin;A loe-emodin;Rhein;Emodin;Chrysophanol;Physcion;Content
R 917
A
1001-0408(2017)18-2549-05
2016-08-12
2016-12-21)
(编辑:刘柳)
河北省高等学校科学技术研究项目(No. QN2014145);河北省高校省级重点学科(No.冀教高〔2013〕4号);承德市科学技术研究与发展计划项目(No.201021020)
*硕士研究生。研究方向:中药制剂现代化。电话:0314-2290629。E-mail:1391959216@qq.com
#通信作者:副教授,硕士。研究方向:中药制剂现代化。电话:0314-2290629。E-mail:liuxgmail@sina.com
DOI10.6039/j.issn.1001-0408.2017.18.29
ABSTRACTOBJECTIVE:To develop amethod for simultaneous determ ination of geniposide,baicalin,aloe-emodin,rhein,emodin,chrysophanol and physcion in Zhizi jinhua dispersible tablets.METHODS:HPLC method was adopted.The determination was performed on Dimonsil C18column w ith mobile phase consisted ofmethanol-0.05%phosphoric acid(gradient elution)at the flow rate of 0.8m L/min.The detection wavelength was set at 254 nm,and the column temperaturewas 25℃.The sample size was 20μL. RESULTS:The linear ranges of geniposide,baicalin,aloe-emodin,rhein,emodin,chrysophanol and physcion were 0.032 3-0.323μg(r=0.999 8),0.137 4-1.374μg(r=0.999 9),0.003 72-0.037 2μg(r=0.999 7),0.006 9-0.069μg(r=0.999 5),0.003 32-0.033 2μg(r=0.999 7),0.008 64-0.086 4μg(r=0.999 7)and 0.001 22-0.012 2μg(r=0.999 5),respectively.The limits of quantitation were 0.032 1,0.137 4,0.003 72,0.006 7,0.003 30,0.008 64,0.001 22µg,respectively.The limits of detection were 0.009 5,0.004 1,0.001 2,0.002 0,0.001 0,0.002 6,0.000 3µg,respectively.RSDs of precision,stability and reproducibility tests were all lower than 3%.The average recoveries were 96.54%-99.52%(RSD=1.17%,n=6),97.23%-101.23%(RSD=1.36%,n=6),97.22%-101.25%(RSD=1.83%,n=6),97.32%-100.23%(RSD=1.09%,n=6),97.99%-102.71%(RSD=1.73%,n=6),96.99%-100.23%(RSD=1.21%,n=6),96.99%-103.01%(RSD=2.31%,n=6),respectively.CONCLUSIONS:Themethods is simple and reproducible.It can be used for the content determination of 7 components in Zhizi jinhua dispersible tablets.