植物耐重金属的分子生物学研究进展

迟春宁 丁国华

（哈尔滨师范大学生命科学与技术学院 植物生物学黑龙江省高校重点实验室，哈尔滨 150025）

植物耐重金属的分子生物学研究进展

迟春宁 丁国华

（哈尔滨师范大学生命科学与技术学院 植物生物学黑龙江省高校重点实验室，哈尔滨 150025）

重金属污染对我国经济发展、人身健康造成重大负面影响，已经成为当今研究热点。综述了近年来重金属对植物的毒害及植物耐性机制等方面的研究进展，主要包括金属对植物的生长发育影响，植物抵抗重金属毒害的防御方式及抵抗重金属胁迫的相关基因和蛋白等，旨在为该领域的相关研究提供资料和借鉴。

重金属；植物；耐受性；分子机制

在过去的几十年中，由于矿石开发、工业“三废”的排放和农业上大量化肥、农药的施用，土壤中重金属的污染已经成为一个严重的环境问题［1］。农作物从土壤中摄取重金属并在植物体内积累，影响了作物的产量和品质，更为严重的是通过食物链进入人体，影响人类健康［2］。作为固着生长的生物，植物只能从土壤中吸收生长发育所需的营养物质［3］，同时也将那些存在于土壤中的重金属吸收进体内，对其代谢产生严重影响。植物通过不断的进化和环境选择，产生了一系列耐受机制，降低了重金属对植物的毒性。本文将对近年来开展植物耐重金属胁迫的分子机理方面的研究进行综述，旨为该领域的相关研究提供资料。

1 重金属对植物的影响

有些重金属对植物的生长是必需的，如铜和锌，但属于微量必需元素，植物吸收超量就会有毒害作用，引起代谢紊乱，生长受阻［4］。铜（Cu）的毒性是增强活性氧的产生能力，进一步导致植物生长发育迟缓，减少根的萌发和侧根的产生。Llorens等［5］研究表明，当大豆暴露于过量铜就会破坏氮的代谢和固定，从而造成大豆的减产。锌（Zn）毒性的主要症状是萎黄病和叶片变红，在叶上出现坏死棕色斑点，伴随着发育不良和减产，也抑制主根的生长和侧根的出现。高浓度的锌还会取代PSII反应中镁（Mg），因此会破坏光系统和电子传递链［6］。Ren等［7］研究表明在菠菜属中质体ATP综合体也受到Zn毒限制，影响了植物的正常生长。

土壤中存在的非必需元素也会影响植物的生长发育。镉（Cd）和铅（Pb）因为容易被植物吸收，可以很容易地进入食物链，是危害人类健康最严重的重金属。在根部细胞，Cd造成水和营养物吸收的不平衡，干扰钙（Ca）、镁（Mg）、钾（K）和磷（P）的吸附，抑制根部酶类所涉及的营养物的新陈代谢［8］。镉在细胞水平会干扰有丝分裂，造成染色体畸变，抑制有丝分裂进程。DalCorso等［9］研究发现，在拟南芥中，镉诱导突变导致花香异常、胚畸形和种子萌发力弱等症状。铅的毒性和其他重金属一样引起相似的症状，即抑制生长、萎蔫、死亡。Eun等［10］发现玉米根系吸收铅后，会降低生长速度，干扰根分生组织的微管网络的形成，导致临近根尖的区域变短，分布的侧根更加密集。

2 植物对重金属的耐受机制

重金属对植物的生长发育产生影响，植物自身也产生了一系列的耐受机制。这些机制主要有：一是外排和阻止重金属的吸收来减少其在植物体内的含量；二是通过络合作用和螯合作用，减少细胞中游离的金属离子；三是通过提高抗氧化酶活性来清除活性氧和自由基。

2.1 植物对重金属的排斥机制

植物和其他生物一样，在生长的过程中已经进化出复杂的体内平衡机制，以尽量减少重金属的伤害。排斥机制是通过阻止重金属离子进入植物体，来防止重金属离子在细胞内积累，从而减小伤害。植物通过以下两道防线来排斥重金属的进入：第一道防线是植物的根部分泌如苹果酸或柠檬酸进入土壤，与金属离子结合阻止根系吸收［11］；第二道防线是细胞壁和细胞外的碳水化合物，能固定有毒重金属离子，阻止它们进入细胞质，影响细胞内的代谢活动［12］。Carrier等［13］研究发现，在重金属Cd的胁迫下，在细胞壁上出现Cd2+高电子密集体，Cd离子被隔离在细胞外，减少对细胞的毒害。质膜在植物抗重金属毒害过程中也起到了重要的作用。质膜是原生质体与外界环境的屏障，控制着细胞内外的信号转导与物质交换，维持细胞内环境相对稳定。质膜表面具有电荷性，带有很强的负性电荷，会与带正电荷的重金属离子结合，使膜对金属离子更加敏感，重金属离子结合在膜上从而被阻止进入细胞内。Liu等［14］利用EELS法证实含有Cd2+高电子密度的颗粒进入细胞内部时被细胞质膜包裹，以此减少细胞质中游离Cd2+的数量，降低Cd对细胞的伤害，证明细胞膜对重金属具有很好的敏感性。

2.2 植物对重金属的耐受机制

金属离子进入细胞中产生活性氧，活性氧能与蛋白质、脂类和DNA等发生反应，引起酶活性降低、膜透性增强及突变增加等，清除活性氧是降低其对生物大分子伤害的一个重要措施。植物可以通过产生植物络合素、金属硫蛋白、氨基酸和有机酸等清除活性氧，减小活性氧对细胞的毒害［15］。

2.2.1 植物螯合肽 植物螯合肽（phytochelatin，PC）广泛存在植物界，这种多肽不是由基因直接编码产生，而是在重金属诱导下，由植物螯合肽合成酶（PCS）催化谷胱甘肽合成［16］。进入植物体内的金属离子可以与PC形成稳定的螯合物隔离到液泡中，从而降低细胞内游离金属离子的浓度。PCS基因已从芥菜属（BjPCS1）［17］小麦（TaPCS1）、水稻（OsPCS1）［18］和拟南芥（AtPCS1）［19］中被克隆。Gusic等［20］研究发现AtPCS1的表达提高了PC合成，并且增强转基因芥菜对镉和砷的耐性。

2.2.2 金属硫蛋白 植物金属硫蛋白（metallothionein，MT）是一种广泛存在的低分子量、富含半胱氨酸和结合金属的蛋白质，可以通过其大量的Cys残基螯合重金属并清除活性氧。与PC不同的是，MT是受重金属胁迫的诱导由mRNA转录直接合成的［21］。MT基因能够在植物生长发育的不同阶段表达，应答不同的重金属离子的胁迫。编码MT的基因已经在豌豆［22］、芥菜、烟草［23］和拟南芥［24］中克隆。通过研究发现拟南芥中的MT2基因在Zn2+的诱导下表达，从而提高了植物对Zn2+的耐性［25］。

2.2.3 氨基酸和有机酸 有机酸和氨基酸中的S、N、O可以与金属离子发生反应，被认为是金属离子的配体。植物因有机酸中的柠檬酸、苹果酸和草酸对重金属发生螯合作用而具有一定的耐性［26］。氨基酸中的组氨酸在金属超积累方面有重要作用，特别对Ni有很高结合力，Krämer等［27］研究发现植物暴露在Ni中时，植物的木质部中的组氨酸的浓度增加，与Ni离子结合而降低对植物的毒害。

2.3 抗氧化酶的防御机制

活性氧（ROS）属于自由基类的高活性氧化剂，其化学性质非常活泼，氧化能力极强，并且极易与其他物质反应。植物体内ROS不完全还原形成过氧化氢（H2O2）、超氧自由基（O2-）、羟基自由基（-OH）和分子氧的激发态（单线态氧），它们作为强氧化剂能与各种各样的生物大分子反应，损伤蛋白质、核酸和膜脂等［28］。当重金属胁迫诱导下植物体内ROS的含量升高，在细胞内造成严重的氧化胁迫引起细胞损伤。研究发现植物体内的抗氧化防御机制能够保持活性氧的形成在较低的水平。植物细胞有酶类和非酶类两种抗氧化系统，前者包括超氧化物歧化酶（SOD）、过氧化物酶（POD）、谷胱甘肽还原酶（GR）和过氧化氢酶（CAT）；后者有谷胱甘肽、抗坏血酸、维生素和类黄酮等［29］。随着重金属的胁迫，抗氧化酶类也会增强表达提高活性，以应对细胞内活性氧和自由基增加而减少伤害。CAT是抗氧化系统中的一种关键酶，可以参与过氧化物酶系统反应催化H2O2的分解，在胁迫下可降低H2O2的含量。现已从植物体成功克隆出4种不同的CAT的基因序列，并发现当受到重金属镉胁迫时CAT3的含量将增加［30］。用镉处理豌豆时发现，镉可使谷胱甘肽、抗坏血酸等含量降低，CAT和MDHAR（单脱氢抗坏血酸还原酶）的转录水平增高，但CAT的活性和含量下降，镉的作用应发生在翻译后的修饰上［31］。实验还发现GR和APX（抗坏血酸过氧化物酶）的活性和基因表达基本不受镉的影响，但镉胁迫降低CuZn-SOD的表达和活性。镉的作用与ROS代谢及Ca2+通道、磷酸化和去磷酸化过程、一氧化氮、环腺苷酸、水杨酸及过氧化氢等信号物质存在密切而复杂的联系。

3 植物耐重金属基因研究

近年来已鉴定和推测出参与重金属响应的众多基因，这些基因的表达对重金属离子在细胞中的运输、富集以及提高植物的抗性等方面都有重要作用［32］。其中以重金属运输相关的蛋白基因的研究最为广泛，主要包括ATP结合盒（ATP-binding cassette，ABC）转运家族、锌/铁调节转运蛋白（zinc/ironregulated transporter protein，ZIP）家族、重金属ATP酶（heavy-metal ATPases，HMAs）家族和阳离子扩散促进者（cation diffusion facilitator，CDF）家族等，这些蛋白基因都对提高植物对重金属的耐性有作用。

3.1 ABC转运家族

ABC转运家族属于膜蛋白最大家族之一，具有种类繁多、分布广泛、运转物质类型多样等特点。各种ABC蛋白在结构上都包含2个由4-6个跨膜片段组成的高度疏水区域（TMD）和2个外围细胞质的ATP结合区域或核苷结合区域（NBD）［33］。ABC蛋白主要参与多种物质的运输，包括离子、碳水化合物、脂质、异生素、抗生素和重金属等，而且一些ABC蛋白质不仅可以直接运输离子或其他溶质，还具有监管转运的功能［34］。根据ABC蛋白上TMD和NBD区域的结构可以将其分为3种类型：多向耐药性蛋白（pleiotropic drug resistance，PDR）、多药耐药性蛋白（multidrug resistance，MDR）和多药耐药相关蛋白（multidrug resistance -associated proteins，MRP），这3种蛋白都与金属离子的运输有关。

PDR与MDRs和MRPs同样具有两个基本的结构域：TMD和NBD，TMD由6个α螺旋组成，胞质内结构域有1个NBD。不同的是，MDRs和MRPs的NBD结构域位于C末端，而PDRs相反，NBD结构域位于其N末端［35］。现已在拟南芥中发现了PDR家族的15个成员，其中已研究分离出与重金属胁迫相关AtPDR12和AtPDR8基因。Kim等［36］通过检测发现在Cd和Pb处理下，拟南芥中AtPDR8的表达上调。AtPDR8过表达植株对镉或铅的耐性比野生型更高，体内游离镉离子浓度更低。Lee等［37］研究发现在Pb胁迫的拟南芥根部和嫩枝中，AtPDR12的浓度增加。过表达AtPDR12的拟南芥对Pb有很高的耐性，并比野生型积累更低的Pb；而在Pb的胁迫下atpdr12突变体植株生长较差。

MDR亚家族与MRPs和PDRs相比研究的较少，MDRs与MRPs基本结构组成相同，但在N末端不同，在MRPs有一个大约220氨基酸组成的高度疏水的N端延伸区。而且还发现MDRs与植物生长素的运输有关，限制根部细胞的生长［38］。MDRs基因已经从拟南芥克隆，而且证实AtMDR1和AtPGP1可以外排有毒代谢物以此来抵抗有毒物质胁迫，CjMDR1也是MDR亚家族的一个成员，可以运输生物碱，使其在根部积累［39］。

MRP亚家族能够广泛运输许多重金属，如As、Cd、Sb、Hg和Zn等［40］。研究表明MRP在运输中可以充当镉泵，参与跨液泡膜转运GS2-Cd复合物和/或Cd2+螯合物［41］。Wojas等［42］研究发现，AtMRP7在烟草的异源表达定位在液泡膜和质膜，可改变烟草对镉的积累、分配和耐性。AtMRP7基因在液泡膜上的过量表达，产生的MRP转运蛋白将镉转运到叶片的液泡中，提高了液泡中镉的含量，从而减少了镉对烟草的毒害。ABC转运家族的种类繁多，除了以上3种之外ATM也是ABC运输者的亚家族，主要位于线粒体膜上，通过增强Fe-S簇的合成和Fe-S簇从线粒体运输进入液泡诱导表达参与重金属的运输，AMT亚家族中的AtATM1、AtATM2和ATATM3三个成员在拟南芥中已经被克隆［43］。Kim等［44］通过基因表达分析发现Cd和Pb处理后，AtATM3在植物的根部表达上调；过表达AtATM3的转基因植物提高了对Cd的耐性，而atatm3突变体植物比野生型对Cd更加敏感。

3.2 锌/铁调节转运蛋白（ZIP）家族

ZIP家族可以提高阳离子的吸收和积累，一些ZIP基因如AtZIP4、NcZNT1和TjZNT1已经在不同植物中被发现，TjZNT1能够参与Zn、Cd和Mn等转运，在植物重金属解毒中有重要作用［45］。其中bZIP基因是ZIP家族的一个重要代表在不同生物过程和应答胁迫中被着重研究。植物中BjCdR15（bZIP家族成员）能够调控植物络合酶的合成和几种金属转运［46］；镉处理后，BjCdR15主要在表皮和维管系统表达，在根和叶中的表达也有增加；过表达BjCdR15的拟南芥和烟草对镉的耐受性得到增强。

3.3 重金属ATP酶（HMAs）家族

HMAs家族在植物和动物中均存在，负责阳离子的跨膜转运，是一个转运蛋白超级家族。HMAs可以运输Zn2+、Cu2+、Cd2+、Pb2+、Ni2+和Co2+等金属离子过膜而排出细胞，对生物体内各种金属的平衡起重要作用。HMAs家族中HMA1、HMA3和HMA4都已经从植物体中被分离鉴定［47-49］。研究发现在拟南芥中HMA超表达促进了Zn和Cd从根到嫩枝的转移，并最终转移到液泡中储存，表明其在重金属的耐受和积累中有重要的作用［50］。

3.4 阳离子扩散促进者（CDF）家族

CDF家族对于金属新陈代谢的维持是非常重要的，可以调节金属离子从细胞溶质的输出和进入液泡。CDF的结构特征是：存在于真核生物和原核生物的生物膜上，具有6个跨膜域，1个C端阳离子结合域，1个N末端特有的信号序列和1个阳离子排出域等［51］。CDF家族中的13种成员已经被分离鉴定，其中7种参与Zn、Cd和Co转运。MTP1是CDF蛋白家族的一个成员，属于液泡膜运输器。研究发现拟南芥的CDF蛋白AtMTP1在重金属Zn的胁迫下超表达，提高了拟南芥对Zn的耐受性和积累，并且能将Zn2+隔离在根部的液泡中，从而降低游离金属离子对植物的毒害［52］。

在重金属解毒作用的研究中，除了以上ABC家族、ZIP家族、HMAs家族和CDF家族外，还有很多与运输金属离子相关的基因，如Nramps（natural resistance-associated macrophage protein） 家 族［53］、铜离子转运蛋白（copper transporter，CTR）家族［54］和YST（yellow-stripe 1-like）家族［55］等。这些基因家族的表达也对重金属离子在细胞中的运输及提高植物的抗性等方面都有重要作用。

4 结语

随着工业和农业的不断发展和人类活动范围的不断扩大，造成土壤重金属污染越来越严重，重金属污染已是一个严重的环境问题。植物对重金属的耐受性反映了其阻止重金属的毒害的能力，植物通过细胞壁和质膜阻止吸收重金属，通过对重金属的络合和螯合作用及在液泡中的隔离，以及通过提高抗氧化酶活性清除自由基等方式来减轻重金属造成的伤害。随着分子生物学发展，将会在在植物中发现更多的与重金属胁迫相关的基因，对它们的研究将成为未来植物抗重金属胁迫的研究重点。

［1］ Lee KK, Cho HS, Moon YK, et al. Cadmium and lead uptake capacity of energy crops and distribution of metals within the plant structures［J］. KSCE Journal of Civil Engineering, 2013, 1：44-50.

［2］ Cheng SP. Effect of heavy metals on plants and resistance mechanism［J］. Environm Sci Pollut Res, 2003, 10：256-264.

［3］Upadhyay RK. Metal stress in plants：its detoxification in natural environment［J］. Braz J Bot, 2014, 37（4）：377-382.

［4］Larry LB. Plants and heavy metal［M］. Molecular Science, 2012.

［5］Llorens N, Arola L, Bladé C, et al. Effects of copper exposure upon nitrogen metabolism in tissue cultured Vitis vinifera［J］. Plant Science, 2000, 160：159-163.

［6］Fontes RLF, Cox FR. Effects of sulfur supply on soybean plants exposed to zinc toxicity［J］. J Plant Nutr, 1995, 18：1893-1906.

［7］Ren FC, Liu TC, Liu H, et al. Influence of zinc on the growth, distribution of elements, and metabolism of one-year old American ginseng plants［J］. Journal of Plant Nutrition, 1993, 16：393-405.

［8］ DalCorso G, Farinati S, Furini A, et al. Regulatory networks of cadmium stress in plants［J］. Plant Signal Behav, 2010, 5：663-667.

［9］DalCorso G, Farinati S, Maistri S, et al. How plants cope with cadmium：staking all on metabolism and gene expression［J］. Journal of Integrative Plant Biology, 2008, 50（10）：1268-1280.

［10］ Eun S, Yon HS, Lee Y, et al. Lead disturbs microtubule organization in the root meristem of Zea mays［J］. Physiologia Plantarum, 2000, 110：357-365.

［11］Delhaize EP, Ryan PR. Aluminium toxicity and tolerance in plants［J］. Plant Physiology, 1995, 107：315-321.

［12］ Sanitàdi Toppi L, et al. Response to cadmium in higher plants［J］. Environment and Experimental Botany, 1999, 2：105-130.

［13］ Carrier P, Baryla A, et al. Cadmium distribution and microlocalization in oilseed rape（Brassica napus）after long-term growth on cadmium-contaminated soil［J］. Planta, 2003, 216：939-950.

［14］ Liu D, Kottke I. Subcellular localization of Cd in the root cells of Allium sativum by electron energy loss spectroscopy［J］. Journal of Biosciences, 2003, 28（4）：471-478.

［15］Clemens S. Molecular mechanisms of plant metal tolerance and homeostasis［J］. Planta, 2001, 212：475-486.

［16］Gisbert C, Ros R, Haro AD, et al. A plant genetically modified that accumulates Pb is especially promising for phytoremediation［J］. Biochem Biophys Res Commun, 2003, 303：440-445.

［17］Senta H, Andreas W, Bogs J, et al. Phytochelatin synthase（PCS）protein is induced in Brassica juncea leaves after prolonged Cd exposure［J］. J Exp Bot, 2003, 54（389）：1833-1839.

［18］Clemens S, Kim EJ, Neumann D, et al. Tolerance to toxic metals by a gene family of phytochelatin synthases from plants and yeast［J］. The EMBO Journal, 1999, 18（12）：3315-3333.

［19］ Vatamaniuk OK, Mari S, Lu YP, et al. AtPCS1, a phytochelatin synthase from Arabidopsis：isolation and in vitro reconstitution［J］. Proc Natl Acad Sci USA, 1999, 96（12）：7110-7115.

［20］Gasic K, Korban S. Transgenic Indian mustard（Brassica juncea）plants expressing an Arabidopsis phytochelatin synthase（AtPCS1）exhibit enhanced As and Cd tolerance［J］. Plant Molecular Biology, 2007 64（4）：361-369.

［21］Christopher C, Peter G. Phytochelatins and metallothioneins：roles in heavy metal detoxification and homeostasis［J］. Annual Review Plant Biology, 2002, 53：159-182.

［22］Tommey AM, Shi JG, Lindsay WP, et al. Expression of the pea gene PsMTAin E. coli. Metal- binding properties of the expressed protein［J］. FEBS Letters, 1991, 292：48-52.

［23］ Pan A, Yang M, Tie F, et al. Expression of mouse metallothionein-I gene confers cadmium resistance in transgenic tobacco plants［J］. Plant Molecular Biology, 1994, 24：341-51.

［24］ Robinson NJ, Tommey AM, Tuske C, et al. Plant metallothioneins［J］. The Biochemical Journal, 1993, 295：1-10.

［25］ An Z, Li C, Zu YG, et al. Expression of BjMT2, a metallothionein 2 from Brassica juncea, increases copper and cadmium tolerance in Escherichia coli and Arabidopsis thaliana, but inhibits root elongation in Arabidopsis thaliana seedlings［J］. Journal of Experiment Botany, 2006, 57（14）：3575-3582.

［26］Rauser WE. Structure and function of metal chelators produced by plants：the case for organic acids, amino acids phytin and metallothioneins［J］. Cell Biochem Biophys, 1999, 31：19-48.

［27］Krämer U, et al. Free histidine as a metal chelator in plants that accumulate nickel［J］. Nature, 1996, 379：635-638.

［28］ Petrov VD, Van Breasegem F. Hydrogen peroxide-a central hub for information flow in plant cells［J］. AoB Plants, 2012, 14：1-14.

［29］Viehweger K. How plants cope with heavy metals［J］. Viehweger Botanical Studies, 2014, 55：1-12.

［30］Lang M, Zhang Y, Chai TY, et al. Identification of genes upregulated in response to Cd exposure in Brassica juncea L.［J］.Gene, 2005, 363：151-158.

［31］Romero-Puertas MC, Corpas FJ, Serrano MR, et al. Differential expression and regulation of antioxidative enzymes by cadmium in pea plants［J］. J Plant Physiol, 2007, 164：1346-1357.

［32］Gong JM, Lee DA, Schroeder JI, et al. Long distance root-to-shoot transport of phytochelations and cadmium in Arabidopsis［J］. Proc Natl Acad Sci USA, 2003, 100（17）：10118-10123.

［33］Morita M, Imanaka T. Peroxisomal ABC transporters：Structure, function and role in disease［J］. Biochim Biophys Acta, 2012, 1822（9）：1387-1396.

［34］Martinoia E, et al. Multifunctionality of plant ABC transportersmore than just detoxifiers［J］. Planta, 2002, 214：345-355.

［35］ Kobae Y, Sekino T, Yoshioka H, et al. Loss of AtPDR8, a plasma membrane ABC Transporter of Arabidopsis thaliana, causes hypersensitive cell death upon pathogen infection［J］. Plant Cell Physiology, 2006, 47（3）：309-318.

［36］ Kim DY, Bovet L, Maeshima M, et al. The ABC transporter AtPDR8 is a cadmium extrusion pump conferring heavy metal resistance［J］. The Plant Journal, 2007, 50：207-218.

［37］ Lee M, Lee K, Lee J, et al. AtPDR12 Contributes to lead resistance in Arabidopsis［J］. Plant Physiology, 2005, 138：827-836.

［38］ Tobias K, Bo B, Lee Y, et al. Functions of ABC transporters in plants［J］. Essays Biochemistry, 2011, 50（1）：145-160.

［39］ Noh B, Murphy AS, Spalding EP. Multidrug resistance-like genes of Arabidopsis required for auxin transport and auxin-mediated development［J］. The Plant Cell, 2001, 13：2441-2454.

［40］Long Y, Li Q, Cui ZB, et al . Molecular analysis and heavy metal detoxification of ABCC1/MRP1 in zebrafish［J］. Molecular Biology Reports, 2011, 38：1703-1711.

［41］Ortiz DF, Ruscitti T, McCue KF, et al. Transport of metal-binding peptides by HMT1, a fission yeast ABC-type vacuolar membrane protein［J］. J Biol Chem, 1995, 270（9）：4721-4728.

［42］Wojas S, Hennig J, Plaza S, et al. Ectopic expression of Arabidopsis ABC transporter MRP7 modifies cadmium root-to-shoot transport and accumulation［J］. Environm Pollut, 2009, 10：2781-2789.

［43］Bhuiyan MSU, Min SR, Jeong WJ, et al. Overexpression of AtATM3 in Brassica juncea confers Enhanced heavy metal tolerance and accumulation［J］. Plant Cell Tiss Organ Cult, 2011, 107：69-77.

［44］Kim DY, Bovet L, Kushnir S. AtATM3 is involved in heavy metal resistance in Arabidopsis［J］. Plant Physiol, 2006, 3：922-932.

［45］Lin YF, Liang HM, Yang SY, et al. Arabidopsis IRT3 is a zinc-regulated and plasma membrane localized zinc/iron transporter［J］. New Phytologist, 2009, 182：392-404.

［46］Farinati S, et al. The Brassica juncea BjCdR15, an ortholog of Arabidopsis TGA3, is a regulator of cadmium uptake, transport and accumulation in shoots and confers cadmium tolerance in transgenic plants［J］. New Phytologist, 2010, 185：964-978.

［47］Becher M, Talke IN, Krall L, et al. Cross-species microarray transcript profiling reveals high constitutive expression of metal homeostasis genes in shoots of the zinc hyperaccumulator Arabidopsis halleri［J］. The Plant Journal, 2004, 37：251-268.

［48］ Filatov V, Dowdle J, Smirnoff N, et al. Comparison of gene expression in segregating families identifies genes and genomic regions involved in a novel adaptation, zinc hyperaccumulation［J］. Molecular Ecology, 2006, 15：3045-3059.

［49］ Talke IN, Hanikenne M, Krämer U, et al. Zinc-dependent global transcriptional control, transcriptional deregulation, and higher gene copy number for genes in metal homeostasis of the hyperaccumulator Arabidopsis halleri［J］. Plant Physiol, 2006, 1：148-167.

［50］Morel M, Crouzet J, Gravot A, et al. AtHMA3, a P1B-ATPase allowing Cd/Zn/Co/Pb vacuolar storage in Arabidopsis［J］. Plant Physiology, 2009, 149：894-904.

［51］Paulsen IT, Saier MH. A novel family of ubiquitous heavy metal ion transport proteins［J］. J Membr Biol, 1997, 156：99-103.

［52］Gustin JL, et al. MTP1-dependent Zn sequestration into shoot vacuoles suggests dual roles in Zn tolerance and accumulation in Zn-hyperaccumulating plants［J］. Plant J, 2009, 57：1116-1127.

［53］Lanquar V, Lelièvre F, Bolte S, et al. Mobilization of vacuolar iron by AtNRAMP3 and AtNRAMP4 is essential for seed germination on low iron［J］. The EMBO Journal, 2005, 24：4041-4051.

［54］ Sancenón V, Puig S, Mateu-Andrés I, et al. The Arabidopsis copper transporter COPT1 functions in root elongation and pollen development［J］. J Biol Chem, 2004, 279：15348-15355.

［55］Colangelo EP, Guerinot ML. Put the metal to the petal：metal uptake and transport throughout plants［J］. Current Opinion in Plant Biology, 2006, 9：322-330.

（责任编辑 狄艳红）

Research Progress of the Molecular Biology in Heavy Metal Tolerance of Plants

CHI Chun-ning DING Guo-hua
（Key Laboratory of Plant Biology，College of Heilongjiang Province，Life Science and Technology College，Harbin Normal University，Harbin 150025）

Heavy metal pollution has caused great negative impact on China’s economic development and human health，which has became a hotspot of study. This paper reviewed the research progresses on toxicity of heavy metal on plants and mechanism of plants tolerance，including the effect of metal on plants growth and development，the ways of plant resistance on toxicity of heavy metal，the tolerance gene and protein of plants to heavy metal，and so on，existing problem and major topics of future research were also disussed.

heavy metal；plants；tolerance；molecular mechanism

10.13560/j.cnki.biotech.bull.1985.2017.03.002

2016-10-20

迟春宁，女，硕士研究生，研究方向：植物分子生物学；E-mail：15146843442@163.com

丁国华，男，博士，教授，硕士生导师，研究方向：植物抗病分子机理；E-mail：hsddgh@hrbnu.edu.cn